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《中国协和医科大学》 2006年
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一、PPARγ激动剂罗格列酮及GLP02的抗肿瘤作用及机制研究 二、hPPARγ2质粒的构建和高表达细胞模型的建立及生物学功能探讨 三、hPPARγ2单克隆抗体的制备

李燕  
【摘要】: 过氧化酶体激活物增殖受体(peroxisome proliferator-activated receptors,PPARs)属于配体激活的转录因子,目前已发现三种亚型:PPARα、PPARγ和PPARδ。PPARγ在脂肪组织中表达较高,在乳腺、结肠、肺、卵巢等其它组织中也有不同程度的表达。研究结果表明PPARγ激活后除了可促进脂肪形成及发挥抗炎作用外,还可抑制肿瘤细胞的增殖、诱导其分化并促进凋亡、对其侵袭转移也有一定的抑制作用。 噻唑烷二酮类(thiazolidinediones,TZDs)是一类具有强烈PPARγ激动活性的化合物,其中以罗格列酮(Rosiglitazone,ROZ)的活性最强,可达纳摩尔水平。GLP02则为一新合成的化合物,也属于PPARγ激动剂,由我所合成室郭宗儒教授课题组提供。在该部分研究中,将主要探讨ROZ和GLP02对结肠癌、乳腺癌和黑色素瘤细胞株的抗肿瘤作用及相关机制。 1.对人结肠癌HT-29细胞的抗肿瘤作用 ROZ和GLP02均可明显抑制HT-29细胞的生长及集落形成,后者的抑制作用明显强于前者。两者均可抑制HT-29细胞DNA和蛋白质的合成,对后者的抑制尤为显著。 ROZ和GLP02可减少G1期细胞比例,而增加G_2期和S期细胞的比例。HT-29细胞经两化合物处理72h后可出现明显的DNA梯状条带(DNA Ladder),ROZ处理细胞后,凋亡细胞所占比例明显升高,Western Blot结果显示,ROZ和GLP02可明显降低抗凋亡蛋白Bcl-2的表达水平。 RT-PCR、Western Blot和免疫组化的结果显示,ROZ可促进HT-29细胞PPARγ的表达,并呈剂量依赖性;GLP02在低剂量时即可明显提高PPARγ的表达,而增加剂量后反而抑制其表达。 ROZ不影响ERK1/2的表达,但可以明显促进p-ERK的表达,推测ROZ可能是通过促进ERK磷酸化而增加PPARγ磷酸化水平,从而导致PPARγ活性降低,影响细胞增殖并诱导凋亡。与ROZ不同,GLP02可明显降低ERK1/2和p-ERK的表达,推测该化合物可能是通过抑制ERK1/2及其磷酸化,而发挥抑制细胞增殖和诱导凋亡的作用。 与体外研究结果一致,裸鼠实验结果显示ROZ和GLP02均可使肿瘤组织发生明显纤维化,抑制裸鼠HT-29异体移植瘤的生长,GLP02的抑制效果强于ROZ。 相关研究报道显示PPARγ和类视黄醇X受体(retinoid X receptor,RXR)两者只有在组成异二聚体同时活化时才能充分发挥作用,其中任一受体单独激活都不足以完全抑制肿瘤细胞的增殖。故本研究将PPARγ激动剂ROZ与RXR激动剂全反式维甲酸(all-trans retinoic acid,ATRA)同时应用,观察后者是否可增强ROZ对HT-29细胞的抑制作用,以期为结肠癌的治疗提供实验依据。 2.ROZ和ATRA联合应用在人结肠癌HT-29的抗肿瘤作用 两者联合应用的结果显示,ATRA可明显增强ROZ对HT-29的生长抑制作用,提高其诱导细胞凋亡的能力。在两者单独使用均不引起细胞凋亡的剂量下联合使用,可使HT-29细胞的凋亡比例达到37.9%和60.6%。单独使用ATRA对Bcl-2的表达无影响,ROZ则可降低Bcl-2的表达,并呈剂量依赖性,两者联合应用后降低HT-29细胞Bcl-2表达的作用显著增强。 ROZ和ATRA单独应用时仅轻微升高HT-29细胞中碱性磷酸酶(alkaline phosphatase,AKP)的活性,而联合使用对AKP活性的影响明显增强。提示两者联合使用可促进HT-29细胞的分化。 HT-29细胞分别经ROZ和ATRA单独作用以及两者联合作用后接种于裸鼠体内,ATRA单独作用后形成的肿瘤其大小与对照组相比无明显差别,ROZ作用后形成的肿瘤体积约为对照组的一半,而两者联合处理后形成的肿瘤明显缩小,仅为对照组的10%左右。 ROZ和ATRA联合作用于HT-29细胞后,其G1期细胞降低的比例较单药更为明显,G2期细胞下降的比例也很明显,而S期的比例则呈上升趋势。 ROZ对ERK的表达没有明显影响,但联合应用ATRA后,ERK的表达明显增加,同时,ROZ还可增加ERK的磷酸化水平,联合应用ATRA后,p-ERK的表达在ROZ低剂量时升高,高剂量时抑制。 3.对乳腺癌的抗肿瘤作用 ROZ和GLP02对MCF-7细胞的生长均有明显地抑制作用,可抑制其DNA的合成,GLP02的作用强于ROZ。ROZ和GLP02可引起少部分细胞发生凋亡,对凋亡相关蛋白Bcl-2的表达也具有一定的降低作用,同样GLP02的作用略强于ROZ。 细胞周期分析结果显示,ROZ可以升高G1+G2期细胞比例,同时降低S期细胞的比例。GLP02对G1期细胞比例无明显影响,增加G2期+S期细胞的比例。 ROZ使MCF-7细胞中的PPARγ表达升高,而GLP02使其剂量依赖性地降低。 对蛋白P53的分析结果显示,ROZ和GLP02对P53的表达均有增强作用。 两化合物在低于诱导细胞凋亡的剂量下可诱导细胞成衰老样表型,维持细胞衰老状态。 体内裸鼠移植瘤实验结果与体外实验结果一致,ROZ可以明显抑制MCF-7裸鼠移植瘤的生长,作用强度与阿霉素相当,而且对裸鼠体重无明显影响。 4.对黑色素瘤的抗肿瘤作用 ROZ和GLP02对B16、B16BL6及A375黑色素瘤细胞均具有一定生长抑制作用,可降低其集落形成能力。 ROZ和GLP02可以使B16、B16BL6细胞形态发生明显地改变,而对A375细胞形态的影响不明显。两者均可使B16BL6和A375细胞内的黑色素及酪氨酸酶活性升高,提示ROZ和GLP02对黑色素瘤细胞具有一定的分化诱导作用。 ROZ和GLP02还可抑制A375细胞穿过人工基底膜,提示两者在体外具有抗侵袭转移活性。 流式细胞分析结果表明,ROZ可以使A375细胞阻滞在G1+G2期,S期细胞比例降低。GLP02作用后则增加S期细胞的比例,降低G1+G2期细胞的比例。 ROZ和GLP02在促进细胞分化的同时可以诱导其发生凋亡。在受试剂量下均出现明显的“DNA”梯状条带,使P53蛋白的表达升高,Bcl-2蛋白的表达显著降低。 RT-PCR、Western Blot的实验结果均显示,ROZ可以增高A375细胞中PPARγ的表达,GLP02在低剂量时可促进PPARγ的表达,剂量升高则抑制PPARγ的表达。 Western Blot结果表明,ROZ和GLP02对ERK的表达无明显影响,但可显著降低p-ERK的表达。推测两化合物可能通过抑制ERK磷酸化而抑制肿瘤的生长和促进分化。 与体外结果相一致,体内实验的结果显示GLP02可明显缩小A375移植瘤的瘤体积。 ROZ和GLP02还可抑制DNA拓扑异构酶I(topoisomerase I,Topo I)的松弛活性。 综上所述,ROZ和GLP02可能是通过诱导分化,促进凋亡以及抗侵袭转移等多种机制而发挥其抗肿瘤作用,该类化合物有望成为新型的抗肿瘤药物。 PPARγ与肿瘤的关系还未完全清楚阐明,存在着诸多矛盾的结论,究其原因可能是PPARγ作用范围广泛,作用机制复杂,影响PPARγ发挥作用的影响因素多,并且受PPARγ调控的靶基因多且复杂,相互之间亦存在交互作用。乳腺癌与PPARγ的表达尤为密切,因此在本研究中,为了比较PPARγ在正常细胞与肿瘤细胞之间、在乳腺癌细胞雌激素受体阳性和受体阴性细胞之间作用的联系与差异,初步探讨PPARγ基因在抗肿瘤作用中的功能及可能的信号传导途径,将hPPARγ2基因转染入NIH3T3、MCF-7、MDA-MB-231细胞,经过鉴定筛选出稳定高表达的转基因细胞株。 研究中发现转入hPPARγ2基因后,三株细胞中PPARγ的表达无论在mRNA水平还是在蛋白质水平均明显升高。对于未转入基因的细胞,ROZ均增高原有PPARγ的表达,对于转基因的细胞,ROZ同样升高NIH3T3细胞中PPARγ表达,而降低MDA-MB-231中PPARγ的表达,对于MCF-7细胞则是低剂量时增高,高剂量时抑制,而这也正与诱导分化的结果一致。 1.NIH3T3细胞与Pγ2-NIH3T3细胞 1.1转入hPPARγ2基因后,NIH3T3细胞形态发生了明显的改变,虽然细胞克隆形成能力没有明显差别,但形成的克隆较为紧密。MTT实验结果显示,转入hPPARγ2基因的细胞对PPARγ激动剂的敏感性略有增加。ROZ对Pγ2-NIH3T3细胞的克隆形成抑制作用显著强于NIH3T3细胞。 1.2转入hPPARγ2基因后,对NIH3T3细胞的细胞周期没有影响,转入前,ROZ使NIH3T3细胞阻滞在G1期,而G2期和S期的细胞比例明显降低,转入后细胞仍阻滞在G1期,但S期降低的程度比较显著,对G2期无明显影响。PPARγ基因可使NIH3T3细胞不易发生凋亡,P53的表达在转入基因后降低,ROZ对未转入基因细胞的P53表达无明显影响,而显著升高Pγ2-NIH3T3细胞P53的表达水平,与细胞凋亡的趋势近似一致。转入基因后的细胞P21略有升高,ROZ对其转染前后均有增高作用, 1.3了转入基因后对基底膜的粘附能力增加,分子水平上也观察到E-selectin表达在Pγ2-NIH3T3细胞中表达升高,而其它相关基因无明显影响。ROZ对NIH3T3细胞粘附略有减低作用,对Pγ2-NIH3T3细胞降低效果较为明显,对于NIH3T3细胞,ROZ仅降低β-cat的表达,而对于Pγ2-NIH3T3细胞,除降低β-cat的表达外,E-cadherin及E-selectin均降低。 1.4转入hPPARγ2基因可使细胞的运动能力增强,ROZ可以抑制转染后细胞的运动。 1.5 hPPARγ2基因对NIH3T3细胞的ERK及p-ERK表达无明显影响,ROZ对NIH3T3细胞仅升高ERK的表达,对p-ERK表达无影响,而对Py2-NIH3T3细胞却仅略升高ERK的表达,而显著降低ERK的磷酸化水平。 1.6 hPPARγ2基因使p-JNK的表达明显增高,也升高了JNK的表达。ROZ作用后仅升高NIH3T3细胞的JNK水平,而明显降低Py2-NIH3T3细胞的JNK和p-JNK的表达。 1.7 hPPARγ2基因使P38和P38激活形式的表达均有所降低,ROZ仅对NIH3T3细胞的P38表达略有降低,而对Pγ2-NIH3T3细胞却可以显著升高二者的表达。 1.8转入基因后NIH3T3细胞出现致瘤性。 2.MDA-MB-231细胞与Pγ2-MDA-MB-231细胞 2.1转入hPPARγ2基因后,细胞形态发生了明显的改变,克隆的形态也发生明显改变,形成的克隆较未转入基因的细胞为之松散,与细胞在转染后易于穿过基底膜而侵袭性增强的结果相一致。MTT实验结果显示,Pγ2-MDA-MB-231细胞对PPARγ激动剂的敏感性略有增加。ROZ对Pγ2-MDA-MB-231细胞的克隆形成抑制作用显著强于MDA-MB-231细胞。 2.2转入hPPARγ2基因后,G1期、G2期和S期细胞的比例无明显变化。对于MDA-MB-231细胞,ROZ使细胞阻滞在G2期,而G1期细胞比例降低,ROZ使Pγ2-MDA-MB-231细胞明显阻滞于G1期,而G2期,尤其是S期细胞比例显著降低。 2.3转入hPPARγ2基因使乳腺癌细胞凋亡比例略有升高。ROZ可使凋亡比例有不程度的增加。转入基因后Bcl-2的表达升高,bax的表达降低,ROZ对MDA-MB-231细胞无明显影响,而使Pγ2-MDA-MB-231细胞中Bcl-2的表达降低,bax的表达升高。 2.4转入目的基因后,P16表达略有升高,ROZ对转染前后P16表达均有升高作用。cyclinE变化不明显,ROZ对转染前后cyclinE表达均呈抑制作用。 2.5转入目的基因后,细胞的粘附能力下降,ROZ对MDA-MB-231细胞的粘附能力有抑制作用,对Pγ2-MDA-MB-231细胞的作用不明显。 2.6 hPPARγ2略微升高细胞β-cat的表达,对ICAM的表达影响不明显。ROZ对MDA-MB-231细胞中上述基因的表达无明显作用,但可降低Pγ2-MDA-MB-231细胞中上述基因的表达。 2.7转入hPPARγ2基因后细胞穿过人工基底膜的能力增强,且ROZ对转染前后细胞穿过膜的能力均有一定抑制作用,对转染后细胞的抑制作用更强。 2.8 hPPARγ2基因对于MDA-MB-231细胞中MAPK信号传导通路除了对ERK略有降低作用外,对于其它均有升高作用,尤其是对JNK的磷酸化形式增高的更为明显。ROZ作用后对MDA-MB-231细胞中JNK和P38途径基本无影响,仅轻微降低JNK的水平。对ERK的表达略有降低,同时升高ERK的磷酸化形式,对于Pγ2-MDA-MB-231细胞,ROZ除了可以升高ERK的表达外,对于其它的表达均降低,尤其是对JNK和p-JNK表达的降低作用更为显著。 2.9 MDA-MB-231细胞中有一定的BRCA1表达,而转入PPARγ基因后,BRCA1的表达明显降低到基本不表达。 2.10在MDA-MB-231细胞中,hPPARγ2基因对TGFβ1、TGFβ2、TGFβ3的mRNA表达无明显影响,ROZ可以升高转染前后细胞中TGFβ1的水平,ROZ对MDA-MB-231细胞中TGFβ2及TGFβ3的表达无明显作用,但可以降低Pγ2-MDA-MB-231细胞中的表达。hPPARγ2基因对TGFβRⅠ的表达无影响,升高TGFβRⅡ和p-TGFβRⅡ的表达,ROZ可使转染前后的TGFβRⅠ表达升高,使转染前的TGFβRⅡ和p-TGFβRⅡ表达均增高,而使转染后的TGFβRⅡ和p-TGFβRⅡ表达均降低。 2.11转入hPPARγ2基因后,细胞IGF1R的表达增高,ROZ对转染前后细胞IGF1R表达均呈抑制作用。hPPARγ2基因对MDA-MB-231中IGFBP3表达无影响,但ROZ可以使转染前后细胞中的表达均降低。 2.12转入目的基因后,MDA-MB-231细胞中的COX-2表达升高,ROZ对转染前后细胞中COX-2的表达均有降低作用。目的基因不引起TopoI表达的变化,但ROZ降低转染前后细胞中TopoI的表达。 2.13转入基因后细胞的致瘤性增强。 3.MCF-7细胞与Pγ2-MCF-7细胞 3.1转入hPPARγ2基因后,细胞形态发生了明显地改变,克隆形态也发生明显地改变,MCF-7细胞形成的克隆较转染前为之松散,与细胞在转染后易于穿过基底膜而侵袭性增强的结果相一致。MTT实验结果显示,Pγ2-MCF-7细胞对PPARγ激动剂的敏感性略有增加。ROZ对Pγ2-MCF-7细胞的克隆形成抑制作用显著强于未转入基因的细胞。 3.2将目的基因转入细胞后,G1期细胞比例略有升高,同时S期细胞的比例略有下降。对于转染前后的细胞,ROZ均使细胞明显阻滞于G1期和G2期,而S期细胞比例显著降低。 3.3转入目的基因后,使细胞凋亡比例略有升高。ROZ均可使凋亡比例呈不程度地增加。 3.4转入目的基因后,P53表达略有升高,ROZ对MCF-7细胞中P53表达无影响,而显著升高Pγ2-MCF-7细胞中P53表达。转入基因后Bcl-2的表达无变化,而bax的表达降低。ROZ对两者的表达无明显影响,而升高Pγ2-MCF-7细胞中Bcl-2的表达,降低bax的表达。 3.5 MCF-7细胞易发生分化,ROZ作用后细胞的分化程度明显提高。而转入PPARγ基因后,细胞的分化能力降低,ROZ在低剂量下可促进其分化,而高剂量反而抑制。 3.6转入基因后细胞穿过基底膜的能力增强,ROZ对Pγ2-MCF-7细胞穿膜能力呈抑制作用。 3.7转入基因后细胞的粘附性降低,ROZ可降低转染前后细胞对Martrigel的粘附性。E-cadherin、β-cat的表达无变化。ROZ可明显降低Pγ2-MCF-7细胞中β-cat的表达。β_2-mg在转入PPARγ2基因前后表达均无明显变化,ROZ对MCF-7的细胞无影响,但可使Pγ2-MCF-7细胞中的表达降低。转入基因后,integrinα2的表达升高,ROZ对MCF-7细胞中其表达无影响,但降低Pγ2-MCF-7细胞中integrinα2的表达。 3.8转入hPPARγ2基因后,p-ERK,JNK,p-P38表达均升高,p-JNK降低。ROZ作用后,降低MCF-7细胞中p-ERK,JNK,p-JNK,P38的表达,同时也降低Pγ2-MCF-7细胞中JNK,p-JNK,p-P38的表达。 3.9 hPPARγ2基因对TGFβ2,TGFβ3的mRNA表达无明显影响,对MCF-7细胞中二者的表达无影响,仅降低Pγ2-MCF-7细胞中TGFβ3的表达。hPPARγ2基因可升高TGFβRⅠ、TGFβRⅡ和p-TGFβRⅡ的表达,ROZ可使转染前后的TGFβRⅠ表达升高,但对MCF-7细胞的TGFβRⅡ和p-TGFβRⅡ表达无影响,而使Pγ2-MCF-7细胞的TGFβRⅡ和p-TGFβRⅡ表达降低。 3.10转入hPPARγ2基因的Pγ2-MCF-7细胞中EGF表达无变化,而EGFR水平升高,ROZ对转染前后细胞中EGF的表达均有降低作用,但仅能使Pγ2-MCF-7细胞中EGFR的水平降低。 3.11研究中发现转入hPPARγ2基因后,无论从mRNA水平还是在蛋白质水平,MCF-7细胞中ERα的表达均显著降低,ROZ对MCF-7细胞中ERα表达无影响,但继续降低Pγ2-MCF-7细胞中ERα的表达。 3.12转入hPPARγ2基因后对MCF-7细胞中COX-2的表达无影响,ROZ对Pγ2-MCF-7细胞中的COX-2表达呈降低作用。 综上所述,转入hPPARγ2基因后可使细胞形态改变,致瘤性增强、细胞粘附能力降低,运动功能增强,肿瘤细胞分化能力降低、侵袭转移能力增加,而且hPPARγ2主要影响MAPK通路、一些生长因子的通路(如TGFβ、IGF1、EGFR)以及激素水平和周期凋亡相关的蛋白,反过来,MAPK及其它生长因子及激素也影响hPPARγ2的表达。因此可以认为hPPARγ2基因有可能成为肿瘤治疗和诊断的一个靶点,而其激动剂有望成为治疗肿瘤或者辅助治疗肿瘤的一类新药。 首先,利用论文第二部分建立的pMD18-T/hPPARγ2亚克隆扩增出hPPAR~/2前1017bp cDNA。利用pET原核表达系统表达了含有hPPARγ2前339个氨基酸(C-Histag)融合蛋白,并成功地进行了纯化。 其次利用原核表达的重组hPPARγ2蛋白制备了特异性抗hPPARγ2单克隆抗体184,3H2,3H10,10D6和10D8。通过ELISA和Western Blot方法对抗体进行了特异性鉴定。证明这5株单抗均为hPPARγ2的特异性抗体。 综上所述,这些系统的建立和鼠源抗hPPARγ2单克隆抗体的制备为后续的针对hPPARγ2抗肿瘤作用及机制研究提供了良好的工具,同时为细胞水平高通量筛选模型的建立奠定了基础,节约了成本。
【关键词】:
【学位授予单位】:中国协和医科大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2006
【分类号】:R96
【目录】:
  • 英文缩略词9-14
  • 第一部分:PPAR γ激动剂罗格列酮及GLP02的抗肿瘤作用及机制研究14-108
  • 中文摘要15-19
  • 英文摘要19-24
  • 前言24-26
  • 实验材料26-27
  • 实验方法27-38
  • 实验结果38-85
  • 1.ROZ和GLP02对肿瘤细胞的生长抑制作用38-40
  • 2.ROZ和GLP02对肿瘤细胞DNA和蛋白质合成的影响40-41
  • 3.ROZ和GLP02对肿瘤细胞周期的影响41-48
  • 4.ROZ和GLP02对肿瘤细胞凋亡的影响48-50
  • 5.ROZ和GLP02对MCF-7细胞衰老的影响50-52
  • 6.ROZ和GLP02对黑色素瘤细胞分化的影响52-55
  • 6.1 ROZ和GLP02对B16和B16BL6细胞形态的影响52-53
  • 6.2 ROZ和GLP02对B16、B16BL6和A375细胞黑色素生成的影响53-54
  • 6.3 ROZ和GLP02对B16BL6、A375细胞酪氨酸酶活性的影响54-55
  • 7. ROZ和GLP02对A375细胞穿过基底膜的影响55-58
  • 8. ROZ和GLP02对裸鼠移植瘤的抑制作用58-63
  • 8.1 对裸鼠移植瘤HT-29的生长抑制作用58-60
  • 8.2.ROZ对裸鼠异体移植瘤MCF-7生长抑制作用60-61
  • 8.3.GLP02对裸鼠异体移植瘤A375的生长抑制作用61-63
  • 9.ROZ和GLP02抗肿瘤作用机制的初步探讨63-74
  • 9.1 ROZ和GLP02对肿瘤细胞PPAR γ表达的影响63-68
  • 9.2 ROZ和GLP02对肿瘤细胞ERK及p-ERK表达的影响68-71
  • 9.3 ROZ和GLP02对肿瘤细胞凋亡相关蛋白表达的影响71-74
  • 10.ROZ和GLP02在体外对DNA拓扑异构酶Ⅰ松弛活性的影响74-76
  • 11.ROZ与ATRA联合应用对HT-29细胞的抗肿瘤作用76-85
  • 11.1 ROZ和ATRA联合应用对HT-29细胞生长的抑制作用76
  • 11.2 ROZ与ATRA联合应用对HT-29细胞周期及凋亡的影响76-79
  • 11.3 ROZ与ATRA联合应用对HT-29细胞分化的影响79-80
  • 11.4 ROZ与ATRA联合应用对HT-29细胞相关蛋白及基因表达的影响80-82
  • 11.5 ROZ与ATRA联合应用对HT-29细胞裸鼠异体移植瘤生长的抑制作用82-85
  • 小结85-88
  • 讨论88-99
  • 参考文献99-108
  • 第二部分:hPPAR γ2质粒的构建和高表达细胞模型的建立及生物学功能探讨108-247
  • 中文摘要109-115
  • 英文摘要115-120
  • 前言120-122
  • 实验材料122-126
  • 实验方法126-142
  • 实验结果142-219
  • 1.质粒构建142-148
  • 1.1RT—PCR结果142-143
  • 1.2 pMD18-T/hPPARγ2亚克隆的构建143-145
  • 1.3 真核表达载体的构建、酶切鉴定及测序145-148
  • 2.转染hPPARγ2高表达细胞株的生物学功能改变及ROZ对其影响148-219
  • 2.1 NIH3T3细胞与Pγ2-NIH3T3细胞148-165
  • 2.1.1 hPPARγ2基因对NIH3T3细胞形态的影响148
  • 2.1.2 hPPARγ2基因对细胞生长的影响及ROZ对NIH3T3和Pγ2-NIH3T3细胞生长抑制作用148-150
  • 2.1.3 hPPARγ2基因对NIH3T3细胞周期的影响及ROZ对NIH3T3和Pγ2-NIH3T3细胞的周期影响150-152
  • 2.1.4 hPPARγ2基因对NIH3T3细胞凋亡的影响及ROZ对NIH3T3和P72-NIH3T3细胞凋亡的影响152
  • 2.1.5 hPPARγ2基因对NIH3T3细胞粘附能力的影响及ROZ对NIH3T3和PRγ2-NIH3T3细胞粘附能力的影响152-153
  • 2.1.6 hPPARγ2基因对细胞趋化运动能力的影响及ROZ对NIH3T3和pγ2-NIH3T3运动能力的影响153-156
  • 2.1.7 hPPARγ2基因对NIH3T3致瘤性的影响156-158
  • 2.1.8 hPPARγ2基因对NIH3T3细胞功能相关基因、蛋白表达的影响及ROZ对NIH3T3和Pγ2-NIH3T3细胞相关基因、蛋白表达的影响158-165
  • 2.2 MDA-MB-231细胞与Pγ2-MDA-MB-231细胞165-190
  • 2.2.1 hPPARγ2基因对MDA-MB-231细胞形态的影响165
  • 2.2.2 hPPARγ2基因对细胞生长的影响及ROZ对MDA-MB-231和Pγ2-MDA-MB-231细胞生长的抑制作用165-166
  • 2.2.3 hPPARγ2基因对MDA-MB-231细胞周期的影响及ROZ对MDA-MB-231和P72-MDA-MB-231细胞周期的影响166-169
  • 2.2.4 hPPARγ2基因对MDA-MB-231细胞凋亡的影响及ROZ对MDA-MB-231和Pγ2-MDA-MB-231细胞凋亡的影响169
  • 2.2.5 hPPARγ2基因对MDA-MB-231细胞粘附能力的影响及ROZ对MDA-MB-231和Pγ2-MDA-MB-231细胞粘附能力的影响169-170
  • 2.2.6 hPPARγ2基因对细胞侵袭穿过重组基质膜能力的影响及ROZ对MDA-MB-231和P72-MDA-MB-231细胞侵袭穿过重组基质膜能力的比较170-173
  • 2.2.7 hPPARγ2基因对MDA-MB-231细胞致瘤性的影响173-176
  • 2.2.8 hPPARγ2基因对MDA-MB-231细胞功能相关基因、蛋白的影响及ROZ对MDA-MB-231和Pγ2-MDA-MB-231细胞相关基因、蛋白的作用176-190
  • 2.3 MCF-7细胞与Pγ2-MCF-7细胞190-219
  • 2.3.1 hPPARγ2基因对MCF-7细胞形态的影响190
  • 2.3.2 hPPARγ2基因对MCF-7细胞生长的影响及ROZ对MCF-7和Pγ2-MCF-7细胞生长抑制作用190-191
  • 2.3.3 hPPARγ2基因对MCF-7细胞周期的影响及ROZ对MCF-7和Pγ2-MCF-7细胞周期的影响191-194
  • 2.3.4 hPPARγ2基因对MCF-7细胞凋亡的影响及ROZ对MCF-7和Pγ2-MCF-7细胞凋亡的影响194
  • 2.3.5 hPPARγ2基因对MCF-7细胞粘附能力的影响及ROZ对MCF-7和Pγ2-MCF-7细胞粘附能力的影响194-195
  • 2.3.6 hPPARγ2基因对细胞侵袭穿过重组基质膜能力的影响及ROZ对MCF-7和Pγ2-MCF-7细胞侵袭穿过重组基质膜能力的影响195-198
  • 2.3.7 hPPARγ2基因对细胞分化能力的影响及ROZ对MCF-7和Pγ2-MCF-7分化能力的作用198-201
  • 2.3.8 hPPARγ2基因对MCF-7细胞功能相关基因、蛋白的影响及ROZ对MCF-7和Pγ2-MCF-7细胞相关基因、蛋白表达的影响201-219
  • 小结219-221
  • 讨论221-240
  • 参考文献240-247
  • 第三部分:hPPARγ2单克隆抗体的制备247-267
  • 中文摘要248-249
  • 英文摘要249-250
  • 前言250-251
  • 实验材料251-252
  • 实验方法252-258
  • 实验结果258-263
  • 1.hPPARγ2基因的克隆和鉴定258-259
  • 2.hPPARγ2基因的原核表达259-260
  • 3.抗hPPARγ2单克隆抗体的制备260-263
  • 小结263-264
  • 讨论264-266
  • 参考文献266-267
  • 附录1:溶液配制267-272
  • 附录2:pMD-18T/hPPARγ2测序结果272-276
  • 附录3:pcDNA3.1(+)/hPPARγ2测序结果276-278
  • 附录4:pET-22b/hPPARγ2测序结果278-280
  • 综述:PPARγ的抗肿瘤作用研究进展280-297
  • 致谢297-299
  • 个人简历299-301

【参考文献】
中国期刊全文数据库 前2条
1 李政霄;彭振辉;纪泛扑;袁景奕;潘敏;刘艳;王琼;;上皮钙粘素和β-连环蛋白在皮肤Bowen病、鳞癌中的表达[J];南方医科大学学报;2006年08期
2 Elisabetta Ceni;Tommaso Mello;Mirko Tarocchi;David W Crabb;Anna Caldini;Pietro Invernizzi;Calogero Surrenti;Stefano Milani;Andrea Galli;;Antidiabetic thiazolidinediones induce ductal differentiation but not apoptosis in pancreatic cancer cells[J];World Journal of Gastroenterology;2005年08期
【共引文献】
中国期刊全文数据库 前10条
1 谢永芳,舒坤贤,梁亦龙,袁帅,张继承;小鼠胚胎发育中期肠细胞增殖与凋亡的研究[J];癌变.畸变.突变;2005年01期
2 王子良,许丽艳,李恩民;质粒制备和反应温度对嵌套缺失技术的影响[J];癌变.畸变.突变;2005年02期
3 康振桥;季艳霞;杨志勇;苏光;崔彦芝;;血管内皮生长因子亚型在人乳腺癌细胞中的表达差异[J];癌变.畸变.突变;2006年03期
4 安刚;黄天华;谢庆东;王德刚;;pCXN2-mIZUMO对C57BL/6小鼠生育能力的影响[J];癌变.畸变.突变;2007年04期
5 朱斌;杨罗艳;赵晓昆;;膀胱癌多药耐药基因MDR-1与金属硫蛋白-3表达的关系[J];癌变.畸变.突变;2007年05期
6 毕玉平,廖俊杰,单雷,王兴军,徐平丽;番茄双抗TMV和CMV基因工程的研究[J];山东农业科学;1997年06期
7 单雷,毕玉平,王兴军,徐平丽,李广存;双抗TMV和CMV转基因番茄后代的遗传分析[J];山东农业科学;1998年04期
8 葛宏华,孙莉宁,张其瑞;家蚕血淋巴蛋白的发育变化和BmLSP的纯化[J];安徽大学学报(自然科学版);2001年03期
9 王北艳;曹宁;汤晖;;苜蓿中华根瘤菌电转条件的优化[J];安徽农学通报;2008年11期
10 刘可杰,吕淑霞,沈世华;FaDREB1基因RNAi的植物表达载体的构建[J];安徽农业科学;2005年07期
中国重要会议论文全文数据库 前10条
1 孙建纯;;关于宁养疗护“本土化”建设的思考——三论“中国的宁养疗护需要什么?”[A];第七届全国癌症康复与姑息医学大会大会论文集和专题讲座[C];2011年
2 王春花;成军;郎振为;吴煜;杨艳杰;张黎颖;刘妍;;基因表达谱芯片技术筛选XTP3蛋白反式调节基因[A];第一届全国人工肝及血液净化学术年会暨全国人工肝及血液净化攻关协作组成立大会论文集[C];2004年
3 唐南洪;王晓茜;李秀金;陈燕凌;;构建特异高表达人谷氨酰胺合成酶基因(hGS)的肝细胞[A];第三届全国重型肝病及人工肝血液净化学术年会论文集(上册)[C];2007年
4 樊继德;孔庆国;张梅;于喜艳;;子房注射法获得转基因甜瓜植株[A];中国园艺学会第七届青年学术讨论会论文集[C];2006年
5 商庆龙;谷鸿喜;;HPV16 L1蛋白在大肠杆菌中的表达、纯化及免疫原性研究[A];庆祝黑龙江省免疫学会成立十周年(1993—2003)论文集[C];2003年
6 曾升平;任丽娅;赵霞;;中医药诱导免疫耐受治疗类风湿关节炎初探[A];第三届全国中医药免疫学术研讨会论文汇编[C];2006年
7 陈振文;赵太云;孙贺娟;路静;王迎;孟霞;曹争和;王钜;;微卫星DNA与生化标记分析对长爪沙鼠群体遗传分析的比较[A];中国实验动物学会第七届学术年会论文集[C];2006年
8 王革;王妍;何凌冰;乔刚;朱一松;王君艳;;酵母分泌表达重组人神经生长因子[A];山东省药学会2006年生化与生物技术药物学术研讨会论文集[C];2006年
9 任华;顾建华;孙竹筠;沈万赟;吴鹰;周忠良;;RT-PCR法检测斑马鱼(Danio rerio)卵黄蛋白原mRNA表达[A];2005年上海市动物学会学术会议论文集[C];2005年
10 马珺;陈云霜;王爱善;李仲逵;;珍稀鸟类东方鹳的性别鉴定[A];2005年上海市动物学会学术会议论文集[C];2005年
中国博士学位论文全文数据库 前10条
1 邹月芬;肿瘤三维细胞模型中应用RNAi抑制HIF-1和VEGF表达及与肿瘤照射之间的相关性研究[D];南京医科大学;2010年
2 白津;JWA通过整合素信号通路调节黑色素瘤转移的分子机制研究[D];南京医科大学;2010年
3 宁萍;人ELAC2基因在肿瘤中的生物学功能研究[D];苏州大学;2010年
4 曲中原;青龙衣抗肿瘤活性成分及其作用机制研究[D];北京中医药大学;2010年
5 卜强;RhoC和ROCK-1在前列腺癌中的表达及其对MAPK和Akt影响的实验研究[D];山西医科大学;2011年
6 孙亚妮;免疫组织化学技术在鸡三种病毒性肿瘤病鉴别诊断中的应用[D];山东农业大学;2011年
7 郭万松;熊果酸对人膀胱癌T24细胞的抑制作用及其机制研究[D];吉林大学;2011年
8 纪铁凤;整合素α_vβ_3介导的~(99m)Tc-3PRGD_2在乳腺肿瘤中的实验研究[D];吉林大学;2011年
9 孙瑜;ET-1受体拮抗剂和阿伐他汀联合应用在动脉粥样硬化病变进程中的抑制作用[D];中国人民解放军军医进修学院;2011年
10 徐洪斌;宫颈癌新辅助化疗和影响根治性治疗后预后因素的评估[D];华中科技大学;2011年
中国硕士学位论文全文数据库 前10条
1 费晶晶;两个家蚕FKBP12基因的研究[D];浙江理工大学;2010年
2 王琼叶;PTEN基因在食管鳞癌中表达和突变的研究[D];郑州大学;2010年
3 李静;Beclin1、Caspase3在宫颈鳞癌患者新辅助化疗前后癌组织中的表达及其意义[D];郑州大学;2010年
4 张静;恩诺沙星化学发光酶免疫分析方法研究[D];郑州大学;2010年
5 史海蛟;树舌多糖GF对荷瘤小鼠H_(22)细胞端粒酶活性及CDK2的影响[D];黑龙江中医药大学;2010年
6 王丽洁;凝血因子Ⅶ检测试剂的研制[D];北京协和医学院;2010年
7 聂龙;肝癌核心家系和对照核心家系标本库的建立及其血清学检测分析[D];广西医科大学;2011年
8 杨帆;bFGF和μPA蛋白在鼻咽癌组织中的表达及临床意义[D];广西医科大学;2011年
9 马姗姗;肿节风防护腮腺放射性损伤的作用机理研究[D];广西医科大学;2011年
10 黄金;胃癌手术前后及榄香烯干预对细胞周期蛋白质cyclinD1、p16、p27的比较研究[D];山西医科大学;2011年
【相似文献】
中国期刊全文数据库 前10条
1 杨晓敏;PPARs在心肌代谢性重塑中的作用[J];中国分子心脏病学杂志;2003年04期
2 易光辉;过氧化体增殖物激活型受体与脂代谢和动脉粥样硬化[J];中国动脉硬化杂志;2005年01期
3 葛恒,王长谦;PPAR配体作用机制及新配体筛选研究进展[J];中国药学杂志;2004年03期
4 袁晓晨,刘乃丰;PPARα与动脉粥样硬化[J];心血管康复医学杂志;2004年01期
5 张燕,欧阳钦;过氧化物酶增生激活受体在几种消化道疾病中的意义[J];临床内科杂志;2004年06期
6 皮斌,田德英;过氧化物酶体增殖物活化受体与乙型肝炎病毒的复制及肝纤维化的关系[J];中华肝脏病杂志;2004年10期
7 钟芸诗 ,姚礼庆;结直肠癌研究的新位点——PPAR的研究进展[J];中国现代医学杂志;2002年13期
8 于晓艳;PPAR-γ与糖尿病肾病[J];国外医学.泌尿系统分册;2003年04期
9 叶平;过氧化体增殖物激活型受体(PPAR)与心血管疾病[J];中华心血管病杂志;2004年07期
10 廖晨钟,邓沱,山松,潘德思,李志斌,宁志强,胡伟明,石乐明,周家驹,鲁先平;以PPAR为靶标的抗2型糖尿病药物研发策略[J];中国新药杂志;2003年12期
中国重要会议论文全文数据库 前10条
1 童南伟;;过氧化物酶增殖物激活受体(PPAR)a与脂质代谢[A];全国首届代谢综合征的基础与临床专题学术会议论文汇编[C];2004年
2 管又飞;;脂质过氧化物体增殖物激活受体γ(PPAR γ)与糖尿病肾病[A];中华医学会肾脏学分会2004年年会暨第二届全国中青年肾脏病学术会议专题讲座汇编[C];2004年
3 童南伟;;过氧化物酶增殖物激活受体delta与脂质及能量代谢研究进展[A];全国首届代谢综合征的基础与临床专题学术会议论文汇编[C];2004年
4 李洁;戴爱国;胡瑞成;朱黎明;王梅芳;;PPARγ影响γ-谷氨酰半胱氨酸合成酶活性及表达在大鼠慢性阻塞性肺疾病中的作用[A];中国生理学会第23届全国会员代表大会暨生理学学术大会论文摘要文集[C];2010年
5 张慧灵;顾振伦;;前列腺素A1对大鼠永久性局灶性脑缺血的保护作用与抑制NF-kB和上调PPARγ有关[A];苏州市自然科学优秀学术论文汇编(2008-2009)[C];2010年
6 张连营;任肖敏;郭良宏;;荧光竞争法研究PFCs与PPAR蛋白的相互作用[A];第六届全国环境化学大会暨环境科学仪器与分析仪器展览会摘要集[C];2011年
7 张连营;郭良宏;;荧光竞争法研究全氟化合物与PPAR的结合作用[A];中国化学会第28届学术年会第2分会场摘要集[C];2012年
8 安松涛;秦秉玉;齐艳艳;李凌;;PPARγ在大鼠出生前后心肌组织中的表达规律[A];《中华急诊医学杂志》第九届组稿会暨第二届急诊医学青年论坛全国急危重症与救援医学学习班论文汇编[C];2010年
9 李毅敏;严孙杰;沈喜妹;杨立勇;;盐酸二甲双胍对不同糖浓度环境下小鼠颅骨成骨细胞增殖、凋亡、功能蛋白表达的影响及PPARγ在其中的作用[A];中华医学会第三次骨质疏松和骨矿盐疾病中青年学术会议论文汇编[C];2011年
10 李毅敏;沈喜妹;严孙杰;;盐酸二甲双胍通过抑制PPARγ的表达拮抗成骨细胞的糖毒性损害[A];中华医学会第六次全国骨质疏松和骨矿盐疾病学术会议暨中华医学会骨质疏松和骨矿盐疾病分会成立十周年论文汇编[C];2011年
中国重要报纸全文数据库 前10条
1 袁松范;Muraglitazar III期临床试验获得成功[N];中国医药报;2005年
2 本报特约撰稿人 陆志城;谁能守住华容道[N];医药经济报;2005年
3 明山;“肥胖”基因导致人体发胖[N];医药经济报;2002年
4 栾雪梅;施贵宝与默克一拍即合[N];医药经济报;2004年
5 东辰;糖尿病药物可减少发生心脏病的风险[N];中国高新技术产业导报;2001年
6 ;muraglitazar:“二合一”药物既降血糖又降血脂[N];医药经济报;2005年
7 冯世容;中山医大肥胖和Ⅱ型糖尿病研究有突破[N];中国医药报;2000年
8 ;瑞士科学家发现控制伤口愈合的基因[N];中国高新技术产业导报;2001年
9 齐继成;减出健康 减出美[N];医药经济报;2002年
10 张涛;糖尿病研究捷报频传[N];医药经济报;2002年
中国博士学位论文全文数据库 前10条
1 魏来;PPARγ1基因冠脉转染对大鼠缺血再灌注心肌的保护作用及机制[D];中南大学;2010年
2 罗居东;PPARα和YY1调控HO-1对肿瘤细胞生物学功能的影响及机制研究[D];苏州大学;2014年
3 王允亮;葛根芩连汤及其有效组分干预非酒精性脂肪性肝炎PPARγ的作用机制研究[D];北京中医药大学;2014年
4 张又枝;NF-κB和PPAR-γ交叉对话调控LDL穿胞及其在动脉粥样硬化中的作用[D];华中科技大学;2013年
5 陈韶华;PPARα基因V227A变异在肝细胞中的生物学作用及其机制研究[D];浙江大学;2011年
6 张又枝;NF-κB和PPAR-γ交叉对话调控LDL穿胞及其在动脉粥样硬化中的作用[D];华中科技大学;2013年
7 何谐;核受体PPARγ和FXR的抗炎机制研究[D];第三军医大学;2013年
8 姬媛媛;TLR4介导AngⅡ的致炎信号通路及PPARα/γ激动剂的干预[D];西安交通大学;2009年
9 郑芬萍;LXRs激动对PPARγ转录调节脂肪因子表达的作用及机制研究[D];浙江大学;2011年
10 王冠梁;熊果酸通过PPARα/γ信号转导通路改善KKA~y小鼠胰岛素抵抗的机制研究[D];第二军医大学;2011年
中国硕士学位论文全文数据库 前10条
1 曹园园;PPARγ和RXRα基因多态性与2型糖尿病易感性的分子流行病学研究[D];南京医科大学;2010年
2 关翘;PPARγ激动剂用于治疗阿尔茨海默氏症的行为学和电生理学的研究[D];宁波大学;2011年
3 杨旭红;同型半胱氨酸硫内酯诱导血管内皮损伤机制与PPARγ关系的探讨[D];中南大学;2010年
4 杨洋;HDAC4对转录因子PPARγ活性在神经元中的调节作用[D];南方医科大学;2010年
5 王全华;小檗碱抗Ang Ⅳ诱导的血管平滑肌细胞增殖与PPARα-NO信号通路关系研究[D];重庆医科大学;2011年
6 李丽婷;PPARγ2内源性配体对成骨细胞及骨髓细胞骨代谢相关基因表达的影响[D];山西医科大学;2011年
7 王素格;IR与PPARα/γ在NASH中变化及意义的实验性研究[D];河北医科大学;2010年
8 宋玉萍;PPARγ2基因Pro12Ala多态性与2型糖尿病及其血脂的关系[D];中国医科大学;2010年
9 冯彦景;游泳训练对胰岛素抵抗小鼠PPAR-γ及糖代谢的影响[D];中南大学;2010年
10 韩芳;PPARγ基因修饰对非酒精性脂肪性肝纤维化的防治机制[D];河北医科大学;2010年
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