R.mucilaginosa,S.albidoflavus和M.luteus对硝基苯的好氧生物降解
【摘要】:
本文报道了3株新分离的在好氧条件下以硝基苯为唯一碳、氮、能源的菌株,对其进行了生理生化特性研究和rDNA分子序列分析,考察了3株菌的游离态细胞和固定化细胞生长及降解硝基苯的特性,并推测出菌株降解硝基苯的途径,以期为实际硝基苯工业废水的处理提供理论依据
通过形态特征、生理生化特性以及rDNA分子序列分析,3株菌分别鉴定为胶红酵母菌(Rhodotorula mucilaginosa Z1)、微白黄链霉菌(Streptomyces albidoflavus Z2)和藤黄微球菌(Micrococcus luteus Z3)。菌株Z1、Z2、Z3在GenBank的登录号分别为DQ778627、DQ855477、DQ855476。菌株Z1、Z2、Z3已作为专利菌种保存于中国普通微生物菌种保藏中心,注册编号分别为CGMCC No.1758、CGMCC No.1759、CGMCCNo.1760。
菌株Z1的最适生长与降解条件为:温度30℃,pH=7.0,摇床转速180 r/min,接种量9mg/L(干重)。菌株Z2的最适生长与降解条件为:温度30℃,pH=7.0,摇床转速150r/min,接种量12mg/L(干重)。菌株Z3的最适生长与降解条件为:温度25℃,pH=7.0,摇床转速150 r/min,接种量9mg/L(干重)。在以硝基苯为唯一碳、氮、能源的液体培养基中,最佳降解条件下,当硝基苯初始浓度为200mg/L时,菌株Z1、Z2、Z3完全降解硝基苯的时间分别为60h、72h、120h,TOC去除率均在98%以上,该实验结果表明硝基苯最终被矿化为无害的二氧化碳和水。在以硝基苯为唯一碳、氮、能源的液体培养基中,菌株Z1、Z2和Z3对硝基苯的最大耐受浓度分别为450、400和250mg/L。最佳降解条件下,菌株Z1、Z2和Z3对硝基苯的降解动力学均符合典型的底物抑制模型,菌株Z1的模型参数为:q_(max)=4.11(1/h),K_s=151.42mg/L,K_i=32.569mg/L;菌株Z2的模型参数为:q_(max)=3.19(1/h),K_s=106.73mg/L,K_i=38.03mg/L;菌株Z3的模型参数为:q_(max)=2.32(1/h),K_s=67.13mg/L,K_i=40.29mg/L。
进一步考察了高盐度下以及其它有机物质和硝基苯共存时3株菌对硝基苯的降解。在以硝基苯为唯一碳、氮、能源的液体培养基中,最佳降解条件下,当硝基苯初始浓度为200mg/L时,3株菌均能在盐度(以氯化钠质量浓度计)≤5%的条件下有效降解硝基苯。最佳降解条件下,当150mg/L的苯酚和200mg/L的硝基苯共存或75mg/L的苯胺与200mg/L的硝基苯共存时,菌株Z1能有效降解硝基苯;当200mg/L的苯酚和200mg/L的硝基苯共存或50mg/L的苯胺与200mg/L的硝基苯共存时,菌株Z2能有效降解硝基苯;当25mg/L的苯酚和200mg/L的硝基苯共存或25mg/L的苯胺和200mg/L的硝基苯共存,菌株Z3几乎不降解硝基苯。
采用表面吸附固定化技术,选取大孔网状载体DW-22为固定化材料分别考察了菌株Z1、Z2和Z3在DW-22型载体上的生长与降解硝基苯的最适条件。菌株Z1在DW-22型载体上的最适生长与降解条件为:温度30℃,pH=7.0,摇床转速160r/min,接种量6mg/L(干重)。菌株Z2在DW-22型载体上的最适生长与降解条件为:温度30℃,pH=7.0,摇床转速130r/min,接种量10mg/L(干重)。菌株Z3在DW-22型载体上的最适生长与降解条件为:温度25℃,pH=7.0,摇床转速130r/min,接种量6mg/L(干重)。在以硝基苯为唯一碳、氮、能源的液体培养基中,最适生长与降解条件下,当硝基苯初始浓度为200mg/L时,固定化Z1、Z2、Z3细胞完全降解硝基苯的时间分别为30h、40h、96h。固定化细胞对硝基苯的降解动力学均符合经典的底物抑制模型,固定化Z1细胞的动力学参数为:q_(max)=8.38(1/h),K_s=185.59mg/L,K_i=132.39mg/L;固定化Z2细胞的动力学参数为:q_(max)=6.34(1/h),K_s=153.63mg/L,K_i=126.73mg/L;固定化Z3细胞的动力学参数为:q_(max)=4.31(1/h),K_s=110.39mg/L,K_i=54.95mg/L。与游离态细胞相比,固定化细胞的耐热性、耐盐性和耐毒性均得到提高。本研究同时进行了固定化Z1细胞降解硝基苯的半连续流试验,实验结果表明:与游离态细胞相比,固定化细胞具有良好的耐水力负荷和冲击负荷的能力。
推测了菌株Z1降解硝基苯的途径:硝基苯经部分还原生成2-氨基酚,2-氨基酚再开环降解,进一步矿化;同时在2-氨基酚的开环过程中,副产物吡啶甲酸生成,Z1进一步降解吡啶甲酸。本研究同时推测了菌株Z1降解吡啶甲酸的途径:吡啶甲酸经羟基化反应生成6-羟基吡啶甲酸,6-羟基吡啶甲酸再开环降解,最终矿化为无害的二氧化碳和水。
综上所述,本研究分离的胶红酵母菌(Rhodotorula mucilaginosa Z1)、微白黄链霉菌(Streptomyces albidoflavus Z2)和藤黄微球菌(Micrococcus luteus Z3)在实际硝基苯工业废水的处理中有着广阔的应用前景。
【关键词】:硝基苯 固定化技术 好氧降解 R. mucilaginosa S. albidoflavus 【学位授予单位】:大连理工大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2007
【分类号】:X703
【DOI】:CNKI:CDMD:1.2007.207224
【目录】:
- 摘要4-6
- Abstract6-13
- 1 绪论13-47
- 1.1 硝基苯的环境危害性以及硝基苯废水的处理方法13-16
- 1.1.1 硝基苯的环境危害性13-14
- 1.1.2 硝基苯废水的物理、化学处理方法14-16
- 1.1.3 硝基苯废水的生物处理方法16
- 1.2 好氧降解硝基苯的微生物资源16-19
- 1.2.1 硝基苯好氧降解菌的生长特性及降解活性17-18
- 1.2.2 硝基苯好氧降解菌研究的局限性18-19
- 1.3 硝基芳香类化合物的好氧代谢途径19-46
- 1.3.1 代谢途径研究的意义19-20
- 1.3.2 氧化途径(oxidative pathway)20-27
- 1.3.3 部分还原途径(partial reductive pathway)27-41
- 1.3.4 硝基芳香类化合物好氧代谢途径的规律41-45
- 1.3.5 研究的局限性45-46
- 1.4 本研究的目的和主要研究内容46-47
- 2 硝基苯好氧降解菌株的分离与鉴定47-60
- 2.1 实验材料和方法47-50
- 2.1.1 实验材料47-48
- 2.1.2 实验方法48-50
- 2.2 结果与讨论50-59
- 2.2.1 硝基苯降解菌株Z150-54
- 2.2.2 硝基苯降解菌株Z254-57
- 2.2.3 硝基苯降解菌株Z357-59
- 2.3 本章小结59-60
- 3 硝基苯降解菌的特性研究60-84
- 3.1 实验材料和方法60-62
- 3.1.1 实验材料60
- 3.1.2 实验方法60-62
- 3.2 结果与讨论62-82
- 3.2.1 标准曲线62-64
- 3.2.2 菌株Z1生长与降解条件的确定64-66
- 3.2.3 菌株Z2生长与降解条件的确定66-68
- 3.2.4 菌株Z3生长与降解条件的确定68-70
- 3.2.5 菌株Z1,Z2,Z3生长曲线70-73
- 3.2.6 菌株在高盐度下对硝基苯的降解73-75
- 3.2.7 菌株在苯酚或苯胺存在下对硝基苯的降解75-77
- 3.2.8 硝基苯好氧降解动力学77-82
- 3.3 本章小结82-84
- 4 固定化菌株对硝基苯废水的生物降解84-104
- 4.1 实验材料和方法84-87
- 4.1.1 实验材料84-85
- 4.1.2 实验方法85-87
- 4.2 结果与讨论87-102
- 4.2.1 最佳载体投加量确定87-88
- 4.2.2 固定化细胞最佳降解条件88-92
- 4.2.3 固定化细胞生长曲线92-94
- 4.2.4 固定化细胞在高盐度和其它有机物质共存时对硝基苯的降解94-95
- 4.2.5 固定化细胞降解硝基苯的动力学95-100
- 4.2.6 固定化Z1细胞降解硝基苯的半连续流实验100-102
- 4.3 本章小结102-104
- 5 菌株Z1降解硝基苯途径的初探104-127
- 5.1 实验材料和方法104-108
- 5.1.1 实验材料104-105
- 5.1.2 实验设计依据105-107
- 5.1.3 实验方法107-108
- 5.2 结果与讨论108-125
- 5.2.1 标准曲线108-111
- 5.2.2 NH_4~+的检测111
- 5.2.3 NO_2~-的检测111-114
- 5.2.4 菌株Z1生长过程中的NH_4~+和NO_2~-的检测114
- 5.2.5 菌株Z1在不同碳源上的生长114-115
- 5.2.6 菌株Z1完整细胞对不同底物的好氧降解115-118
- 5.2.7 完整细胞对硝基苯的厌氧转化118-122
- 5.2.8 完整细胞对2-氨基酚的好氧降解122-125
- 5.2.9 完整细胞对硝基苯,2-氨基酚,吡啶甲酸的降解动力学125
- 5.3 本章小结125-127
- 6 菌株Z1降解吡啶甲酸途径的初探127-137
- 6.1 实验材料和方法127-130
- 6.1.1 实验材料127-128
- 6.1.2 实验方法128-130
- 6.2 结果与讨论130-135
- 6.2.1 菌株Z1在吡啶甲酸上的生长130-131
- 6.2.2 完整细胞对吡啶甲酸的降解131-134
- 6.2.3 完整细胞对6-羟基吡啶甲酸的降解134-135
- 6.2.4 完整细胞对吡啶甲酸和6-羟基吡啶甲酸的降解动力学135
- 6.3 本章小结135-137
- 7 结论与展望137-140
- 7.1 结论137-138
- 7.2 创新点138-139
- 7.3 有待进一步研究的工作139-140
- 参考文献140-147
- 附录A 菌株Z1的26S rDNA D1/D2测序图147-149
- 附录B 菌株Z1的26S rDNA D1/D2的酶切图谱149-150
- 附录C 菌株Z1的生理生化特征150-151
- 附录D 菌株Z1的序列测定结果151-152
- 附录E 菌株Z1的保藏号152-153
- 附录F 菌株Z2的生理生化特征153-154
- 附录G 菌株Z2的序列测定结果154-155
- 附录H 菌株Z2的保藏号155-156
- 附录I 菌株Z3的生理生化特征156-157
- 附录J 菌株Z3的序列测定结果157-158
- 附录K 菌株Z3的保藏号158-159
- 附录L H~1-NMR图谱159-160
- 创新点摘要160-161
- 攻读博士学位期间发表学术论文情况161-162
- 致谢162-163
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