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《复旦大学》 2005年
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蝴蝶兰查尔酮合酶基因家族成员分子进化和差异表达调控的研究

韩颖颖  
【摘要】:蝴蝶兰(Phalaenopsis hybrida)原产于亚洲热带地区,具有很高的观赏价值和经济价值。类黄酮类色素是植物主要的花色素,而且在其它许多生物功能中发挥作用,如防紫外照射,植物——微生物间的相互作用以及雄性育性。查尔酮合酶(Chalcone synthase,CHS,EC2.3.1.74)是类黄酮合成途径的关键酶,催化一分子的香豆酰CoA与三分子的丙二酰CoA缩合生成4,5,7三羟基黄烷酮(narigenin chalcone),是类黄酮合成的限速酶。 本研究利用一系列PCR方法克隆到3个新的蝴蝶兰查尔酮合酶基因。将它们分别命名为phchs3,phchs4和phchs5。首先,利用RT-PCR方法克隆到phchs3和phchs5的cDNA片段;利用常规PCR方法分离到phchs4的DNA片段。然后根据每个基因已知区域的序列设计反式PCR引物,进行反式PCR,得到全长基因。 Phchs3(GeneBank accession no.AY954515)包含有一个长为1173bp的开放读框,在保守的第60位氨基酸(半胱氨酸)密码子的第一个和第二个核苷酸之间存在一个长为103bp的内含子。其编码的蛋白与其它物种的CHS有61-65%的同源性,并且包含了大部分CHS保守的活性位点。我们还得到了该基因684bp 5’非翻译区序列。在Phchs3的启动子区存在许多CHS基因特有的顺式作用元件,如G-box,W-box,P-box和TACPyAT motif等。 Phchs4(GeneBank accession no.AY825502)包含有一个长为1173bp的开放读框,在保守的第60位氨基酸(半胱氨酸)密码子的第一个和第二个核苷酸之间存在一个长为109 bp的内含子。该基因编码由390个氨基酸组成的蛋白质,该蛋白包含大部分CHS保守的活性氨基酸,与其它物种的CHS有61-65%的同源性。我们还得到了其618 bp 5’非翻译区序列。在phchs4启动子区发现了多种参与CHS基因表达调控的顺式作用元件。 Phehs5(GeneBank accession no.DQ089652)包含有一个长为1185 bp的开放读框,在保守的第61位氨基酸(半胱氨酸)密码子的第一个和第二个核苷酸之间存在一个长为159 bp的内含子。不管在核苷酸水平还是氨基酸水平,Phchs5与其它兰科植物和其它科属植物CHS的同源程度高于与已知的蝴蝶兰CHS序列之间的同源程度。 Southern杂交表明,蝴蝶兰查尔酮合酶基因家族至少由4个成员组成。 同源进化分析表明,兰科CHS基因在蝴蝶兰、石斛兰和Bromoheadia三个 属形成以前就已经分歧为两个亚家族。Phchs5属于缓慢进化的一支;phchs3和phchs4属于加速进化的一支。蛋白序列同源比较表明,许多CHS活性必须的氨基酸残基在加速进化的一支中不存在。 以半定量RT-PCR方法对三个蝴蝶兰CHS基因在处于不同发育阶段的不同花器官中的表达进行了鉴定。Phchs5是花器官中表达最强的基因,它特异的在花色素积累时期的花瓣和唇瓣中表达(阶段1至4)。Phchs5在花瓣中最高水平的表达发生在阶段3和4。这一时期,花色素在该组织中的积累速度最快。Phchs3和phchs4在花器官中的表达水平较phchs5低。Phchs3在发育早中期的着色的花被中表达,也在发育晚期无色的生殖器官中表达。与Phchs5相似,phchs4仅在花瓣和唇瓣中表达。它在早期的花瓣(阶段1-3)和晚期的唇瓣中微量表达(阶段4)。上述结果为蝴蝶兰单个CHS基因的差异表达提供了新的事实依据。 对phchs5在不同蝴蝶兰花色品种中的表达进行鉴定分析,结果进一步证明该基因特异的在花瓣和唇瓣中表达,其表达水平明显与组织中花色素积累水平一致。它在“紫红”品系(紫红花瓣)花瓣中的表达水平大大高于“黄花红唇”(黄色花瓣)和“白花黄唇”(白色花瓣)花瓣中的水平。 以phchs3的外显子2序列作为目的基因转化烟草可以使转基因植物的花瓣颜色加深。这些数据证实了phchs3在花色素合成中的功能,为过量表达蝴蝶兰CHS基因来进行其它植物的花色改良奠定了理论基础。
【学位授予单位】:复旦大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2005
【分类号】:Q943;S682.31

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【引证文献】
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2 朱子超;柴友荣;杨光伟;;查尔酮合酶基因重复-歧化的遗传学效应[J];安徽农学通报(上半月刊);2009年01期
3 陈俊毅;柴友荣;姚永宏;;查尔酮合酶蛋白表达技术、结构、活性和进化[J];西南农业学报;2012年01期
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【参考文献】
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【共引文献】
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2 招雪晴;苑兆和;陶吉寒;尹艳雷;冯立娟;;红花石榴二氢黄酮醇还原酶(DFR)基因cDNA片段克隆及序列分析[J];山东农业科学;2012年02期
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7 段艳欣;李鼎立;邓秀新;郭文武;;柑橘胚性愈伤组织的褐化与转化[A];2008园艺学进展(第八辑)——中国园艺学会第八届青年学术讨论会暨现代园艺论坛论文集[C];2008年
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10 高冬冬;低温对不同基因型蝴蝶兰(Phalaenopsis spp.)生理特性的影响[D];浙江大学;2011年
【同被引文献】
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3 王永强,王四清;多效唑调控蝴蝶兰花期的研究[J];安徽农业科学;2005年03期
4 廖海;周嘉裕;张超;贺葵邦;;何首乌查尔酮合成酶基因的克隆及序列分析[J];安徽农业科学;2009年15期
5 朱志国;黄承钧;陶陶;闻治江;;蝴蝶兰组织培养快速繁殖技术研究[J];安徽农业科学;2009年30期
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9 廖靖军,安成才,吴思,陈章良;查尔酮合酶基因在植物防御反应中的调控作用[J];北京大学学报(自然科学版);2000年04期
10 赵岫云,徐家炳,张凤兰;种芽低温结合幼苗夜加光处理对晚抽薹小白菜开花的影响[J];北京农业科学;1999年04期
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【二级引证文献】
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4 尹燕雷;苑兆和;招雪晴;冯立娟;杨尚尚;李云;;槭树叶片类黄酮糖基转移酶基因RT-PCR扩增体系优化[J];山东农业科学;2013年03期
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【二级参考文献】
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7 王维;高侠;胡春红;张爱清;;含氧膦和查尔酮结构的光敏聚酰亚胺合成[A];2005年全国高分子学术论文报告会论文摘要集[C];2005年
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2 中国科学院院士 陈竺;中国的生命科学与生物技术[N];光明日报;2004年
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6 孙晓明;含咪唑基查尔酮类衍生物的合成及抑菌性能研究[D];陕西科技大学;2012年
7 赵立明;多羟基查尔酮类衍生物的合成及肝保护作用的研究[D];延边大学;2004年
8 祝钦泷;转查尔酮异构酶(CHI)基因矮牵牛花色改变及其花器官变异的研究[D];西南农业大学;2004年
9 杨建玲;黄蜀葵查尔酮合成酶基因的克隆[D];中国农业科学院;2004年
10 马景;研磨法在一些迈克尔反应中的应用[D];河北大学;2004年
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