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《南京农业大学》 2010年
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植物黄酮类化合物槲皮素与转录因子AtMYB44诱导和调控植物防卫反应的研究

贾振华  
【摘要】:转录因子在植物识别病原物后激活防卫反应的过程中起着重要的作用,它通过调控防卫基因的表达实现防卫反应。植物抗病性激发子能够诱导植物对多种病害的抗性。但是它们如何启动抗病信号通路的,如何参与抗病反应的,目前其机制不清楚。因此,本博士论文着重解析转录因子AtMYB44在植物抗病反应中的作用和槲皮素(quercetin)诱导的抗病机制,探讨了AtMYB44基因启动子甲基化对该基因的表达及其对抗病反应的影响。为阐明转录因子和黄酮类化合物参与防卫反应的机制及与激素或非激素信号传导途径的交叉提供研究基础。 1. AtMYB44转基因拟南芥的产生及鉴定 MYB类转录因子在植物胁迫应答过程中起到重要的调控作用,能够使植物提高抗病能力。AtMYB44属于拟南芥中R2R3 MYB亚基22转录因子家族。其T-DNA插入突变体atmyb44和野生型拟南芥相比能够增强PP2C编码基因的盐诱导表达,减少干旱或盐胁迫容忍性。atmyb44突变体使桃蚜驱避率降低。接种Pseudomonas syringae pv. tomato DC3000 (PstDC3000)后,和野生型相比,atmyb44突变体表现抗病性降低。为了分析转录因子AtMYB44在植物防卫反应中的作用,我们构建了双元载体pCAMBI1301::44::6His,成功地将AtMYB44基因引入到载体中,并将该质粒转入农杆菌A.tumefaciens EHA105中,转化拟南芥生态型Col-0,构建了过表达植株35S-M,抗生素抗性筛选和分子生物学验证后获得过表达植株纯合体。采用同样的方法将AtMYB44基因和GFP基因转入野生型拟南芥Col-0中,构建了过表达植株44GFP。同样我们将AtMYB44基因ATG上游的2000bp(44P2000)引入了pBI121载体,构建了双元载体pB121::44P2000::GUS,转基因验证筛选后,由农杆菌A.tumefaciens EHA105介导,转化拟南芥生态型Col-0,获得转基因植株纯合体44PGUS。随后我们又对T-DNA插入突变体atmyb44进行了卡那霉素筛选和分子鉴定,成功获得纯合体atmyb44。我们还构建了携带双元载体的工程菌A.tumefaciens EHA105(pCAMBI1301:44P2000::44CDS::GFP::His),转入拟南芥拟南芥突变体atmyb44,将44P2000::44CDS:GFP引入突变体中,经筛选鉴定后获得纯化的互补转基因拟南芥Catmyb44.过表达拟南芥35S-M和44GFP、启动子转基因拟南芥44PGUS、互补拟南芥Catmyb44和突变体atmyb44纯合体获得为后续实验准备了实验材料。 2.转录因子AtMYB44诱导表达及亚细胞定位 转录因子是在胁迫反应和生长发育中基因表达改变的重要调控因子。核定位信号区是使转录因子能够进入细胞核,从而调控下游基因的表达,最终决定生物表型。MYB家族就是一群能够结合特定DNA序列的转录因子.AtMYB44基因可以被非生物胁迫诱导增强表达,例如,创伤、冷胁迫、盐胁迫和一些激素诱导,增强植物的抗逆反应或植物发育生长。本实验构建了AtMYB44基因的原核表达工程菌E.coli BL21 (pET30a::AtMYB44),并利用AtMYB44蛋白PAGE电泳条带制备了AtMYB44蛋白的兔抗。我们利用A.tumefaciens EHA105 (pCAMBI1301::44P2000::44 CDS::GFP::His)和A.tumefaciens EHA105 (pBI121::44::GFP)在洋葱表皮上对AtMYB44进行了HrpNEa蛋白和乙烯利(ACC)诱导表达和亚细胞定位,同时利用转基因拟南芥Catmyb44和44GFP对AtMYB44进行了亚细胞定位分析,结果表明AtMYB44定位在细胞核内,也验证了44P2000的活性。而在HrpNEa蛋白和ACC诱导下,和对照相比,GFP能够更强的表达。对44PGUS组织化学染色实验分析表明,AtMYB44在拟南芥的各个组织中进行表达,AtMYB44基因的RT-PCR也验证了这一结果,而且发现HrpNEa和槲皮素能够在拟南芥的各个组织中诱导AtMYB44基因表达。我们对Catmyb44的10个品系和35S-M的5个品系进行了AtMYB44基因诱导表达,筛选到最佳转基因植物。这些结果暗示了AtMYB44基因能够被一些生物或非生物胁迫诱导表达,而在植物体内发挥其生物学功能。 3.转录因子AtMYB44在拟南芥中对Pseudomonas syringae抗病性的作用 植物受病原菌侵染或用病原物激发子处理植物时,植物激活的防卫反应中涉及大量基因的转录调控。AtMYB44属于拟南芥中R2R3-MYB亚基22转录因子家族。大量的证据暗示植物R2R3 MYB转录因子卷入到植物防卫中,当然防卫反应包括植物防御病染菌时宿主基因的转录调控。我们分析了AtMYB44转录因子在拟南芥对PstDC3000基本防卫中的作用。AtMYB44的T-DNA插入突变体atmyb44接种PstDC3000后,与野生型相比,3d后叶片细菌数量增加,病害症状显著加重,水杨酸调控的PR1和PR2基因表达减弱,AtMYB44能够在野生型拟南芥上被PstDC3000诱导表达。AtMYB44基因过表达植株35S-M-1和35S-M-4接种PstDC3000后,与野生型相比,3d后叶片细菌数量减少约1倍,病害症状显著减弱,水杨酸调控的PRl和PR2基因表达增强,AtMYB44被PstDC3000诱导的表达明显上调;而互补植株Catmyb44-2、Catmyb44-7和Catmyb44-9接种PstDC3000后,与野生型相比症状和抗性基因表达没有变化。从细胞水平上分析了野生型WT、转基因35S-M和Catmyb44拟南芥植株对病原菌产生的防卫反应,分子水平上分析了AtMYB44受环境胁迫(SA、MeJA、ET、ABA、HrpNEa、槲皮素)的诱导表达,这些结果表明AtMYB44正调控植物对PstDC3000的基本防卫反应。通过分析AtMYB44在基本防卫信号通路突变NahG与nprl上的受病原细菌诱导表达,表明水杨酸信号通路正调控AtMYB44表达。AtMYB44具有转录激活,能在植物防卫反应中调控下游基因表达,参与植物对病原细菌的抗性。 4.槲皮素诱导的过氧化氢在拟南芥中对Psedomonas syringae pv. tomato DC3000抗病性的作用 以前研究证明槲皮素可以作为一种重要的抗氧化剂应用在人类的疾病治疗中。最近一些报道表明槲皮素是一种在特定条件下能作为促氧化剂作用。在这个研究中,我们展示了槲皮素能够诱导活性氧的产生并能增强拟南芥野生型对PstDC3000的抗性。当野生型拟南芥用槲皮素处理后再接种PstDC3000叶片就会出现多种防卫反应包括活性氧爆发、胼胝质沉积、过敏性细胞坏死、水杨酸的积累以及防卫基因PRl和PALl的表达变化等。这些防卫反应和植物对PstDC3000的抗性相一致的,因为再利用槲皮素处理植物中的病菌数量显著的少于对照植物。有趣的是当外施槲皮素后接种PstDC3000并同时用过氧化氢酶处理拟南芥上述的防卫反应和相关症状就消失了。而只用槲皮素处理或单独接种PstDC3000则只能在细胞或者分子水平上诱发有限的防卫反应。为了进一步的研究槲皮素在植物防卫反应中的作用,我们对不同的拟南芥突变体用槲皮素和PstDC3000单独处理或者先用槲皮素处理后再接种PstDC3000.发现在jar1, ein2和abil-2突变体中与野生型中结果是相似的,而在NahG和nprl中相应的防卫反应却消失了。上述结果表明槲皮素通过提高活性氧来增强拟南芥对PstDC3000的抗性,并且需要水杨酸信号通路和NPR1基因参与的。5.AtMYB44基因启动子DNA甲基化在拟南芥抗病防卫反应中的影响 DNA胞嘧啶甲基化作用对许多后生遗传过程都很重要,包括X染色体的失活、基因组印记、在致癌过程中的后生变化、转座子沉默、发育过程中特殊基因沉默和某种转基因的沉默。植物可以通过表观遗传来调控基因表达来适应环境压力,可以说生物体的遗传性状并不是完全由DNA决定的。在生物和非生物环境胁迫压力下,转录因子往往对生物体的遗传性状起到至关重要作用,而转录因子的表达也是受到DNA遗传修饰的调控。本实验分析了不同激素(ET、ABA、MeJA和SA)、HrpNEa、槲皮素和病原菌(PstDC3000和Erwinia carotovora subsp.carotovora (Ecc))诱导拟南芥表达转录因子AtMYB44,并检测了其启动子(44P2000)CG岛甲基化的变化,结果发现不同的处理CG岛甲基化的程度不同。5-氮杂-2’-脱氧胞苷(5-aza-2'deoxycytidine, 5-aza)能够去除DNA上的甲基化。野生型拟南芥Col-0、突变体atmyb44和互补植株Catmyb44-2被5-aza处理后,通过RT-PCR检测了AtMYB44基因的表达,初步确定了5-aza能够促进植物对AtMYB44基因的表达。而通过对被5-aza处理的转基因拟南芥P44GUS定性的或定量的GUS蛋白检测,发现5-aza影响着AtMYB44基因启动子发挥作用。PstDC3000接种于被5-aza处理的植物后,拟南芥发病表型、PRl和PAL基因的表达暗示了5-aza与抗病反应没有关系,仅仅是对转录因子AtMYB44表达发挥着作用。这些结果暗示了外界环境的胁迫会影响植物中AtMYB44基因上游启动子CG岛甲基化的数量变化,从而使AtMYB44基因发生不同程度的表达,继而激发了植物的抗病基因的表达,最终使植物具有抗病性。 总结 本研究利用转AtMYB44基因植物及外源槲皮素两种手段,对它们引发植物防卫反应信号传导作用及机制进行了解析。研究发现:(1)转录因子AtMYB44能够参与植物抗病防卫反应;转录因子AtMYB44能够被多种生物胁迫和非生物胁迫诱导表达,对病原细菌(PstDC3000)的抗性正向调控,并介导SA信号传导通路发挥作用。(2)槲皮素能够诱导AtMYB44在拟南芥中表达,并介导过氧化氢水平的升高增强拟南芥对病原细菌(PstDC3000)抗性。其抗病性机制是依赖SA信号和NPR1。(3)在生物和非生物胁迫中,转录因子AtMYB44的表达是靠其基因上游启动子甲基化来调控的。 创新点 (1)利用转基因拟南芥从细胞水平和分子水平研究了转录因子AtMYB44在植物防卫反应中的作用及其诱导表达的机理,最终确定了AtMYB44在植物防卫反应中功能及机制。 (2)分析了黄酮类化合物槲皮素在植物对PstDC3000的抗性中的作用,确定了槲皮素在植物防卫反应中的作用及机制。
【学位授予单位】:南京农业大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2010
【分类号】:S432.1

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3 陶宗娅;田小凤;向述莲;;小麦防卫反应酶系对赤霉菌毒素和水杨酸处理的响应[A];中国植物生理学会全国学术年会暨成立40周年庆祝大会学术论文摘要汇编[C];2003年
4 王源超;李德葆;;疫霉菌诱导非寄主植物防卫反应信号分子的研究[A];江苏省植物病理学会第九届会员代表大会暨学术研讨会论文集[C];1999年
5 张书建;龙菊英;董汉松;;Priming与植物诱导抗病性[A];中国植物病理学会2008年学术年会论文集[C];2008年
6 蔡向阳;吴祖建;江茂生;;寡糖诱导作用在植物抗性中的应用[A];福建省科协第五届学术年会提高海峡西岸经济区农业综合生产能力分会场论文集[C];2005年
7 吕术超;侯春燕;刘刚;王冬梅;;受叶锈菌侵染的小麦细胞间隙液中抗病相关蛋白的鉴定[A];中国植物生理学会第十次会员代表大会暨全国学术年会论文摘要汇编[C];2009年
8 周建波;胡俊;齐放军;吴茂森;何晨阳;;水稻白叶枯病菌过氧化氢酶基因表达的定量分析[A];中国植物病理学会2006年学术年会论文集[C];2006年
9 王长春;蔡新忠;郑重;;高温高湿协同抑制Cf-4/Avr4和Cf-9/Avr9介导的HR[A];中国植物病理学会2009年学术年会论文集[C];2009年
10 王忠华;贾育林;林卉;Barbara Valent;J.Neil Rutger;;水稻抗稻瘟病菌防卫反应的细胞学分析与防卫基因表达研究[A];第六届中国科学家论坛论文汇编[C];2007年
中国重要报纸全文数据库 前6条
1 李延春;摔倒时别用手支地[N];医药养生保健报;2008年
2 本报记者 贺波 本报实习生 周仕兴;大学生:亟需走出“心理贫困”[N];广西日报;2004年
3 王文中;胆的系统功能态初探[N];中国中医药报;2004年
4 顾伯文;心理治疗有物质基础[N];健康报;2002年
5 ;贫困大学生 谨防“心理贫穷”[N];中国文化报;2003年
6 本报记者 刘昆 本报通讯员 周仕兴;帮助贫困生经济心理双脱贫[N];光明日报;2003年
中国博士学位论文全文数据库 前10条
1 裴宝磊;组蛋白H2B单泛素化参与拟南芥抗大丽轮枝菌毒素防卫反应的机理研究[D];中国农业大学;2014年
2 邹保红;染色质修饰基因HUB1和CHR5及转录因子MYB44在拟南芥防卫反应中的功能研究[D];南京农业大学;2013年
3 商文静;壳寡糖对烟草花叶病毒的诱导抗病作用和体外抑制作用[D];西北农林科技大学;2006年
4 贾振华;植物黄酮类化合物槲皮素与转录因子AtMYB44诱导和调控植物防卫反应的研究[D];南京农业大学;2010年
5 李群;钙依赖蛋白激酶和腺苷酸环化酶参与拟南芥响应大丽轮枝菌毒素诱导信号转导过程的实验证据[D];中国农业大学;2005年
6 张书建;植物防卫反应过程中核黄素信号调节的遗传与转录组分析[D];南京农业大学;2007年
7 B.M.V.S. Basnayake;果蝇细胞凋亡抑制因子类似蛋白和MA3蛋白结构域异构酶在拟南芥细胞死亡中的功能分析[D];浙江大学;2009年
8 毕阳;Harpin对厚皮甜瓜果实抗病性的诱导及其生理机制[D];兰州大学;2006年
9 董娜;病原诱导的小麦ERF、MYB转录因子基因TaPIEP1和TaPIMP1的分离、特性及功能分析[D];中国农业科学院;2008年
10 时浩杰;转录因子AtMYB44和AtMYB15在拟南芥防卫反应中的功能研究[D];南京农业大学;2010年
中国硕士学位论文全文数据库 前10条
1 王莲莲;磷脂酶C和磷脂酶D在核黄素诱导烟草悬浮细胞防卫反应中的作用[D];山东农业大学;2012年
2 杨雪;核黄素调节的活性氧信号影响植物防卫反应的初步研究[D];南京农业大学;2008年
3 高蓉;水稻白叶枯病菌XopP/Q和Hpa1蛋白病理功能与植物防卫反应研究[D];南京农业大学;2013年
4 纪睿;疫霉菌激发子PB90诱导烟草细胞凋亡及其分子机制研究[D];南京农业大学;2005年
5 吕术超;受叶锈菌侵染的小麦叶片细胞间隙液中抗病相关蛋白的鉴定[D];河北农业大学;2009年
6 王艳辉;HT-毒素胁迫下CaM在不同基因型玉米防卫反应中的作用研究[D];河北农业大学;2003年
7 贾琴;核黄素受体蛋白对植物开花转型和抗病防卫调控作用的初步研究[D];南京农业大学;2007年
8 刘菲;核黄素激活烟草防卫反应和诱导对两种土传病害的抗性研究[D];山东农业大学;2009年
9 周鑫;番茄叶霉菌基因CfHNNI1诱导植物非寄主抗病性的功能分析[D];浙江大学;2006年
10 杨娟;水稻黄单胞菌xopX基因和avrBs3/PthA基因的克隆与功能研究[D];南京农业大学;2007年
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