鸡骨保护素(chOPG)基因的克隆、表达及生物学活性研究
【摘要】:
骨保护素(osteoprotegerin,OPG)最先发现于哺乳动物,是一种能抑制破骨前体细胞分化、抑制成熟破骨细胞活性并诱导其凋亡的分泌型糖蛋白。体内调节骨代谢的许多激素和细胞因子最终通过调节OPG/RANKL的表达而发挥作用。鉴于OPG在骨代谢中的重要调节作用,本文旨在克隆表达蛋鸡OPG蛋白,并对其生物学活性进行研究,有望为蛋鸡骨质疏松症的防治提供新的治疗手段。
1.建立简便有效的鸡胚破骨细胞体外培养方法,为鸡骨保护素的生物活性研究及笼养蛋鸡骨质疏松症研究提供新的试验手段。主要剔取18日龄鸡胚的长骨,纵向剖开,吹打长骨内表面,获取一定数量细胞悬液接种培养板,2 h后弃去未贴壁细胞,更换新的培养液继续培养。贴壁培养的细胞具有破骨细胞样特点:为多核大细胞,有油煎蛋形、哑铃形、椭圆形;TRAP染色阳性,能在骨片表面形成吸收陷窝。
2.在体外成功培养鸡胚破骨细胞的基础上,体外直接研究依普拉芬、地塞米松对成熟破骨细胞骨吸收功能的影响。以不同浓度的依普拉芬、地塞米松与原代分离的破骨细胞共培养6天,结果发现,10~(-7)-10~(-9)M的依普拉芬可显著抑制破骨细胞性骨吸收、使骨吸收陷窝数目和面积减少,并呈剂量依赖关系;而10~(-6)-10~(-8)M的地塞米松则促进破骨细胞性骨吸收、增加骨吸收陷窝数目面积,亦呈剂量依赖关系。
3.应用RT-PCR方法从体外培养鸡胚成骨细胞中扩增出鸡OPG基因(Genbank登录号,DQ098013),然后将特异性片段连接到pMD18-T载体,经酶切、PCR鉴定及DNA序列测定.结果表明,扩增片段包含完整的ORF,与Genbank上登录的鸡OPG(XM_418394)同源性为99.3%;同时对鸡、人、大鼠和小鼠OPG氨基酸序列进行了多序列比对分析,结果显示,鸡OPG和人OPG的一致性为69.65%,与大鼠及小鼠OPG的一致性均为65.51%。OPG基因的成功扩增为接下来该蛋白的重组表达奠定了基础。
4.设计一对引物用于亚克隆鸡OPG成熟蛋白编码基因(不含信号肽),然后构建鸡OPG原核表达载体pET-32a(+)-chOPGm,通过IPTG诱导表达重组鸡OPG成熟蛋白,经SDS-PAGE电泳分析,原核表达产物为63 kD的重组蛋白,以包涵体形式存在,薄层扫描显示OPG占菌体总蛋白的11.9%,western blotting分析显示,表达的OPG蛋白具有良好的免疫反应性。以经镍离子亲和层析柱纯化的OPG蛋白免疫新西兰白兔,制备抗OPG多克隆抗体,ELISA结果显示抗体效价达到1:10240。Western印迹结果表明,该抗体可以和鸡OPG酵母表达产物特异性结合。
5.设计另一对引物用于亚克隆鸡OPG成熟蛋白编码基因(不含信号肽),然后构建鸡OPG真核表达载体pPICZa-A-chOPGm’,以电穿孔法转化酵母X-33,用Zeocin平板筛选重组子,经甲醇诱导表达后,SDS-PAGE和免疫印迹分析表达产物,由于糖基化不同,表达产物有两种,其相对分子量分别为43 kD和53 kD,表达量约为200mg/L,经Western印迹验证,有较好的抗原性。表达产物经处理后加入到体外培养的鸡胚破骨细胞上,能显著抑制成熟破骨细胞的骨吸收活性,使骨吸收陷窝个数和面积均减少,证实表达的OPG蛋白具有抑制成熟破骨细胞骨吸收活性的功能。
6.100羽56周龄ISA蛋鸡分为5组,A组为对照组,B、C、D、E组每隔3 d肌肉注射剂量分别为100μg、200μg、300μg、400μg的鸡骨保护素酵母表达冻干产物水溶物。每周采血测血钙、血磷、碱性磷酸酶、抗酒石酸酸性磷酸酶和骨钙素。每天记录产蛋量、破壳蛋数,测定蛋壳强度和厚度。最后测定骨生物力学性能和骨密度。结果表明:B、C两组总平均产蛋率显著高于对照组和其它实验组。与A组相比,用药组总平均软破壳蛋率下降,其中B、C两组差异显著(P0.05)。各组蛋壳厚度和强度无明显差异;用药组血钙显著低于对照组,血磷无明显差异;B、C、D组碱性磷酸酶活性显著高于对照组(P0.05);C、D两组骨钙素水平显著高于对照组(P0.05);E组抗酒石酸酸性磷酸酶活性显著低于对照组(P0.05);C组胫骨生物力学性能和放射骨密度显著高于对照组。结论:适当剂量(约200μg)的外源OPG蛋白可以改善骨代谢、提高产蛋量。
【关键词】:ISA蛋鸡 骨保护素 克隆 表达 生物活性 破骨细胞 骨质疏松 【学位授予单位】:南京农业大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2007
【分类号】:S858.31
【目录】:
- 中文摘要8-10
- 英文摘要10-13
- 缩略语13-14
- 前言14-16
- 上篇 文献综述16-53
- 第一章 OPG/RANKL/RANK系统的功能及其调控机制16-38
- 1 骨保护素(OPG)的结构及功能16-19
- 2 RANKL—OPG的假性配体19-22
- 3 RANK—RANKL的受体22-24
- 4 OPG/RANKL/RANK系统对破骨细胞的调控机制24-26
- 5 OPG/RANKLIRANK系统与代谢性骨病26-28
- 6 OPG/RANKL/RANK系统与免疫系统间的相互作用28-29
- 7 OPG/RANKL/RANK系统的骨外作用29-30
- 8 OPG/RANKL/RANK系统的临床应用前景30-38
- 第二章 破骨细胞的起源、分化及其影响因子38-53
- 1 破骨细胞的特征38-39
- 2 破骨细胞的起源、分化及骨吸收机制39-41
- 3 破骨细胞分化的信号传导41-43
- 4 破骨细胞性骨吸收的调节43-47
- 5 如何在实验室获得足够量的破骨细胞47-53
- 下篇 试验研究53-131
- 第三章 鸡胚破骨细胞的分离培养与鉴定53-62
- 1 材料与方法53-55
- 2 结果55-58
- 3 讨论58-59
- 4 小结59-60
- 参考文献60-61
- 英文摘要61-62
- 第四章 依普拉芬、地塞米松对体外培养鸡胚破骨细胞骨吸收功能的影响62-72
- 1 材料与方法62-64
- 2 结果64-67
- 3 讨论67-68
- 4 小结68-69
- 参考文献69-71
- 英文摘要71-72
- 第五章 鸡骨保护素(chOPG)编码区基因的克隆与序列分析72-86
- 1 材料与方法72-76
- 2 结果76-83
- 3 讨论83
- 4 小结83-84
- 参考文献84-85
- 英文摘要85-86
- 第六章 鸡骨保护素(chOPG)的原核表达、纯化及抗体制备86-100
- 1 材料与方法86-92
- 2 结果92-96
- 3 讨论96-97
- 4 小结97-98
- 参考文献98-99
- 英文摘要99-100
- 第七章 鸡骨保护素(chOPG)在毕赤酵母中的表达及生物学活性测定100-114
- 1 材料与方法101-107
- 2 结果107-110
- 3 讨论110-111
- 4 小结111-112
- 参考文献112-113
- 英文摘要113-114
- 第八章 鸡骨保护素酵母表达冻干产物对产蛋后期ISA蛋鸡生产性能和骨代谢的影响114-131
- 1 材料与方法115-118
- 2 结果118-126
- 3 讨论126-127
- 4 小结127-129
- 参考文献129-130
- 英文摘要130-131
- 全文结论131-132
- 本文创新之处132-133
- 攻读博士学位期间发表论文133-134
- 致谢134-135
- 附录135-138
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