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《南京农业大学》 2007年
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Harpins蛋白诱导植物防卫和生长及四种激素信号的交叉调控作用

钱君  
【摘要】: 植物防卫反应的激活是通过植物识别激发子开始的,激发子是由病原物编码的分子,如:微生物蛋白、小肽及多糖等。当遭遇外界各种不同的刺激时,植物会迅速启动反应机制,调用多个信号通路中相关的调控因子,重新编排形成高效的信号网络,应对面临的生存危机。植物如何根据不同的外源信号调用相关的因子,并使其“各就各位”发挥作用,是目前植物科学领域研究的重要话题。 革兰氏阴性植物病原细菌产生的蛋白质激发子harpins可诱导植物多种反应,如抗病,抗虫,促生长和抗旱等。作为一种多功能激发子,它非常有利于研究植物在生长发育,抗病防卫,抗虫和抗逆等过程中的相关信号传导机制。于是,harpins如何被植物识别,如何引发各种效应,并且这些反应中有哪些信号通路参与,它们相互之间有没有交叉对话,如何交叉对话、以及harpins如何实现这些功能等多个问题成为了研究的重点。 1.不同HpaG_(Xooc)功能片段的分离鉴定及对植物的诱导抗病和促生长作用 Harpins是由革兰氏阴性植物病原细菌产生的一类蛋白质激发子,他们的共同特点是:富含甘氨酸、热稳定、对蛋白酶敏感,注射到产生菌的非寄主植物叶片细胞间隙后,可以诱导过敏性细胞死亡(hypersensitive cell death,HCD),诱导植物产生防卫反应、促进植物生长。Harpin蛋白的不同效应,有些是对植物有益的,而这些效应的发生可能是依赖于蛋白质不同的功能域实现的。分离、鉴定蛋白质有益和有害的功能区域,更有利于我们将harpin相关蛋白应用于农作物,而不产生诸如细胞坏死之类的负面效应。 水稻细菌性条斑病菌(Xanthomonas oryzae pv.oryzicola)Hpa G_(Xooc)作为Harpin蛋白家族中的一员,包含两个富含甘氨酸的结构域(glycine-rich motif,GRM),一个半胱氨酸残基(cysteine)。GRM是Harpin类蛋白质共有的特征,而半胱氨酸则是其他Harpin类蛋白质所没有的。本研究根据HpaG_(Xooc)不同功能域和区段,基于PCR的体外诱变技术产生九个HpaG_(Xooc)的蛋白质功能片段,分别为HpaG_(1-105)、HpaG_(1-94)、HpaG_(1-61)、HpaG_(1-47)、HpaG_(7-61)、HpaG_(62-137)、HpaG_(10-42)、HpaG_(95-137)、HpaG_(84-94),右下角的数字分别代表了蛋白质所包括的HpaG_(Xooc)相应的氨基酸区域.将这九个片段体外表达,产生的蛋白质施用于烟草(Nicotiana tabaccum)和水稻(Oryza sativa)能产生不同的效应。HapG_(1-94)、HpaG_(95-137)、HpaG_(84-94)和HpaG_(Xooc)诱导细胞死亡的能力相近,HpaG_(1-105)、HpaG_(1-61)、HpaG_(1-47)、HpaG_(7-62)及△GRM诱导细胞死亡的能力高于HpaG_(Xooc)63%以上;HpaG_(62-137)诱导细胞死亡的能力是HpaG_(Xooc)的2倍,但是HpaG_(10-42)诱导细胞死亡的能力低于其他蛋白约90%以上。 同HpaG_(Xooc)全长蛋白相比较,HpaG_(62-137)能在烟草上诱导更强的HCD,而HpaG_(10-42)不表现明显的细胞死亡,但都能在水稻上能激发更强的防卫反应和促进植株更快的生长。在检测的9个片段及全长蛋白质中,对水稻白叶枯病菌(Xanthomonasoryzae pv.oryzae)的抗性诱导效应中,HpaG_(10-42)诱导效应最强,HpaG_(1-61)和HpaG_(7-61)次之,HpaG_(62-137)的诱导抗病性效应表现为最低;而对稻瘟病菌(Magnaporthe grisea)的诱导抗性效应中,HpaG_(62-137)处理的叶片上仅能看到侵染点,没有明显的坏死斑;而HpaG_(10-42)处理的叶片上甚至连坏死斑都无法看见。因此,HpaG_(10-42)能同时抑制细菌和真菌病原的致病性。在对水稻的促生长效应中,以HpaG_(Xooc)为对照,HpaG_(1-105)、HpaG_(1-62)、HpaG_(1-47)、HpaG_(62-137)和HpaG_(84-94)的促生长效应较弱;但是△GRM、HpaG_(1-94)、HpaG_(7-61)及HpaG_(10-42)处理后根系分别增长了15%、55%、20%和48%。因此HpaG_(1-94)和HpaG_(10-42)在促进水稻生长的效应最强。 在蛋白粗提液实验中HpaG_(1-94)、HpaG_(10-42)、HpaG_(62-137)和△GRM对植物的作用明显强于HpaG_(Xooc),因此我们将这几种蛋白质进行镍柱纯化,并进一步检测、验证他们的生物活性以确证上面的实验结果。从结果可以看出不管是粗蛋白提取液还是纯化蛋白质均表现相同的效应。 由于在检测的所有蛋白质中HpaG_(62-137)和HpaG_(10-42)表现为更高水平的HCD诱导活性及所有其他有益效应,因此我们使用HpaG_(62-137)和HpaG_(10-42)同HpaG_(Xooc)相比较,来检测他们在诱导植物HCD和激活生长防卫相关信号传导通路的活性。HpaG_(62-137)处理后HCD标志基因hsr203和hin1基因在处理6小时后就开始积累转录,并随着处理时间的推移叶片中的表达量也逐渐增加;处理48小时后,HpaG_(62-137)处理的叶片中这两个基因的表达量明显强于HpaG_(Xooc)的处理。此外HpaG_(10-42)处理6个小时后防卫反应基因NPR1和PR1开始被诱导表达;特别是PR1基因的表达明显地依赖于诱导,因为在处理0小时时没有明显的组成性表达。从HpaG_(10-42)和HpaG_(Xooc)处理48小时后NPR1和PR1基因表达的结果可以看出,HpaG_(10-42)的诱导表达效应明显强于HpaG_(Xooc)。由于HpaG_(10-42)的诱导活性明显强于HpaG_(Xooc)全长蛋白质的活性,因此可以解释我们所观察到的植物上有益效应的表型。我们同时发现某些特异性片段相比较全长蛋白更能有效地激活某些信号通路。总之,本研究结果阐释了一个HpaG_(Xooc)的特异性片段HpaG_(10-42)能促进水稻生长和诱导抗病性,具有潜在的农业应用价值。 2.HrpN_(Ea)诱导植物生长和膨胀素基因表达及乙烯与赤霉素的调控作用 膨胀素(Expansin)是植物细胞生长期间释放的一种能使细胞壁松弛的蛋白质,是细胞壁的关键调节剂,对细胞生长有重要作用。有研究表明植物激素介导了膨胀素的功能,但是植物激素是特异性作用还是共同起作用及作用机制仍然不是很清楚。本文报道了HrpN_(Ea)促进植物生长和诱导expansin基因表达所启动的不同信号通路。 拟南芥浸种处理15天后在MS平板上可以看见,HrpN_(Ea)可以明显的促进根系生长,根系增长89%,幼苗鲜重增加67%;同样盆播幼苗在HrpN_(Ea)喷雾处理15天和30天后也明显的促进的植株地上部分的生长。HrpN_(Ea)浸种番茄后可以促进种子萌发、根系生长及后期的营养生长,HrpN_(Ea)处理12天后植株高度增加46%,鲜重增加52%。烟草在HrpN_(Ea)处理20天后可以看见促生长作用,到40天促生长作用更明显,高度和鲜重分别增加32%和50%,到处理60天营养生长后期,与对照相比,地上部分生长明显加快,茎节粗壮,叶片肥大,长势旺盛。HrpN_(Ea)处理水稻后极大的促进了种子萌发和根系生长,处理12天后可以明显观察到促生长作用,高度和鲜重分别增加56%和48%,直接促进了幼苗的生长.此外与对照相比,HrpN_(Ea)不仅增加了植株叶面积,而且还增加了叶片数量。HrpN_(Ea)明显增加植物体内全氮含量,其提高幅度分别比对照高28%(拟南芥),36.4%(番茄),28.9%(烟草)和25.4%(水稻)。HrpN_(Ea)浸种处理四种植物10天后,叶绿素a和叶绿素b及叶绿素总量均明显增加。此外,HrpN_(Ea)处理后,叶绿素a/b比值也显著高于对照处理。当HrpN_(Ea)喷雾处理10天与20天的植株地上部分后,叶片全氮量和叶绿素含量同样增加。因此,HrpN_(Ea)通过影响基本生理过程来强化植物的生物合成功能和增加植物生物学产量. 我们检测了HrpN_(Ea)处理四种不同植物后对生长相关基因的诱导表达。HrpN_(Ea)处理后拟南芥AtEXP7在叶片和茎中表达不明显,而在根中表达量较高;LeEXP2和LeEXP5在茎中表达而在叶片和根中不表达;另外8个EXPs,包括AtEXP10和AtEXP2在叶片中表达量高,而在根和茎中表达量较低。同时AtEXP16和NtEXP2的诱导表达分别相似于AtEXP10和NtEXP2,在叶片中特异性表达的EXPs如AtEXP10、LeEXP2和NtEXP2,在根和茎中转录水平明显降低。在不同的器官、不同的处理模式及诱导时间的不同,基因表达水平也不相同。AtEXP2、LeEXP18和NtEXP2表达模式相同,在处理72小时和96小时内随着处理时间的推移表达量逐渐增加。相反地,其他的EXPs基因在处理6小时后直到72小时始终保持高水平表达量。 为了阐释HrpN_(Ea)诱导EXPs基因表达和促生长作用同乙烯信号通路的相关性,我们测定了HrpN_(Ea)处理后乙烯信号通路中关键基因的表达情况及同EXPs表达的关系。拟南芥中ETR1的表达受HrpN_(Ea)诱导,并且随着诱导时间表达量逐渐增强;EIN2表达是组成性的,并且在HrpN_(Ea)处理6小时后表达量快速增加达到顶峰,随后不再增加。HrpN_(Ea)处理后乙烯信号通路的标志基因PDF1.2和PR-3b被诱导表达,说明HrpN_(Ea)激活乙烯信号通路。同样地,在番茄和烟草中编码乙烯受体类的基因LeETR1和NtETR1在HrpN_(Ea)处理后也诱导表达,并且在对照和处理0小时时没有明显的组成性表达。HrpN_(Ea)喷雾处理20天拟南芥野生型和突变体etr1-1幼苗后,突变体中的AtEXP10的表达量相比较野生型极大的降低,处理2天后,突变体中基因表达水平仅是野生型的5%。当用HrpN_(Ea)和乙烯抑制剂1-MCP混合处理番茄、烟草和水稻幼苗后,LeEXP2、NtEXP2和OsEXP4基因的表达量比HrpN_(Ea)单独处理时有明显的下降。HrpN_(Ea)和1-MCP共同处理番茄、烟草和水稻后,植株的生长明显受到抑制。因此,在供试的四种植物中,乙烯的接受在HrpN_(Ea)促生长和诱导EXP基因的表达过程中是关键的。 我们比较了HrpN_(Ea)和GA_3对水稻OsEXPs基因的影响。水稻中EXPs基因均能被HrpN_(Ea)和GA_3诱导增强表达。水稻中HrpN_(Ea)诱导OsEXP2、OsEXP4和OsEXP16表达增强,作用类似于GA_3。但HrpN_(Ea)的作用明显滞后于GA_3,并且诱导效应低于GA_3。尤其是OsEXP2和OsEXP16,在GA_3处理6小时后开始持续增强表达,而HrpN_(Ea)处理12小时后表达水平才逐渐增强。OsEXP4基因在处理12小时后表达开始明显增强,然后一直保持在正常表达水平。我们使用了赤霉素合成抑制剂pp333来验证HrpN_(Ea)在诱导EXP基因的表达和促生长作用是否需要赤霉素信号传导。HrpN_(Ea)处理水稻幼苗后OsEXP4被极大地诱导增强表达,HrpN_(Ea)和抑制剂pp333共处理后,OsEXP4的表达却被抑制了。在番茄和烟草中,pp333同样抑制了HrpN_(Ea)对LeEXP2和NtEXP2诱导表达效应。以上结果可知,HrpN_(Ea)诱导EXPs基因的表达和促生长效应需要赤霉素信号通路。为了检测拟南芥中赤霉素是否参与了HrpN_(Ea)促生长和诱导AtEXP基因过程,研究使用了野生型(Col-0)植株和赤霉素合成突变体ga5-1。HrpN_(Ea)诱导AtEXP7基因在根中增强表达,而AtEXP10基因在叶中被诱导增强表达;同野生型相比,突变体ga5-1在HrpN_(Ea)处理后这两个基因均没有明显的表达。浸种试验中,HrpN_(Ea)不能诱导ga5-1的促生长效应。因此,阻断赤霉素合成同样消弱了HrpN_(Ea)的促生长和诱导EXPs基因表达的作用。 本研究结果说明HrpN_(Ea)促生长和诱导EXPs基因表达需要乙烯和赤霉素信号通路。 3.烟草诱导防卫与生长调控相关基因CES1的克隆和功能初步分析 本实验室以前使用病毒TMV N14和CMV SV52分别诱导处理NC89后,通过体细胞无性系繁殖得到两个突变体ces1-1、ces2-1,三者在抗病性和长势上存在明显差异,在幼苗期ces2-1的长势最强,ces1-1的长势最弱;5-6叶期之后NC89的长势最强,而ces2-1的长势减弱,ces1-1的长势最弱。5-6叶期接种烟草赤星病菌(Alternaria alternata)发现,ces1-1、ces2-1的抗病性较NC89明显强,且ces2-1较ces1-1强。 本研究中利用差显片段设计特异性引物,RACE法克隆到全长基因,CES1基因ORF长372 bp碱基,翻译出的蛋白质一级机构包括124个氨基酸,命名为CES1(constitutive expresser of systemic acquired resistancel)。通过功能分析发现,此蛋白质在53-69 bp之间有一个富含脯氨酸/苏氨酸区域(Pro/Thr-rich domain)、含有一个氨基葡聚糖结合位点、两个蛋白激酶C磷酸化位点、两个酪氨酸蛋白激酶Ⅱ磷酸化位点以及三个N端酰基化位点。在线预测该蛋白质发现有2个α-螺旋、3个β-片、6个翻转。由于此蛋白质研究较少,没有预测到此蛋白质的空间结构。二级结构预测没有发现信号肽。通过序列比对发现该基因是在高等植物中是保守的,并且在N末端和C末端高度保守。2,4-D和HrpN_(Ea)处理后均增强了突变体的抗病性,并诱导增强防卫相关基因的表达。农杆菌介导的洋葱表皮细胞GFP瞬时表达实验表明:CES1定位于细胞核内。通过抗病性分析发现,CES1正向调节抗病性,负向调节生长。 4.乙烯与脱落酸信号共同调控HrpN_(Ea)诱导的韧皮部防卫反应与昆虫驱避 植物韧皮部相关防卫(plant phloem-related defense,PRD)能够抵抗刺吸式昆虫的取食。已知HrpN_(Ea)类生物激发子能够激发抗虫信号传导途径,可能参与了韧皮部防卫反应的诱导,但是抗虫途径如何调节PRD反应仍是未知的。本章初步研究了拟南芥ABA和ET信号传导通路协同作用参与了HrpN_(Ea)介导的PRD反应及抗虫驱避效应,并且初步筛选了13个受HXpN_(Ea)上调并且参与调控ABA和ET信号通路的转录调节因子。原位杂交及化学发光实验结果证明HrpN_(Ea)处理后可以增加在韧皮部产生韧皮部相关蛋白的表达及沉积胼胝质,两者共同构成了PRD反应,并且有利于驱避蚜虫、减少蚜虫韧皮部取食活动;实验结果证明HrpN_(Ea)诱导的蚜虫驱避效应需要EIN2扣ABI2因子的协同作用,同时蚜虫的取食活动同驱避效应有关。 对拟南芥生态型Col-0和Ler-0在HxpN_(Ea)处理后蚜虫趋避效应以及蚜虫刺吸电子信号分析,结果表明蚜虫更喜好取食Col-0型植株;同时对照处理中,蚜虫驱避效应主要发生在20-40分钟和3-12小时两个阶段;而在HrpN_(Ea)处理中,蚜虫驱避主要集中在1-12小时。此外,HrpN_(Ea)处理增加了蚜虫对叶片的试探性的刺吸,而韧皮部取食活动明显降低,说明处理后降低了蚜虫对植株的取食喜好。 为了确定HrpN_(Ea)处理后ET和ABA信号传导途径是否影响蚜虫的取食活动,我们使用了拟南芥ET和ABA信号通路相关的突变体。HrpN_(Ea)处理后,突变体ein5-1和abi1-1在HrpN_(Ea)处理后,同野生型处理一样降低了蚜虫取食的喜好。相反地,突变体ein2-1和abi2-1处理后这种降低效应不明显,蚜虫喜好没有明显降低,对蚜虫的活动没有明显的影响。因此,HrpN_(Ea)诱导植株的蚜虫趋避效应需要EIN2和ABI2的协同作用,主要作用在蚜虫韧皮部取食活动阶段,降低蚜虫对植物的喜好。 遗传学和化学药物抑制双重实验结果说明,ET和ABA信号通路交叉调控HrpN_(Ea)诱导的抑制蚜虫繁殖力的效应,植株ET和ABA的产生及接受能力对于蚜虫趋避是很关键的。化学抑制ABA不敏感突变体abi2-1中ET的接受以及化学抑制乙烯不敏感突变体ein2-1中ABA生物合成均抑制了HrpN_(Ea)的诱导效应。 同时罗丹明B及胼胝质沉积的化学发光实验也证明HrpN_(Ea)处理后降低了蚜虫对植株的取食喜好,增加了韧皮部胼胝质沉积,并且这一过程需要EIN2和ABI2的协同作用。通过分析ET和ABA信号通路中关键基因和标志基因以及韧皮部相关基因的表达谱,表明HrpN_(Ea)处理后,ET和ABA信号途径协同作用,并且EIN2作用于ABI2的上游。通过对花柱顶端横切面的原位杂交结果可以看出,AtPP2-A1和AtPP2-A2基因定位在韧皮部,并且在HrpN_(Ea)处理的植株中杂交信号强于对照植株。 5.总结 通过以上研究结果,我们对harpins诱导防卫和调控生长的作用机理有了更进一步的认识。第一,本研究根据HpaG_(Xooc)不同功能域和区段,分离、鉴定了九个HpaG_(Xooc)的蛋白质功能片段,并对不同的功能片段进行了生物活性测定,结果显示不同的功能片段在植物上的效应也不相同,其中功能片段HpaG_(62-137)能在烟草上诱导更强的HCD,而HpaG_(10-42)不表现明显的细胞死亡,但他们都能在水稻上激发更强的防卫反应和促进植株更快的生长。第二,HrpN_(Ea)促进植物生长过程中,诱导了细胞壁松弛蛋白基因EXPs基因的表达,并且两者需要通过乙烯和赤霉素信号通路。在番茄、烟草和拟南芥中,抑制赤霉素合成和乙烯接受同样也抑制了HrpN_(Ea)诱导EXP基因表达和促生长效应。第三,本论文初步研究了拟南芥脱落酸(ABA)和乙烯(ET)信号传导通路参与了HrpN_(Ea)介导的PRD反应及抗虫趋避效应,结果证明HrpN_(Ea)诱导的蚜虫趋避效应需要EIN2(ETHYLENE INSENSITIVE 2)和ABI2(ABA INSENSITIVE 2)因子的协同作用,原位杂交及化学发光实验结果证明HrpN_(Ea)处理后可以增加在韧皮部产生韧皮部相关蛋白的表达及沉积胼胝质,并且初步筛选了13个受HrpN_(Ea)上调并且参与调控ABA和乙烯信号通路的转录调节因子。
【学位授予单位】:南京农业大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2007
【分类号】:S432.1

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10 ;Identification of differentially expressed genes associated with bud dormancy release in tree peony(Paeonia suffruticosa) by suppression subtractive hybridization[J];Forestry Studies in China;2008年02期
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3 张佳环;;植物病原细菌Harpin家族的特征[A];中国植物病理学会2010年学术年会论文集[C];2010年
4 ;Molecular Cloning and Expression Analysis for tlp,arp and mlp Genes in Yunnan Red Pears[A];中国植物生理学会第十次会员代表大会暨全国学术年会论文摘要汇编[C];2009年
5 ;Cold stress-induced Transcriptome Changes in cassava(Manihot esculenta Crantz) by Long Oligonucleotide Microarray[A];植物分子生物学与现代农业——全国植物生物学研讨会论文摘要集[C];2010年
6 ;Recent Progress in Arabidopsis Research in China:A Preface[A];第四届拟南芥学术研讨会论文集[C];2005年
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4 周博如,刘太国,杨微,李永镐;不同抗性的大豆品种感染细菌性疫病后POD、PPO变化的研究[J];大豆科学;2002年03期
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6 丛延广,徐启旺;利用Mini-Tn5转座子诱导弗氏枸橼酸杆菌插入突变的研究[J];第三军医大学学报;2004年13期
7 李惠,赵明磊,尹隽,钟江;利用Tn5转座子构建杆状病毒AcMNPV随机突变体的初步研究[J];复旦学报(自然科学版);2005年04期
8 徐伟;王鹏;张兴;;微波辐照对干酪乳杆菌高产L-乳酸的诱变效应[J];辐射研究与辐射工艺学报;2007年05期
9 赵立平,梁元存,刘爱新,董汉松,张晋丹,申泉,徐文联;表达harpin基因的大肠杆菌DH5(pCPP430)诱导植物抗病性的研究[J];高技术通讯;1997年09期
10 生秀杰,王太一;基因打靶的策略及其发展[J];国外医学.遗传学分册;2001年01期
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3 韦梅良;用野油菜黄单胞菌插入突变体库筛选与胞外蛋白酶产生相关的基因[D];广西大学;2002年
4 闫双勇;水稻T-DNA插入突变体库的构建与初步分析[D];四川农业大学;2004年
5 姚红梅;上海地区大豆细菌性疫病病原鉴定及病害的发生为害和防治对策[D];浙江大学;2005年
6 陈红宇;吉林省烟草野火病菌生理分化研究[D];吉林农业大学;2007年
7 吴晓静;水稻细条斑病菌harpin蛋白HpaG_(Xooc)与其功能片段的生物效应及对绿茶产量和生化品质的影响[D];南京农业大学;2007年
8 魏代福;山东省烟草野火病的调查鉴定及其综合防治技术的研究[D];山东农业大学;2007年
【二级引证文献】
中国硕士学位论文全文数据库 前1条
1 金雪菲;丁香假单胞菌Harpin蛋白诱导烟草抗野火病活性研究[D];吉林农业大学;2012年
【相似文献】
中国期刊全文数据库 前10条
1 何晨阳,王金生;抗病植物的防卫反应和机制[J];生物学通报;1994年05期
2 周建明,朱群,白永延;高等植物防卫反应的信号传导[J];植物学通报;1999年03期
3 李骥,刘进元;一个新型的棉花几丁质酶基因(英文)[J];Acta Botanica Sinica;2003年12期
4 焦春香;;活性氧与植物防卫反应[J];大理学院学报;2006年10期
5 王炎钦;姜玉新;;激发子诱导的信号通路的研究进展[J];科技通报;2007年03期
6 郭泽建,李德葆;活性氧与植物抗病性[J];植物学报;2000年09期
7 赵中秋,郑海雷,张春光;植物抗病的分子生物学基础[J];生命科学;2001年03期
8 王婷;王金生;;U-1分解草酸的检测及其降低草酸毒性的研究[J];微生物学杂志;2007年04期
9 张蓓;刘刚;王冬梅;;植物抗病防卫反应中的特异性钙信号[J];细胞生物学杂志;2008年05期
10 孙枫;刘裴清;董汉松;;昼夜节律调控拟南芥核黄素信号传导[J];江苏农业科学;2010年02期
中国重要会议论文全文数据库 前10条
1 张之为;赵君;樊明寿;娜仁;杨帆;;AtROP1负向调控马铃薯防卫反应体系的建立[A];中国植物病理学会2010年学术年会论文集[C];2010年
2 何祖华;;水稻防卫反应的功能基因组学研究[A];中国植物生理学会全国学术年会暨成立40周年庆祝大会学术论文摘要汇编[C];2003年
3 陶宗娅;田小凤;向述莲;;小麦防卫反应酶系对赤霉菌毒素和水杨酸处理的响应[A];中国植物生理学会全国学术年会暨成立40周年庆祝大会学术论文摘要汇编[C];2003年
4 王源超;李德葆;;疫霉菌诱导非寄主植物防卫反应信号分子的研究[A];江苏省植物病理学会第九届会员代表大会暨学术研讨会论文集[C];1999年
5 张书建;龙菊英;董汉松;;Priming与植物诱导抗病性[A];中国植物病理学会2008年学术年会论文集[C];2008年
6 蔡向阳;吴祖建;江茂生;;寡糖诱导作用在植物抗性中的应用[A];福建省科协第五届学术年会提高海峡西岸经济区农业综合生产能力分会场论文集[C];2005年
7 吕术超;侯春燕;刘刚;王冬梅;;受叶锈菌侵染的小麦细胞间隙液中抗病相关蛋白的鉴定[A];中国植物生理学会第十次会员代表大会暨全国学术年会论文摘要汇编[C];2009年
8 王长春;蔡新忠;郑重;;高温高湿协同抑制Cf-4/Avr4和Cf-9/Avr9介导的HR[A];中国植物病理学会2009年学术年会论文集[C];2009年
9 周建波;胡俊;齐放军;吴茂森;何晨阳;;水稻白叶枯病菌过氧化氢酶基因表达的定量分析[A];中国植物病理学会2006年学术年会论文集[C];2006年
10 王忠华;贾育林;林卉;Barbara Valent;J.Neil Rutger;;水稻抗稻瘟病菌防卫反应的细胞学分析与防卫基因表达研究[A];第六届中国科学家论坛论文汇编[C];2007年
中国重要报纸全文数据库 前6条
1 李延春;摔倒时别用手支地[N];医药养生保健报;2008年
2 本报记者 贺波 本报实习生 周仕兴;大学生:亟需走出“心理贫困”[N];广西日报;2004年
3 王文中;胆的系统功能态初探[N];中国中医药报;2004年
4 顾伯文;心理治疗有物质基础[N];健康报;2002年
5 ;贫困大学生 谨防“心理贫穷”[N];中国文化报;2003年
6 本报记者 刘昆 本报通讯员 周仕兴;帮助贫困生经济心理双脱贫[N];光明日报;2003年
中国博士学位论文全文数据库 前10条
1 裴宝磊;组蛋白H2B单泛素化参与拟南芥抗大丽轮枝菌毒素防卫反应的机理研究[D];中国农业大学;2014年
2 邹保红;染色质修饰基因HUB1和CHR5及转录因子MYB44在拟南芥防卫反应中的功能研究[D];南京农业大学;2013年
3 商文静;壳寡糖对烟草花叶病毒的诱导抗病作用和体外抑制作用[D];西北农林科技大学;2006年
4 贾振华;植物黄酮类化合物槲皮素与转录因子AtMYB44诱导和调控植物防卫反应的研究[D];南京农业大学;2010年
5 李群;钙依赖蛋白激酶和腺苷酸环化酶参与拟南芥响应大丽轮枝菌毒素诱导信号转导过程的实验证据[D];中国农业大学;2005年
6 张书建;植物防卫反应过程中核黄素信号调节的遗传与转录组分析[D];南京农业大学;2007年
7 B.M.V.S. Basnayake;果蝇细胞凋亡抑制因子类似蛋白和MA3蛋白结构域异构酶在拟南芥细胞死亡中的功能分析[D];浙江大学;2009年
8 毕阳;Harpin对厚皮甜瓜果实抗病性的诱导及其生理机制[D];兰州大学;2006年
9 董娜;病原诱导的小麦ERF、MYB转录因子基因TaPIEP1和TaPIMP1的分离、特性及功能分析[D];中国农业科学院;2008年
10 时浩杰;转录因子AtMYB44和AtMYB15在拟南芥防卫反应中的功能研究[D];南京农业大学;2010年
中国硕士学位论文全文数据库 前10条
1 王莲莲;磷脂酶C和磷脂酶D在核黄素诱导烟草悬浮细胞防卫反应中的作用[D];山东农业大学;2012年
2 高蓉;水稻白叶枯病菌XopP/Q和Hpa1蛋白病理功能与植物防卫反应研究[D];南京农业大学;2013年
3 纪睿;疫霉菌激发子PB90诱导烟草细胞凋亡及其分子机制研究[D];南京农业大学;2005年
4 杨雪;核黄素调节的活性氧信号影响植物防卫反应的初步研究[D];南京农业大学;2008年
5 吕术超;受叶锈菌侵染的小麦叶片细胞间隙液中抗病相关蛋白的鉴定[D];河北农业大学;2009年
6 王艳辉;HT-毒素胁迫下CaM在不同基因型玉米防卫反应中的作用研究[D];河北农业大学;2003年
7 贾琴;核黄素受体蛋白对植物开花转型和抗病防卫调控作用的初步研究[D];南京农业大学;2007年
8 刘菲;核黄素激活烟草防卫反应和诱导对两种土传病害的抗性研究[D];山东农业大学;2009年
9 周鑫;番茄叶霉菌基因CfHNNI1诱导植物非寄主抗病性的功能分析[D];浙江大学;2006年
10 杨娟;水稻黄单胞菌xopX基因和avrBs3/PthA基因的克隆与功能研究[D];南京农业大学;2007年
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