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《温州大学》 2016年
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杨梅中酚类抗氧化剂和生长激素分离分析

史文霞  
【摘要】:本论文研究工作分为两部分,第一部分研究工作是对杨梅叶子、果肉及种子中的总的酚类物质含量及各部位抗氧化性进行了测定,研究了酚类物质分离的最佳气相条件并用气相-质谱联用仪(GC-MS)和气相色谱仪(GC-FID)对各部位进行分离测定。第二部分工作是研究了生长素分离的最佳条件,并用GC-MS和GC-FID对杨梅果肉及不同成熟度的叶子及树枝中的生长素进行了分离测定。在第一部分研究内容中运用紫外-可见分光光度仪(UV-Vis)测定出杨梅叶子、果肉及种子中的酚类物质总量(TPC)并结合DPPH自由基测定其总的抗氧化性(TAC),结果表明,杨梅叶子中含有的TPC(168.26 mg/g)及TAC(226.84 mg/g)的含量最高,种子中含有的TPC(38.08 mg/g)及TAC(23.00 mg/g)的含量最低。本文还研究了酚类物质分离的最佳气相条件,并运用气相—质谱联用仪(GC-MS)及气相色谱仪(GC-FID)对杨梅三个部位进行了分离分析,结果,在杨梅叶子中测定出四种酚酸类物质及四种物质的含量,分别是水杨酸、对羟基苯甲酸、阿魏酸和白藜芦醇,其含量分别为149μg/g、123.4μg/g、302.2μg/g和138.2μg/g,其回收率在78.36℅-89.12℅之间。在杨梅果肉中分离测定出两种酚酸类物质及两种物质的含量,分别是水杨酸和白藜芦醇,其含量分别为153.6μg/g和304.6μg/g,其回收率分别为86.69℅和85.51℅。在第二部分内容中研究了生长素分离的最佳气相条件,并用气相—质谱联用仪(GC-MS)和气相色谱仪(GC-FID)对杨梅果肉及各种不同成熟度的叶子及树枝进行了分离分析。最终测定出杨梅老叶中含有53.8μg/g 1-萘乙酸,130.8μg/g 3-吲哚丁酸和67.7μg/g 3-吲哚乙酸;杨梅新叶中含有96.6μg/g 1-萘乙酸,202.6μg/g 3-吲哚丁酸和131.7μg/g 3-吲哚乙酸;杨梅嫩叶中含有159.8μg/g 1-萘乙酸,340.0μg/g 3-吲哚丁酸和195.1μg/g 3-吲哚乙酸;其回收率都在75.12℅-120.18℅范围内。杨梅老枝中含有71.1μg/g 1-萘乙酸,55.3μg/g 3-吲哚丁酸和70.2μg/g 3-吲哚乙酸;杨梅新枝中含有196.0μg/g 1-萘乙酸,99.4μg/g3-吲哚丁酸和129.0μg/g 3-吲哚乙酸;杨梅嫩中含有242.3μg/g 1-萘乙酸,182.0μg/g 3-吲哚丁酸和187.5μg/g 3-吲哚乙酸;其回收率在72.35℅-98.82℅范围内。杨梅果肉中含有150.6μg/g 1-萘乙酸,449.1μg/g 3-吲哚丁酸和246.9μg/g 3-吲哚乙酸;其回收率分别为108.32℅,88.35℅和107.45℅。从测量结果可以看出,越不成熟的部位所含生长素的含量越多。
【关键词】:杨梅 酚类物质 抗氧化性 气相-质谱联用仪 气相色谱仪 紫外-可见分光光度仪 生长素
【学位授予单位】:温州大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2016
【分类号】:TS255.1
【目录】:
  • 摘要4-6
  • ABSTRACT6-11
  • 第一章 绪论11-21
  • 1.1 研究背景11-12
  • 1.2 杨梅中酚类物质的分析研究12-14
  • 1.3 样品前处理方法14-17
  • 1.3.1 酚类物质样品前处理方法15-16
  • 1.3.2 生长素的样品前处理方法16-17
  • 1.4 分离技术17-19
  • 1.5 本论文研究的内容、目的及意义19-21
  • 1.5.1 本论文研究的主要内容19-20
  • 1.5.2 本论文研究的目的及意义20-21
  • 第二章 杨梅果肉、种子及叶子中酚类物质及其抗氧化性研究21-41
  • 2.1 引言21
  • 2.2 实验部分21-28
  • 2.2.1 样品、仪器与试剂21-22
  • 2.2.2 提取液的制备22
  • 2.2.3 杨梅果肉、叶子及种子中的总酚量(TPC)的测定22-24
  • 2.2.3.1 溶液的准备22-23
  • 2.2.3.2 福林酚法测总酚(TPC)23-24
  • 2.2.3.2.1 没食子酸标准曲线的确定23
  • 2.2.3.2.2 样品溶液中总酚量的测定23-24
  • 2.2.4 杨梅果肉、叶子及种子中的总的抗氧化性(TAC)的测定24-25
  • 2.2.4.1 溶液的准备与DPPH紫外吸收波长的确定24
  • 2.2.4.2 DPPH法测总的抗氧化性(TAC)24-25
  • 2.2.4.2.1 没食子酸清除率的标准曲线的确定24-25
  • 2.2.4.2.2 杨梅果肉、叶子、种子中总的抗氧化性测定25
  • 2.2.5 杨梅果肉、叶子及种子中的酚酸类物质的种类及含量的测定25-28
  • 2.2.5.1 溶液的准备25
  • 2.2.5.2 气相色谱(GC-FID)及气相色谱-质谱联用(GC-MS)条件25-26
  • 2.2.5.3 十种标准酚酸类物质标准曲线的确定26-27
  • 2.2.5.4 测定十种酚酸类物质衍生后的质谱图27
  • 2.2.5.5 杨梅三种样品中的酚酸类物质的种类及含量的测定27
  • 2.2.5.6 杨梅三种样品中的酚酸类物质加标回收率的测定27-28
  • 2.3 结果与讨论28-40
  • 2.3.1 DPPH紫外-可见吸收光谱与测定波长的确定28
  • 2.3.2 没食子酸标准曲线及没食子酸清除率标准曲线的确定28-29
  • 2.3.3 杨梅果肉、叶子及种子中的总酚量及总抗氧化性测定29-31
  • 2.3.3.1 杨梅果肉、叶子及种子中的总酚量(TPC)的测定29-30
  • 2.3.3.2 杨梅果肉、叶子及种子中的总的抗氧化性(TAC)的测定30-31
  • 2.3.4 十种标准酚酸类物质的色谱图及标准曲线的确定31-33
  • 2.3.5 杨梅果肉、叶子及种子中酚酸的种类的测定33-38
  • 2.3.6 杨梅果肉及叶子中酚酸类物质的含量及其加标回收率38-40
  • 2.4 本章小结40-41
  • 第三章 杨梅不同成熟度叶子、树枝及果肉中生长素的分离分析41-67
  • 3.1 引言41
  • 3.2 实验部分41-45
  • 3.2.1 样品、仪器与试剂41-42
  • 3.2.2 提取液的制备42
  • 3.2.3 四种生长素的标准曲线及质谱图的确定42-45
  • 3.2.3.1 溶液的准备42-43
  • 3.2.3.2 气相色谱(GC-FID)及气相色谱-质谱联用(GC-MS)条件43
  • 3.2.3.3 四种标准生长素标准曲线的确定43-44
  • 3.2.3.3.1 四种标准生长素出峰顺序的确定43
  • 3.2.3.3.2 四种标准生长素标准曲线的确定43-44
  • 3.2.3.4 测定四种生长素衍生后的质谱图44
  • 3.2.3.5 杨梅不同成熟度各部位中生长素的种类及含量的测定44
  • 3.2.3.6 杨梅不同成熟度各部位中生长素加标回收率的测定44-45
  • 3.3 结果与讨论45-66
  • 3.3.1 四种生长素的色谱图及标准曲线的确定45-46
  • 3.3.2 杨梅不同成熟度叶子、树枝及果肉中生长素的种类的测定46-62
  • 3.3.3 杨梅不同成熟度各部位中生长素的含量及其加标回收率62-66
  • 3.4 本章小结66-67
  • 结论67-69
  • 参考文献69-79
  • 附录79-85
  • 致谢85-87
  • 作者在攻读硕士学位期间的科研成果87

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