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《山东大学》 2011年
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斜卧青霉胞外蛋白质组学分析与纤维素酶合成调控机制研究

韦小敏  
【摘要】:木质纤维素是地球上产量巨大而又未得到充分利用的可再生资源。在石油资源日趋枯竭和环境恶化的严峻形势下,发展生物质能源,利用木质纤维素生产液体燃料和化工产品,不仅可以减缓石油消耗,缓解能源资源紧缺,同时还可以保护环境,促进全球经济的可持续发展。利用微生物产生的纤维素酶分解和转化木质纤维素是纤维素利用的有效途径。丝状真菌所产生的纤维素酶多是胞外酶,便于分离和提取,且所产生的纤维素酶各组分较为齐全,适宜用于工业化生产。但纤维素酶的效率低、成本高是大规模工业化应用中的主要瓶颈。对丝状真菌纤维素酶酶系组成及其合成调控机制的研究对于提高酶的产量和活性都具有重要的意义。 目前国内外对丝状真菌纤维素酶的研究主要围绕木霉和曲霉展开,应用基因组学、转录组学、蛋白组学等技术在酶系组成、合成调控等方面取得了一定进展,而对其它丝状真菌纤维素酶系组成和合成调控研究较少,尤其是青霉属真菌。本论文以我们实验室筛选的斜卧青霉为研究对象,对其胞外酶系组成进行了研究,比较了野生菌株和高产突变菌株在不同培养条件下纤维素降解酶系基因转录情况和胞外蛋白产生情况,并对两个可能与突变菌株高产性状相关的基因进行了初步功能分析。这些研究有助于深入认识斜卧青霉的胞外酶系组成和纤维素酶表达调控机制,对进一步开展菌株改造具有一定借鉴意义。 本论文的主要研究结果如下: 1.克隆了斜卧青霉内切葡聚糖酶基因celSA与cel7B,并在酿酒酵母中进行了异源表达,研究了重组酶的酶学性质 采用简并PCR和]TAIL-PCR技术克隆了斜卧青霉的两个内切葡聚糖酶基因cel5A和cel7B。cel5A基因全长为1549 bp,含有3个内含子。cel5A cDNA包含个长度为1236 bp的开放阅读框,编码411个氨基酸。cel7B基因全长为1425 bp,不含有内含子,编码474个氨基酸。Southern杂交结果表明,cel5A和cel7B基因在染色体上均以单拷贝形式存在。荧光实时定量PCR转录分析表明,cel5A和cel7B基因转录是共调控的,均受葡萄糖的抑制和纤维素的诱导。构建了cel5A和cel7B基因在酿酒酵母中表达的重组质粒,并成功表达和纯化了两个重组酶。重组Cel5A和Cel7B最适作用均为60℃,最适作用pH均为4。重组Cel7B降解CMC、大麦p-葡聚糖和磷酸膨胀纤维素的活性分别是Cel5A的8倍、30倍和5倍,但是降解微晶纤维素的能力两个酶相差不大,且Cel5A降解微晶纤维素的产物主要为纤维二糖和痕量葡萄糖。这些结果说明相对Cel5A, Cel7B是更为严格的内切葡聚糖酶。 2.分析了不同碳源对斜卧青霉野生菌株和突变菌株纤维素酶和半纤维素酶基因转录的影响 采用RT-qPCR技术对斜卧青霉114-2和JU-A10-S在不同碳源培养条件下的4个纤维素酶基因(cel7B、cel5A、cel7A、cel6A)和2个木聚糖酶基因(xynl0A、xyn11A)的转录情况进行了分析,发现这些基因在转录水平上是共调控的。微晶纤维素或者微晶纤维素与麦麸对菌株114-2和JU-A10-S中纤维素酶和半纤维素酶基因的表达都有很强的诱导作用,且.微晶纤维素与麦麸的诱导效果要强于微晶纤维素的诱导效果。乳糖对菌株114-2中纤维素酶和半纤维素酶基因表达有很强的诱导作用,但是对菌株JU-A10-S没有表现出明显的诱导作用,可能与乳糖的转运或者代谢途径受到了破坏有关。山梨糖对菌株JU-A10-S中纤维素酶和半纤维素酶基因表达有很强的诱导作用,但是对菌株114-2没有表现出明显的诱导作用,可能与山梨糖的代谢速率无关,而是由其它突变引起的。菌株JU-A10-S在葡萄糖培养条件下,纤维素酶和半纤维素酶基因转录水平要远远高于菌株114-2中各基因转录水平,表现出显著的抗降解物阻遏。菌株JU-A10-S在所有培养条件下,纤维素酶和半纤维素酶基因转录水平都要高于菌株114-2中各基因转录水平,可能与creA的移码突变部分有关。 3.利用双向荧光差异凝胶电泳技术(2D-DIGE)研究了斜卧青霉胞外酶系组成,并对野生菌株与突变高产菌株在不同培养条件下的胞外差异蛋白进行了分析 利用双向荧光差异凝胶电泳技术(2D-DIGE)对斜卧青霉野生菌株114-2与突变高产菌株JU-A10-T在葡萄糖、微晶纤维素-麦麸培养条件下的胞外蛋白进行了分析。成功鉴定出了38种蛋白,其中大部分蛋白为生物质降解酶类,参与纤维素、半纤维素、淀粉、蛋白质、果胶、几丁质等的降解。野生菌株114-2在葡萄糖培养条件下,鉴定到3种基础性表达纤维素酶,并鉴定到含量较高的淀粉酶、果胶酶和蛋白酶PepA。野生菌株114-2在微晶纤维素-麦麸培养条件下,胞外纤维素酶和半纤维酶的种类和含量都在增加,但并未检测到果胶酶,显示果胶酶与(半)纤维素酶的合成分别属于不同的调控体系。此外,在胞外还检测到了含量较高的蛋白酶PepB,而并没有检测到蛋白酶PepA,显示这两种蛋白酶的合成受培养条件的影响。突变菌株JU-A10-T在葡萄糖培养条件下,表现出明显的抗降解物阻遏特性,胞外纤维素酶和半纤维素酶含量明显上调,并出现更多种类的纤维素酶和半纤维素酶,但淀粉酶的合成受到了抑制。突变菌株JU-A10-T在微晶纤维素-麦麸培养条件下,表现出明显的超诱导,胞外蛋白浓度、纤维素酶活和木聚糖酶活大幅度提高;胞外蛋白中几种纤维素酶和半纤维素酶组分含量明显上调,而其它纤维素酶和半纤维素酶的含量则几乎都下调,显示木质纤维素降解酶受到的调控之间存在部分差异;另外只检测到痕量淀粉酶并且未检测到蛋白酶,显示突变株中相关调控系统发生了重要变异。 4.敲除了斜卧青霉α-甘露糖苷酶基因和丝氨酸蛋白激酶基因,对其生物学功能进行了初步研究。 利用融合PCR和巢式PCR方法构建了α-1,2-甘露糖苷酶基因(mns1)和丝氨酸蛋白激酶基因(pk1)敲除盒,并利用原生质体转化的方法,成功敲除了斜卧青霉KU-39 mns1基因和pk1基因。α-1,2-甘露糖苷酶基因(mns1)和丝氨酸蛋白激酶基因(pk1)的敲除对菌株的菌落大小、孢子颜色、孢子形态、菌丝直径均没有影响。α-1,2-甘露糖苷酶基因(mns1)的敲除,提高了胞外蛋白浓度和纤维素酶活力,猜测其可能参与了未正确折叠蛋白的清除。丝氨酸蛋白激酶基因(pk1)的敲除,也提高了胞外蛋白浓度和纤维素酶活力,其参与的信号传导过程有待进一步研究。
【关键词】:斜卧青霉 纤维素酶 合成调控 转录分析 蛋白质组 基因敲除
【学位授予单位】:山东大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2011
【分类号】:Q93
【目录】:
  • 摘要8-11
  • ABSTRACT11-15
  • 符号说明及缩略词15-17
  • 第一章 绪论17-46
  • 1.1 纤维素酶17-25
  • 1.1.1 纤维素酶系的组成和存在形式17-18
  • 1.1.2 纤维素酶基因的克隆18-21
  • 1.1.3 纤维素酶基因的异源表达21-25
  • 1.2 丝状真菌纤维素酶的表达调控研究进展25-33
  • 1.2.1 纤维素酶合成的诱导机制25-26
  • 1.2.2 碳源对丝状真菌纤维素酶基因表达的影响26-29
  • 1.2.3 纤维素酶合成的表达调控因子29-33
  • 1.3 丝状真菌蛋白质组学研究进展33-44
  • 1.3.1 蛋白质组学研究技术33-38
  • 1.3.2 丝状真菌蛋白质组学研究现状38-43
  • 1.3.3 丝状真菌蛋白质组学研究展望43-44
  • 1.4 本研究的目的与主要工作内容44-46
  • 第二章 斜卧青霉内切葡聚糖酶基因的克隆和表达46-80
  • 引言46
  • 2.1 材料和方法46-62
  • 2.1.1 菌株和质粒46-47
  • 2.1.2 培养基和培养方法47
  • 2.1.3 常用储备液及缓冲液47-48
  • 2.1.4 试剂,工具酶与仪器48-49
  • 2.1.5 基因组DNA的提取与定量49-50
  • 2.1.6 总RNA的提取及cDNA的合成50-51
  • 2.1.7 简并引物设计与基因片段克隆51-52
  • 2.1.8 TAIL-PCR扩增基因5’端和3’端52-54
  • 2.1.9 高保真扩增基因全长和cDNA全序列54
  • 2.1.10 克隆、测序与序列分析54
  • 2.1.11 Southern杂交54-56
  • 2.1.12 实时荧光定量PCR分析cel7B和cel5A的转录56-58
  • 2.1.13 重组表达载体的构建58-59
  • 2.1.14 酿酒酵母的转化59
  • 2.1.15 内切葡聚糖酶活性测定59-60
  • 2.1.16 来源于酿酒酵母重组蛋白的分离纯化60
  • 2.1.17 蛋白质电泳和活性染色60-61
  • 2.1.18 重组蛋白分子量的确定61
  • 2.1.19 重组蛋白的去糖基化61
  • 2.1.20 pH和温度对酶活力的影响61-62
  • 2.1.21 重组Cel7B和Cel5A的底物特异性分析62
  • 2.2 结果与分析62-78
  • 2.2.1 基因组DNA的质量62-63
  • 2.2.2 斜卧青霉cel5A基因的克隆及序列分析63-66
  • 2.2.3 斜卧青霉cel7B基因的克隆及序列分析66-68
  • 2.2.4 cel5A和cel7B拷贝数的确定68-70
  • 2.2.5 cel5A cel7B基因转录分析70-71
  • 2.2.6 重组表达载体pAJ401-cel5A和pAJ401-cel7B的构建71
  • 2.2.7 重组酶的纯化71-73
  • 2.2.8 重组酶的酶学性质73-78
  • 2.3 讨论78-79
  • 小结79-80
  • 第三章 野生菌株与突变菌株纤维素降解酶系基因转录差异分析80-96
  • 引言80-81
  • 3.1 材料和方法81-84
  • 3.1.1 菌株、质粒和引物81-82
  • 3.1.2 培养基和培养方法82
  • 3.1.3 常用缓冲液、试剂和设备82-83
  • 3.1.4 标准曲线的制作83-84
  • 3.1.5 斜卧青霉RNA的提取84
  • 3.1.6 cDNA的合成84
  • 3.1.7 纤维素酶和半纤维酶基因的RT-qPCR分析84
  • 3.2 结果与分析84-93
  • 3.2.1 总RNA提取质量84-85
  • 3.2.2 RT-qPCR标准曲线的制作85-86
  • 3.2.3 RT-qPCR定量结果的有效性分析86
  • 3.2.4 不同碳源对斜卧青霉114-2纤维素酶和半纤维素酶基因转录的影响86-88
  • 3.2.5 不同碳源对斜卧青霉JU-A10-S纤维素酶和半纤维素酶基因转录的影响88-90
  • 3.2.6 微晶纤维素和乳糖诱导作用的区别90-92
  • 3.2.7 野生菌株114-2和突变菌株JU-A10-S基因转录差异92-93
  • 3.3 讨论93-95
  • 小结95-96
  • 第四章 斜卧青霉胞外差异蛋白质组研究96-143
  • 引言96-97
  • 4.1 材料和方法97-105
  • 4.1.1 菌株97
  • 4.1.2 培养基和培养方法97
  • 4.1.3 常用储备液和缓冲液97-98
  • 4.1.4 试剂和仪器98-99
  • 4.1.5 胞外蛋白浓度及酶活测定99-100
  • 4.1.6 胞外蛋白质的提取100
  • 4.1.7 2D-DIGE蛋白质含量测定100
  • 4.1.8 荧光染料预标记100-101
  • 4.1.9 二维凝胶电泳(银染)聚焦程序优化及各样本的蛋白点分布范围观察101-102
  • 4.1.10 2DE-DIGE实验设计102-104
  • 4.1.11 考染双向电泳104
  • 4.1.12 质谱分析样品的制备104-105
  • 4.1.13 MALDI-TOF-TOF串联质谱分析105
  • 4.2 结果和分析105-139
  • 4.2.1 野生菌株114-2与突变菌株JU-A10-T胞外蛋白浓度及酶活比较105-110
  • 4.2.2 蛋白定量结果和准确性验证110
  • 4.2.3 荧光染料标记效果检测110-111
  • 4.2.4 二维凝胶电泳(银染)条件优化111-113
  • 4.2.5 2D-DIGE重现性分析113
  • 4.2.6 差异蛋白质点的分析113-116
  • 4.2.7 蛋白质点的鉴定和分类116-124
  • 4.2.8 野生菌株114-2在两种培养条件下的胞外蛋白差异分析124-135
  • 4.2.9 突变菌株JU-A10-T在两种培养条件下的胞外蛋白差异分析135-137
  • 4.2.10 野生菌株114-2和突变菌株JU-A10-T在葡萄糖培养条件下的胞外蛋白差异分析137-138
  • 4.2.11 野生菌株114-2和突变菌株JU-A10-T在微晶纤维素与麦麸培养条件下的胞外蛋白差异分析138-139
  • 4.3 讨论139-141
  • 小结141-143
  • 第五章 斜卧青霉α-甘露糖苷酶基因和丝氨酸蛋白激酶基因的敲除143-160
  • 引言143-144
  • 5.1 材料和方法144-149
  • 5.1.1 菌株和质粒144
  • 5.1.2 培养基144
  • 5.1.3 常用缓冲液、试剂与仪器144-145
  • 5.1.4 敲除盒的构建145-146
  • 5.1.5 原生质体的制备及转化146-147
  • 5.1.6 斜卧青霉转化子的染色体基因组小量提取147-148
  • 5.1.7 敲除子筛选148
  • 5.1.8 蛋白浓度及酶活测定148-149
  • 5.2 结果与分析149-157
  • 5.2.1 敲除载体的构建149-151
  • 5.2.2 原生质体转化及敲除子的鉴定151-154
  • 5.2.3 敲除子与出发菌株的形态学比较154
  • 5.2.4 敲除株的蛋白浓度及酶活测定154-157
  • 5.3 讨论157-159
  • 小结159-160
  • 全文总结与展望160-162
  • 1 本文取得的创新性成果160
  • 2 本论文存在的问题及深入方向160-162
  • 参考文献162-184
  • 攻读学位期间发表的学术论文184-185
  • 致谢185-186
  • 学位论文评阅及答辩情况表186-187
  • 附录187-209

【引证文献】
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【二级参考文献】
中国期刊全文数据库 前8条
1 曲音波;高培基;王祖农;;青霉的纤维素酶抗降解物阻遏突变株的选育[J];真菌学报;1984年04期
2 楚春雪,李多川,郭润芳;一株嗜热毛壳菌β-葡萄糖苷酶的分离纯化及特性[J];菌物学报;2004年03期
3 周祥山,范卫民,张元兴;不同甲醇流加策略对重组毕赤酵母高密度发酵生产水蛭素的影响[J];生物工程学报;2002年03期
4 阎伯旭,高培基;纤维素酶的底物专一性[J];生命科学;2000年02期
5 余雪冰,黄鹭强,郑毅,施巧琴,吴松刚;毕赤氏酵母植酸酶工程菌高密度培养条件的研究[J];生物技术;2000年03期
6 隋少飞,陈松林;巴氏毕赤酵母表达系统的特点及其研究进展[J];生物技术通报;2004年03期
7 章如安,杨晟,邱荣德,袁中一;巴斯德毕赤酵母表达体系研究及进展[J];微生物学通报;2000年05期
8 孙宪昀;曲音波;刘自勇;;青霉木质纤维素降解酶系研究进展[J];应用与环境生物学报;2007年05期
【相似文献】
中国期刊全文数据库 前10条
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2 肖春玲,徐常新;微生物纤维素酶的应用研究[J];微生物学杂志;2002年02期
3 张玉臻;马桂荣;高培基;;斜卧青霉Penicillium decumbens原生质体的形成和再生因素的研究[J];山东大学学报(理学版);1989年02期
4 赵晨;易宗春;荣龙;孙艳;;斜卧青霉原生质体制备和再生的研究[J];微生物学杂志;2009年01期
5 王建平;纤维素酶的研究进展及趋向[J];浙江海洋学院学报(人文科学版);1995年03期
6 谢占玲,吴润;纤维素酶的研究进展[J];草业科学;2004年04期
7 杨艳,任健,谢明杰,曹文伟;纤维素酶酿酒酵母工程菌的研究进展[J];微生物学杂志;1997年04期
8 董锡文;杜春梅;林建强;曲音波;;响应面法优化斜卧青霉Ju-A_(10)产CMCase的条件[J];微生物学通报;2006年03期
9 董锡文;杜春梅;林建强;曲音波;;斜卧青霉Ju-A_(10)产CMCase培养条件的优化[J];工业微生物;2008年02期
10 张海,刘涛;纤维素水解产物对木霉A10纤维素酶的抑制作用[J];西北大学学报(自然科学版);1995年01期
中国重要会议论文全文数据库 前10条
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2 冯文英;;固体纤维素酶的浸渍条件优化及其特性研究[A];中国造纸学报2003年增刊——中国造纸学会第十一届学术年会论文集[C];2003年
3 黄燕华;冯定远;;不同来源的纤维素酶酶学性质的比较研究[A];中国畜牧兽医学会动物营养学分会——第九届学术研讨会论文集[C];2004年
4 杨彬;冯定远;;纤维素酶对黄羽肉鸡生产性能的影响[A];中国畜牧兽医学会动物营养学分会——第九届学术研讨会论文集[C];2004年
5 薛艳林;玉柱;白春生;孙杰;;纤维素酶制剂对苜蓿青贮饲料品质的影响[A];第三届中国苜蓿发展大会论文集[C];2010年
6 卢珣;章明秋;容敏智;;全植物纤维复合材料——Ⅱ.剑麻纤维自增强复合材料的酶降解性能研究[A];复合材料:生命、环境与高技术——第十二届全国复合材料学术会议论文集[C];2002年
7 王春燕;蔡坤;王化山;周艳艳;刘四新;;产紫青霉HBZ003产纤维素酶发酵条件的优化[A];2009年海南省微生物学检测及质量保证研讨会论文集[C];2009年
8 黄燕华;冯定远;;不同来源纤维素酶对鹅胰腺和小肠内容物消化酶活性的影响[A];中国畜牧兽医学会动物营养学分会——第九届学术研讨会论文集[C];2004年
9 刘韫滔;禤淑霞;龙传南;龙敏南;胡忠;;纤维素降解菌的筛选、鉴定及其产酶条件的研究[A];第十次全国环境微生物学术研讨会论文摘要集[C];2007年
10 康忆隆;;纤维质原料(杨木粉)水解最优条件的研究[A];生态学与全面·协调·可持续发展——中国生态学会第七届全国会员代表大会论文摘要荟萃[C];2004年
中国重要报纸全文数据库 前10条
1 王菁莎 王颉 刘景彬;纤维素酶的应用现状[N];中国食品质量报;2009年
2 平远 译;纤维素酶可提高秸秆饲料利用率[N];福建科技报;2004年
3 庞晓华;秸秆生产燃料乙醇进程加快[N];中国化工报;2004年
4 山东农业大学 王纪亭;饲料原料资源匮乏出路何在[N];中国畜牧报;2003年
5 ;2009年印染行业节能减排优秀技术创新成果推介[N];中国纺织报;2009年
6 中国农业科学院畜牧研究所 张军民 韩怀动;酶制剂在饲料中的作用[N];中国畜牧报;2002年
7 郭凤莲 陈存社;微生物制备复合酶制剂研究进展[N];中国食品质量报;2009年
8 本报通讯员 沈中兴;情系中小企业[N];科技日报;2002年
9 张晓玲 本报记者 王新;播洒绿色 拥抱明天[N];黑龙江经济报;2009年
10 王宝同 杨玲;丰原三千吨乙醇项目年底试产[N];蚌埠日报;2009年
中国博士学位论文全文数据库 前10条
1 韦小敏;斜卧青霉胞外蛋白质组学分析与纤维素酶合成调控机制研究[D];山东大学;2011年
2 郑凯;斜卧青霉基因表达谱的差异分析研究[D];山东大学;2009年
3 李忠海;斜卧青霉高效基因打靶系统的构建与转录调控因子CreA功能的研究[D];山东大学;2010年
4 孙宪昀;斜卧青霉木质纤维素酶系的合成调控研究[D];山东大学;2007年
5 高乐;斜卧青霉胞外纤维二糖水解酶多样性及催化机理研究[D];山东大学;2012年
6 刘国栋;木质纤维素降解真菌斜卧青霉的比较基因组学与功能基因组学研究[D];山东大学;2012年
7 张晓萍;低聚糖和纤维类碳源对里氏木霉合成纤维素酶的诱导作用[D];南京林业大学;2010年
8 陈春润;黑翅土白蚁体内纤维素酶编码基因的克隆与表达[D];浙江大学;2010年
9 王玉国;新型嗜热纤维素酶的性质研究及协同水解纤维素作用[D];吉林大学;2011年
10 王骥;福寿螺(Ampullaria crossean)多功能纤维素酶EGX的研究[D];中国科学院研究生院(上海生命科学研究院);2004年
中国硕士学位论文全文数据库 前10条
1 董锡文;纤维素废弃物发酵生产L-乳酸[D];山东大学;2005年
2 吕晶;斜卧青霉可重复利用筛选标记转化系统的建立[D];大连工业大学;2012年
3 申苗;斜卧青霉114-2中阿魏酸酯酶基因的表达与鉴定研究[D];山东大学;2012年
4 赵丹;β-葡萄糖苷酶高产菌株Peni-1的产酶优化、菌种改造及应用研究[D];山东大学;2012年
5 夏安;纤维素酶水解动力学及影响因素研究[D];四川大学;2002年
6 贺芸;产耐高温纤维素酶细菌的筛选及酶学性质研究[D];南京理工大学;2004年
7 王在贵;特异腐质霉Humicola insolens(YH-8)纤维素酶的分离纯化及性质研究[D];华中农业大学;2004年
8 王玮;尖孢镰刀菌高产纤维素酶菌株的筛选鉴定及发酵条件优化[D];内蒙古大学;2011年
9 于航行;产纤维素酶真菌的基因组重组初探[D];山东大学;2006年
10 林元山;糖蜜酒精废液诱导康氏木霉产纤维素酶的研究[D];广西大学;2004年
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