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《山东农业大学》 2011年
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A亚群禽白血病病毒单克隆抗体的制备和不同亚群禽白血病病毒共感染相互影响的研究

邱玉玉  
【摘要】:禽白血病(Avian Leukosis)是由禽白血病病毒(Avian Leukosis Virus, ALV)和禽肉瘤病毒(Avian Sarcoma Virus,ASV)群中的病毒感染引起的多种肿瘤性疾病的统称。过去十几年,ALV-J亚群病毒对肉用型鸡、蛋用型鸡和我国地方品系鸡的感染已经给养殖业造成了巨大经济损失。由于中国在过去几十年中从未对ALV采取过有效的净化措施,中国鸡群中存在其它亚型ALV感染的可能性很大,近几年病毒分离鉴定也表明,血管瘤的发生不仅由J亚群禽白血病病毒引起,同时也有由A亚群禽白血病病毒(ALV-A)和B亚群禽白血病病毒(ALV-B)感染引起。为了更好、更快、更准确地进行病毒的分离、鉴定以及临床检测,探讨ALV-A和ALV-J共感染SPF鸡后抗体反应和带毒排毒的规律,本研究克隆与表达ALV-A-SDAU09C1毒株gp85蛋白,用纯化的gp85蛋白研制抗ALV-A单克隆抗体(Monoclonal antibody;McAb),进而研究了其与ALV-J共感染SPF鸡病毒血症和抗体反应相互影响。 1. ALV-A-SDAU09C1 gp85基因的克隆与表达 以感染本研究室分离保存的ALV-A-SDAU09C1(GenBank:HM452339)株的细胞基因组DNA为模板,采用PCR扩增技术,扩增出1017bp大小的env-gp85基因片段,并将其克隆到原核表达性载体pET-32a (+)中,构建成重组质粒pET-SDAU09C1-gp85。经测序鉴定结果显示,成功构建了重组质粒pET-SDAU09C1-gp85。将重组质粒转化到大肠杆菌BL21中培养并用IPTG诱导后,其菌体的超声波裂解物用SDS-PAGE电泳分离蛋白质,在经考马斯亮蓝染色的SDS-PAGE凝胶中与非重组载体pET-32a (+)的转化菌裂解物相比,重组质粒pET-SDAU09C1-gp85出现了1条相对分子量为53kD左右的条带,结果显示,env基因在大肠杆菌中进行了高效表达。Western-blot分析结果能从重组质粒pET-SDAU09C1-gp85的转化菌中特异性地识别出该53kD的蛋白条带,而与天然非重组载体pET-32a(+)的转化菌不发生反应。结果证明,能被gp85蛋白高免阳性血清识别的相对分子质量为53kD的蛋白质,确实为pET-SDAU09C1-gp85蛋白。 2. A亚群禽白血病病毒单克隆抗体的研制及其部分生物学特性的研究 2.1间接ELISA检测方法的建立 用纯化的gp85蛋白为包被抗原,建立了检测抗ALV-A抗体的间接ELISA。经对ELISA的最佳工作条件测定结果表明,抗原最佳包被浓度为2μg/ml、血清的最佳稀释度为1:1000,二抗的最佳稀释度为1:2000,最佳包被液为PBS Buffer(pH7.4),最佳显色时间为15min。经重复性试验、特异性试验结果显示,建立ELISA方法有良好的可重复性;与鸡NDV、REV、IBDV、MDV等病毒阳性抗体均无交叉反应。 2.2抗ALV-A单克隆抗体的制备及纯化表达的env-gp85蛋白经纯化复性后免疫8-10周龄Balb/c小白鼠,经2-3次免疫后,取小白鼠血清进行检测,当抗体效价超过105后,取小白鼠脾脏细胞与骨髓瘤细胞Sp2/0在PEG1450作用下进行细胞融合,经建立间接ELISA法进行检测筛选阳性杂交瘤细胞株,经有限稀释法亚克隆2-3次,共获得了3株(A6D1株,A5C1株,A4C8株)分泌抗ALV-A独特型抗体的杂交瘤细胞株,并进行了单抗腹水的大量制备,经过饱和硫酸铵沉淀,经过蛋G亲和纯化后得到的单克隆抗体浓度别为A6D1,1.575mg/ml;A5C1,0.903 mg/ml;A4C8,0.758 mg/ml。 2.3抗ALV-A单克隆抗体特性研究 2.3.1单抗的效价测定 用已经建立的ELISA方法对三株单抗的效价测定结果分别为:A6D1 210; A5C1 28;A4C8 27。 2.3.2抗体分泌稳定性 将获得的3株单克隆抗体细胞株冻存后,隔3、6、9、12个月后,复苏培养,至少传代3次以上,用建立的间接ELISA方法进行检测。结果表明,获得的单克隆抗体细胞株经冻存复苏后,抗体分泌能力没有任何下降,其具有较高的分泌抗体水平的能力。 2.3.3单抗的Western blotting分析 取10ul纯化的表达蛋白,用等量的2×上样缓冲液处理后,进行SDS-PAGE,然后转到NC膜上,经封闭,单抗200倍稀释液孵育后,加入酶标羊抗鼠IgG孵育后,加底物显色,于NC膜上出现一条清晰的条带,该带与标准分子量比较,其大小约为53kD,说明这株单抗与所表达的gp85蛋白发生特异性结合。 2.3.4间接免疫荧光分析 用IFA对试验所获得的A6D1、A5C1、A4C8株单克隆抗体的特异性进行了鉴定。结果证明,单抗A5C1、A4C8是特异性抗ALV-A的单克隆抗体,它们均与试验的所有ALV-A分离株发生反应,而不与试验的ALV-B和ALV-J亚群的毒株发生反应。值得注意的是单抗A6D1,它不仅能与所试验的ALV-A毒株发生反应,而且还能与所试验的ALV-B亚群的毒株发生反应,但不与ALV-J亚群的毒株发生反应,这说明单抗A5C1、A4C8是特异性抗ALV-A的单克隆抗体,而A6D1是特异性抗ALV-AB的单克隆抗体,3株单克隆抗体均能与病毒正常分泌的天然蛋白发生特异反应。 3. ALV-A与ALV-J共感染对SPF鸡病毒血症及抗体反应的相互影响 1日龄SPF鸡200只随机分成4组,平均每组50只。2日龄时,4个组每只鸡分别腹腔接种:第一组接种0.2ml ALV-A和ALV-J感染细胞培养上清混合液(比例1:1);第二组接种ALV-A0.2ml感染细胞培养上清;第三组接种ALV-J0.2ml感染细胞培养上清;第四组接种灭菌Hank’s液0.2ml作为阴性对照;常规程序进行免疫;攻毒后在1周龄、2周龄、3周龄、5周龄、7周龄、8周龄时从各组中分别随机取出6只鸡,编号。其中6只无菌采集加抗凝剂的新鲜血液用于病毒血症检测,其余鸡常规采血,分离血清供抗体检测;病毒血症的检测采用IFA法,同时用ELISA检测鸡群的抗体水平。 实验结果表明: 3.1病毒血症检测结果 单独感染ALV-A组的病毒血症水平从2周龄开始检测到,随后一直持续增高,从从第3周到第7周增长较缓慢,到第7周龄时的病毒血症水平达到最高为3.72 PFU/ml,第8周龄病毒血症水平有所下降为3.01 PFU/ml。单独感染ALV-J组的病毒血症水平从1周龄开始检测到,随后一直呈升高趋势,第8周龄时为3.71 PFU/ml; ALV-A+ALV-J共感染组与单独感染ALV-A组相比,也在7周龄时达到最高,为3.74 PFU/ml;8周龄也有所下降,在7周龄以前病毒血症水平始终高于ALV-A组,但两组的病毒血症水平变化趋势大体相同,在整个实验过程中病毒血症水平总体差异不显著(p0.05); 2周龄时ALV-A +ALV-J共感染组的病毒血症还未出现,与单独感染ALV-J组相比差异显著(P0.05),随后病毒血症水平逐渐升高,直到7周龄时达到最高,8周龄时已有所降低;而单独感染ALV-J组在整个检测过程中病毒血症水平一直在升高,但 3周龄、5周龄、7周龄及8周龄的病毒血症水平与ALV-A +ALV-J共感染组相比差异不显著(p0.05)。 3.2共感染对特异性抗体反应的影响 3.2.1 ALV-J共感染时对ALV-A特异性抗体的影响无论是ALV-A+ALV-J共感染组,还是单独感染ALV-A组在2周龄时血清中ALV-A特异性抗体的阳性率均为0;在3周龄时,ALV-A+ALV-J共感染组和单独感染ALV-A组中均只有部分鸡产生ALV-A特异性抗体,不过ALV-A+ALV-J共感染组ALV-A特异性抗体阳性率明显低于单独感染ALV-A组。而在5周龄、7周龄时,两组鸡中ALV-A特异性抗体阳性率基本相同,表明在本实验中ALV-J共感染对ALV-A感染诱发的抗体反应的影响不明显。 3.2.2 ALV-A共感染时对ALV-J特异性抗体的影响 在2周龄、3周龄时,ALV-A+ALV-J共感染组和单独感染ALV-J组中均没有出现ALV-J特异性抗体。在5周龄、7周龄时,ALV-A+ALV-J共感染组仍无阳性样品,单独感染ALV-J组的阳性率也仅为20.00%和13.33%。可见ALV-J特异性抗体较ALV-A特异性抗体产生得晚,在2日龄感染ALV-J后鸡群的耐受性感染程度比ALV-A更严重。特别是ALV-A+ALV-J共感染组,在8周龄之前一直未出现阳性样品,显然,ALV-A共感染显著减弱了鸡体对ALV-J感染诱导的特异性抗体反应。 3.2.3病毒血症及相应抗体反应的相关性 将被检测的不同鸡的病毒血症和抗体反应表现一一对应,ALV-A+ALV-J共感染组及单独感染ALV-A组在2周龄时没有出现病毒血症,抗体反应均为阴性;3周龄时ALV-A+ALV-J共感组1/6( 6.25%)和单独感染ALV-A组2/6(33.33%)都出现了部分鸡病毒血症和抗体反应均为阳性, ALV-A+ALV-J共感组5周时有4/6(50%)都出现了部分鸡病毒血症和抗体反应均为阳性,直到7周龄这种现象还持续存在;单独感染ALV-A组5周时有4/6(66.67%)都出现了部分鸡病毒血症和抗体反应均为阳性,到7周龄有所下降3/6(50%); 在ALV-A+ALV-J共感染组和单独感染ALV-J组的被检鸡只中病毒血症和抗体反应均为阳性的数量明显较少,仅见于ALV-J组中(5周龄为1/6(6.25%)和7周龄为2/6(33.33% )),可见ALV-J感染后鸡体血液当中ALV-J和相应抗体共同存在的几率很小,而ALV-A的共感染更降低了这种几率。
【学位授予单位】:山东农业大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2011
【分类号】:S852.65

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【引证文献】
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2 刘功振;张洪海;刘青;邱波;王峰;王晓伟;陈洪博;成子强;;感染J亚群禽白血病病毒的蛋鸡群中检测出B亚群禽白血病病毒[A];中国畜牧兽医学会2010年学术年会——第二届中国兽医临床大会论文集(下册)[C];2010年
3 王彦军;孙淼;曹红;陈福勇;;禽白血病病毒自然感染及抗体变化动态规律[A];中国畜牧兽医学会禽病学分会第十五次学术研讨会论文集[C];2010年
4 刘青;成子强;;禽白血病病毒跨膜蛋白在膜融合及免疫抑制中的作用[A];中国畜牧兽医学会禽病学分会鸡淋巴白血病防控技术研讨会论文集[C];2010年
5 李中明;王景艳;张青婵;赵冬敏;崔治中;马诚太;王丽;;某进口蛋用型祖代鸡群禽白血病病毒感染状态的持续观察[A];中国畜牧兽医学会禽病学分会鸡淋巴白血病防控技术研讨会论文集[C];2010年
6 周碧君;毛君婷;罗明星;王开功;文明;程振涛;;贵州省禽白血病病毒不同亚群感染情况调查研究[A];中国畜牧兽医学会禽病学分会第十五次学术研讨会论文集[C];2010年
7 顾小雪;韩雪;蔡林;张硕;李晓霞;汪葆玥;遇秀玲;翟新验;;血管瘤型J亚型禽白血病病毒的分离与鉴定[A];中国畜牧兽医学会禽病学分会第十五次学术研讨会论文集[C];2010年
8 王林山;尹燕博;徐守振;郭妍妍;吴珊珊;胡永新;;鸡J亚群禽白血病病毒与七种常见病毒混合感染调查[A];中国畜牧兽医学会禽病学分会第十五次学术研讨会论文集[C];2010年
9 范书才;李虹;肖睿;;禽白血病病毒分离鉴定[A];中国畜牧兽医学会2003年学术年会论文集[C];2003年
10 王建新;崔治中;张纪元;王增福;陈本龙;王锡乐;;J亚群禽白血病病毒与禽网状内皮增生症病毒共感染对肉鸡生长和免疫功能的抑制作用[A];中国畜牧兽医学会禽病学分会鸡淋巴白血病防控技术研讨会论文集[C];2010年
中国博士学位论文全文数据库 前10条
1 赵冬敏;B亚群禽白血病病毒分离株的生物学特性[D];山东农业大学;2010年
2 张青婵;A亚群禽白血病病毒不同分离株的基因组和生物学特性比较[D];山东农业大学;2010年
3 张在平;荧光定量PCR检测禽白血病病毒与RNA干扰抑制J亚群禽白血病病毒复制的研究[D];内蒙古农业大学;2010年
4 付朝阳;J亚群禽白血病病毒分离株变异分析及重组抗原ELISA检测方法的建立[D];中国农业科学院;2004年
5 吴晓平;商品蛋鸡源J亚群禽白血病病毒分离株生物学特性研究[D];扬州大学;2010年
6 秦爱建;禽白血病病毒J亚群囊膜糖蛋白基因的生物学和生物化学特性[D];扬州大学;1999年
7 杨玉莹;J亚群禽白血病病毒内蒙株的分离鉴定及其部分分子生物学特性的研究[D];内蒙古农业大学;2003年
8 成子强;禽白血病病毒J亚群(ALV-J)内蒙株的建立及致瘤机理的研究[D];内蒙古农业大学;2002年
9 邱玉玉;A亚群禽白血病病毒单克隆抗体的制备和不同亚群禽白血病病毒共感染相互影响的研究[D];山东农业大学;2011年
10 邓小芸;网状内皮组织增生症病毒LAMP检测方法及感染性分子克隆的建立[D];东北农业大学;2011年
中国硕士学位论文全文数据库 前10条
1 朱美真;山东某地方品系鸡鸡胚中禽白血病病毒的分离及序列分析[D];山东农业大学;2010年
2 张悦;禽白血病病毒B、E和J亚群基因芯片检测方法的建立[D];河北农业大学;2012年
3 石文慧;禽B型白血病病毒生物学特性的分析及研究[D];河北农业大学;2010年
4 朱钰峰;地方品系蛋鸡群中禽白血病病毒的鉴定和J亚群禽白血病病毒受体蛋白的分离[D];扬州大学;2011年
5 吕佳泓;鸭群中禽白血病病毒的核酸检测[D];山东农业大学;2014年
6 李传龙;J亚群禽白血病病毒相关的鸡急性纤维肉瘤人工造病试验[D];山东农业大学;2012年
7 刘功振;禽白血病病毒J亚群、B亚群的分离鉴定及核酸探针的制备[D];山东农业大学;2010年
8 辛敬凯;B亚群禽白血病病毒单克隆抗体的制备[D];山东农业大学;2014年
9 康忠惠;A、B亚群禽白血病病毒LAMP检测方法的建立及初步应用[D];东北农业大学;2011年
10 刘丽娜;J亚群禽白血病病毒gp85基因的克隆表达及初步应用[D];华中农业大学;2012年
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