小麦紫黄质脱环氧化酶基因的克隆及其表达研究
【摘要】:
植物光合机构中叶绿体色素吸收的光能通过光化学过程转化为稳定的化学能。然而,大多数情况下植物接受的能量要超过其所能转化的能量,如果过量的光能不及时耗散掉,光合功能会降低,导致光合作用的光抑制,甚至出现光氧化、光破坏。依赖于叶黄素循环(Xanthophyll cycle)的热耗散作用近年来受到普遍的关注。它在耗散过剩激发能、保护光合机构中起着主要的作用,被认为是光保护的主要途径。叶黄素循环是指植物吸收的光能过剩时,双环氧的紫黄质(V)在紫黄质脱环氧化酶(VDE)的催化下,经过中间物单环氧的花药黄质(A)转化为无环氧的玉米黄质(Z);在暗处,则在玉米黄质环氧化酶(ZE)的作用下朝相反的方向进行,将Z重新环氧化为V,形成一个循环。关于叶黄素循环在防御光抑制和光破坏中的作用已成为光合作用研究的一个热点领域。
本研究欲根据已知植物的紫黄质脱环氧化酶基因序列从小麦叶片中克隆该基因,并利用根癌农杆菌介导法将其反义基因导入烟草中,研究其在烟草植株内的功能表达,为VDE基因工程提供基因资源和理论依据。
RT-PCR法得到小麦紫黄质脱环氧化酶(WVDE)的全系列,cDNA的全长为1,746。其ORF长度为1365bp,编码454个氨基酸,分子量为39.8KD,其中转运肽长度为106个氨基酸,成熟蛋白348氨基酸。GenBank注册号为AF265294。
WVDE cDNA的编码区序列与水稻、拟南芥、烟草、莴苣、菠菜和茶树的同源性分别为78.7%、62.6%、58.3%、60.8%、60.6%和61.2%;
小麦叶片在晴天情况下的PSII最大光化学效率(Fv/Fm)在上午随光强的增加而呈迅速下降,中午12:00达到最低点,表明发生光抑制。与此同时,非光化学猝灭(NPQ)迅速上升,在中午12:00达到最高值,光化学效率变化趋势相反。强光和弱光下叶黄素循环脱环氧化状态存在明显的差异。RT-PCT southern检测结果表明,小麦叶片中的WVDE的表达与反映过剩光能热耗散的NPQ值有很好的线性关系。
选用pBI121载体系统,将WVDE的5'端反向插入到载体中。利用根癌农杆菌介导法转化烟草。经过近60天左右的培养,共获得烟草再生植株80余株。Southern杂交和RT-PCR检测结果,可以断定目的基因已经整合到转基因烟草的基因组中。
WP=9
转基因烟草与对照植株在强光处理的初期和早上照光时间较短、光强较弱时的Fv/Fm和NPQ无较大的差别,但随着照光时间的延长和光强的增加两者的Fv/Fm值的下降和NPQ值的升高开始呈现较大的差异。盐胁迫中转基因烟草与对照的Fv/Fm和NPQ的变化也有相似的结果,胁迫初期两者的Fv/Fm的下降几乎相同,但随着处理时间的增加,转基因株迅速降低,而对照则保持缓慢下降的趋势。4℃低温处理中转基因烟草与对照的Fv/Fm在开始的前3h中下降幅度基本一致,而3h之后转基因株表现出Fv/Fm的急剧降低,但置于弱光下48h后转基因植株的Fv/Fm可以恢复到与对照相同的初始值。研究表明转反义WVDE基因植株抑制了烟草VDE的活性,导致热耗散能力下降。逆境条件下,植物的碳同化过程受到抑制,导致光能更加过剩,在此情况下抑制VDE,光抑制加重。说明WVDE在过剩光能耗散中起重要作用。
【关键词】:小麦 叶黄素循环 紫黄质脱环氧化酶 光保护 【学位授予单位】:山东农业大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2003
【分类号】:Q943.2
【目录】:
- 中文摘要8-10
- 英文摘要10-12
- 英文符号、缩略语及其说明12-14
- 第一部分 文献综述14-29
- 第二部分 研究论文29
- 前言29-31
- 第一章 小麦紫黄质脱环氧化酶基因的克隆31-53
- 1 材料与方法31-37
- 1.1 实验材料31-32
- 1.2 试验方法32-37
- 1.2.1 总RNA的提取32-33
- 1.2.2 反转录CDNA第一条链的合成33
- 1.2.3 目的基因CDNA片段的分离33-36
- 1.2.4 目的基因3’末端片段的分离36-37
- 1.2.5 目的基因5’端片段的分离37
- 2 结果与分析37-51
- 2.1 小麦总RNA的提取37
- 2.2 小麦VDE基因的克隆37-51
- 2.2.1 小麦VDE基因中间片段的克隆38-39
- 2.2.2 小麦VDE基因3’端片段的克隆39-42
- 2.2.3 小麦VDE基因5端片段的克隆42-43
- 2.2.4 小麦VDE基因的全系列43-45
- 2.2.5 小麦VDE基因的生化特征45-48
- 2.2.6 VDE基因的同源性比较48-51
- 3 讨论51-53
- 第二章 反义WVDE基因表达载体的构建和烟草的转化53-63
- 1 材料与方法53-59
- 1.1 材料53
- 1.1.1 植物材料53
- 1.1.2 菌株与质粒53
- 1.1.3 酶及生化试剂53
- 1.1.4 PCR引物53
- 1.2 试验方法53-56
- 1.2.1 反义WVDE基因表达载体的构建53-55
- 1.2.2 根癌农杆菌LBA4404感受态细胞的制备、转化55
- 1.2.3 感受态细胞的制备55
- 1.2.4 冻融法转化农杆菌55-56
- 1.2.5 农杆菌介导转化烟草56
- 1.3 转基因烟草的分子鉴定56-59
- 1.3.1 烟草基因组DNA的提取56-57
- 1.3.2 转基因植株的PCR鉴定57-58
- 1.3.3 SOUTHERN杂交分析58-59
- 2 结果与分析59-62
- 2.1 表达载体的构建59
- 2.2 烟草的转化情况59-60
- 2.3 转基因烟草的RT-PCR检测60-61
- 2.4 转基因烟草的Southern分析61-62
- 3 讨论62-63
- 第三章 小麦和转基因烟草VDE的表达研究63-80
- 1 材料与方法63-64
- 1.1 实验材料63
- 1.1.1 植物材料63
- 1.1.2 菌株与质粒63
- 1.1.3 酶及生化试剂63
- 1.1.4 PCR引物63
- 1.2 实验方法63-64
- 1.2.1 荧光参数的测定63-64
- 1.2.2 叶黄素组分的测定64
- 1.2.3 PCR-SOUTHERN杂交分析64
- 2 结果与分析64-74
- 2.1 小麦WVDE表达的日变化64-68
- 2.1.1 小麦WVDERT-PCRSOUTHERN检测65
- 2.1.2 小麦叶片的荧光参数的变化65-67
- 2.1.3 小麦叶片中叶黄素循环脱环氧化状态的变化67-68
- 2.2 转基因烟草荧光参数的变化68-74
- 2.2.1 低温条件下转基因烟草荧光参数的变化68-70
- 2.2.2 强光条件下转基因烟草荧光参数的变化70
- 2.2.3 盐胁迫下转基因烟草中荧光参数的变化70-72
- 2.2.4 转基因烟草中荧光参数的日变化72-74
- 3 讨论74-78
- 4 结论78-79
- 5 下一步的工作设想79-80
- 参考文献80-95
- 附录95-97
- 致谢97-98
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