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《山东农业大学》 2003年
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叶绿素降解相关酶类性质及其降解机制研究

甘志军  
【摘要】: 对生产中推广应用的14个小麦品种进行大田种植,依据植株叶片衰老程度的不同,筛选出PH85-16为易早衰型小麦品种,并以此为材料,在温周期16/25℃和光周期12/12h条件下进行液体培养,对7d龄的幼苗进行离体暗诱衰老处理,研究Chl降解相关酶的生化性质、活力变化及活性氧含量的变化,揭示Chl降解与细胞保护性酶活力及活性氧代谢的关系,探索早衰小麦叶片衰老过程中Chl降解代谢的生化机制。主要结果如下: 1.经过丙酮制粉、(NH_4)_2SO_4沉淀等步骤,对Chlase进行了初步纯化,纯化倍数为2.12倍;在优化Chlase测活方法的基础上,研究了小麦Chlase的基本酶学性质。Chlase可以催化Chl a和Chl b的脱植基反应,且Chlase与Chl b的亲和性较高;Chlase的最适pH为7.5,pH在7~8范围内,Chlase催化Chl植基的水解反应表现较高活性;Chlase催化最适温度为45℃;Chlase对Chl的K_m值为11.6μmol/L,V_(max)为1.14μmol/(min·gFW)。 2.Chlase的热稳定性及金属离子和部分络合剂对Chlase的作用的研究发现,在60℃、70℃、80℃保温时,Chlase活力丧失50%所需的时间分别为27min、22min和18min;低浓度的Ca~(2+)、Zn~(2+)和较高浓度的Mg~(2+)对Chlase有激活作用,而Fe~(3+)和EDTA对Chlase活性有较明显的抑制作用。 3.以菠菜为材料,分离了PaO活力检测所需的还原性剂Fd,经丙酮沉淀、透析脱盐、DEAE离子交换柱层析等纯化步骤进行了纯化,Fd纯化了6.6倍。从吸收光谱上看,仅经丙酮沉淀法制备的Fd在267、330nm具有吸收峰,是还原型的Fd;经过进一步纯化制备的Fd在267、330、420、463nm具有吸收峰,是氧化型的Fd,A_(420)/A_(275)比值及SDS-PAGE电泳分析表明,经进一步纯化得到的氧化型Fd纯度较高,达 甘志军:叶绿素降解相关酶类性质及其降解机制研究 电泳纯。 4.探索及优化了HPLC一荧光法检测Pao活力的方法,测试体系包 括底物Pheidea、N入nPH、ole6P、o一e6P一nH及还原型Fd,加入Pao 启动反应,固定反应时间,通过HPLC一荧光法检测产物量,用以表示 PaO的活性。在HPLC洗脱图谱上FCC的洗脱时间约为5.1 min,Pao 催化Pheidea降解的最适温度约是20℃。 5.小麦幼苗初生叶片离体诱导其衰老的过程中,随衰老进行,叶片 逐渐失绿黄化,Chia呈现出与Chl总含量相近的变化趋势,而Chib 含量基本上不变;生长调节剂6一BA和ABA分别能够延缓、加速总 Chl、Chla含量下限 6.小麦幼苗初生叶片离体诱导其衰老的过程中,随衰老进行,Chlase 活力呈现倒“V”形的变化趋势,变化幅度不大,PaO活力也呈现倒“V” 形的变化趋势,变化幅度较大;POD和AsP的活力呈现出先升高后降 低的变化趋势,而SOD、CAT和GR的活力变化整体表现为下降的趋 势,但是各酶活力的降低是不均衡的,从而导致02一和HZO:随衰老而 普遍积累,酶活力的变化及活性氧含量的变化与Chl含量的变化具有明 显的相关性。
【关键词】:Chl Chlase Fd PaO 细胞保护酶 活性氧。
【学位授予单位】:山东农业大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2003
【分类号】:Q946
【目录】:
  • 摘要5-7
  • Abstract7-10
  • 1 引言10-21
  • 2 材料与方法21-29
  • 2.1 试验材料21-22
  • 2.2 试剂与仪器22
  • 2.3 试验方法22-29
  • 3 结果与分析29-55
  • 3.1 Chlase生化特性的研究29-37
  • 3.1.1 Chlase的部分纯化29
  • 3.1.2 Chlase催化反应的最适pH29-30
  • 3.1.3 Chlase催化反应的最适温度30-31
  • 3.1.4 Chlase催化反应的初速度31-32
  • 3.1.5 Chlase浓度对酶活测定的影响32-33
  • 3.1.6 Chlase的热稳定性33
  • 3.1.7 Chlase对Chl a和Chl b的亲和性33-34
  • 3.1.8 不同金属离子和螯合剂对Chlase活力的影响34-35
  • 3.1.9 Chlase的动力学特征35-36
  • 3.1.10 黑暗诱导衰老过程中小麦叶片Chl含量与Chlase活性的变化36-37
  • 3.2 PaO体外活力测定所需组分Fd的分离纯化及性质研究37-40
  • 3.2.1 Fd的吸收光谱特性37-38
  • 3.2.2 Pd的DEAE柱层析结果38-39
  • 3.2.3 Fd的电泳结果39-40
  • 3.2.4 Fd的活性比较40
  • 3.3 PaO体外活力测定方法及PaO部分生化性质研究40-43
  • 3.3.1 PaO催化生成的FCC HPLC鉴定40-41
  • 3.3.2 PaO部分生化性质的研究41-42
  • 3.3.3 黑暗诱导衰老过程中小麦叶片Chl含量与PaO活性的变化42-43
  • 3.4 Chl降解与保护酶活性、活性氧代谢的关系43-55
  • 3.4.1 小麦叶片Chl含量的变化43-46
  • 3.4.1.1 不同状态小麦叶片Chl含量的变化43-44
  • 3.4.1.2 不同激素对小麦离体叶片Chl含量变化的影响44-45
  • 3.4.1.3 不同激素对小麦连体叶片Chl含量变化的影响45-46
  • 3.4.2 Chl及其降解产物的稳定性46-48
  • 3.4.2.1 Chl及降解产物Chillin和Pheide a的吸收光谱特性46-47
  • 3.4.2.2 光对Chl、Chillin和Pheide a稳定性的影响47-48
  • 3.4.2.3 Pheide a降解产物FCC的稳定性48
  • 3.4.3 小麦离体叶片衰老过程中保护酶活性的变化48-52
  • 3.4.3.1 POD活性的变化48-49
  • 3.4.3.2 AsP活性的变化49-50
  • 3.4.3.3 CAT活性的变化50
  • 3.4.3.4 SOD活性的变化50-51
  • 3.4.3.5 GR活性的变化51-52
  • 3.4.4 小麦离体叶片衰老过程中活性氧含量的变化52-53
  • 3.4.4.1 H_2O_2含量的变化52
  • 3.4.4.2 O_2含量的变化52-53
  • 3.4.5 Chl含量与保护酶活性、活性氧含量的关系53-55
  • 4 讨论55-61
  • 5 结论61-62
  • 参考文献62-70
  • 致谢70-71
  • 攻读学位期间发表的学术论文目录71

【引证文献】
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【参考文献】
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