猪Ⅲ型干扰素IFN-λ1的克隆、表达和抗病毒活性研究
【摘要】:
干扰素(interferon, IFN)是一类具有抗肿瘤、广谱抗病毒和增强免疫功能的细胞因子。根据其生物学活性和抗原活性的不同分为三类:IFN-α、IFN-β、IFN-γ,并将具有共同表面受体的IFN-α和IFN-β归属于Ⅰ型干扰素;而与IFN-α、IFN-β具有不同表面受体的IFN-γ归属于Ⅱ型干扰素。Ⅲ型干扰素则是2003年首次报道的一类不同于Ⅰ型干扰素和Ⅱ型干扰素的新家族,又称为λ干扰素,包括IFN-λ1、IFN-λ2、IFN-λ3,由于其基因结构与IL-10相似,所以又称为IL-29、IL-28A、IL-28B。这种新型的干扰素和其他的干扰素一样具有抗病毒、抗肿瘤和免疫调节等生物学活性。Ⅰ型和Ⅱ型干扰素已被广泛应用于人医临床多种疾病的治疗,而对于Ⅲ型干扰素的研究相对滞后,因此,开展对Ⅲ型干扰素研究无论是对动物传染病的控制还是对人医疾病的治疗都将起到一定的促进作用。鉴于此,本研究以猪Ⅲ型干扰素IFN-λ1为研究对象,开展了其对猪繁殖与呼吸综合征病毒抗病毒活性的研究,主要研究内容包括:
1.猪Ⅲ型干扰素IFN-λ1基因的克隆与序列分析
以猪外周血淋巴细胞中提取的总RNA为模板,PoIFN-λ1-F2、PoIFN-λ1-R2兼并引物为上下游引物,RT-PCR扩增获得PoIFN-λ1基因,片段大小为576bp,序列分析发现与GenBank登录的人IFN-λ1的核苷酸序列同源性为76.12%,氨基酸序列同源性为69.15%。SignalP3.0 Server软件分析PoIFN-λ1的氨基酸序列,发现前19个氨基酸构成了PoIFN-λ1的信号肽。
2.猪Ⅲ型干扰素IFN-λ1的原核表达
设计引物扩增去除信号肽的PoIFN-λ1片段,EcoRⅠ、XhoⅠ酶切后插入原核表达载体pET-28a(+),获得原核表达质粒pET-PoIFN-λ1,转化宿主菌BL21, IPTG诱导,SDS-PAGE分析证实PoIFN-λ1与His融合表达,并主要以不溶性包涵体形式存在,大小约为23kDa。将表达产物变性、复性、透析和纯化处理后,利用MDBK/VSV(水泡性口炎病毒)微量细胞病变抑制法测定其抗病毒活性,结果原核表达产物的生物活性为1.8×103U/mg。3.猪Ⅲ型干扰素IFN-λ1多克隆抗体的制备
以原核表达产物为抗原免疫新西兰兔制备了兔抗PoIFN-λ1的多克隆抗体,ELISA检测血清抗体效价为1:320。将此血清和抗His单克隆抗体分别作为一抗,通过Western blot检测PoIFN-λ1的原核表达产物,结果均在约23kDa处出现特异性反应带,说明血清中存在PoIFN-λ1的抗体,同时也说明PoIFN-λ1与His的融合表达成功,并具有反应原性。
4.猪Ⅲ型干扰素IFN-λ1的真核表达
构建真核表达质粒pcDNA-PoIFN-λ1,转染PK-15细胞,于转染后24h、48h、72h收集上清,以PoIFN-λ1的多克隆抗体为一抗,Western blot检测发现转染后不同时间PoIFN-λ1均有表达,但以转染后48h的表达量最高。进一步以MDBK/VSV微量细胞病变抑制法测定转染后48h上清的抗病毒活性,生物活性为2.3×103U/mL。
5.猪Ⅲ型干扰素IFN-λ1对PRRSV和PRV的抑制作用
PoIFN-λ1原核表达产物以50U/mL、100U/mL、150U/mL、200U/mL预处理SJPL细胞24h,分别接种PRRSV CH-1a、WuH3毒株,于接种后12h、24h、36h、48h收集细胞悬液,Real-Time PCR和TCID50检测病毒的增殖情况,结果发现PoIFN-λ1能明显抑制两种不同毒株mRNA的表达和病毒增殖的滴度,并且对CH-1a株的抑制效果优于WuH3株,但对两种毒株的抑制均呈剂量和时间的依赖性。
为了研究PoIFN-λ1对PRV增殖的影响,以PoIFN-λ1原核表达产物处理PK-15细胞,接种PRV进行空斑检测,结果随着PoIFN-λ1剂量的增加PRV形成的空斑数逐渐减少,说明PoIFN-λ1也能抑制PRV的增殖,并呈剂量依赖性。
【关键词】:猪Ⅲ型干扰素 PoIFN-λ1 猪繁殖与呼吸综合征病毒 伪狂犬病毒 表达 抗病毒 【学位授予单位】:华中农业大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2010
【分类号】:S852.5
【目录】:
- 摘要6-8
- Abstract8-10
- 缩略语表(Abbreviation)10-12
- 第1章 文献综述12-19
- 1.1 干扰素简介12
- 1.2 Ⅲ型干扰素的分子结构和编码蛋白12-13
- 1.3 Ⅲ型干扰素的产生和调节13-14
- 1.4 Ⅲ型扰素的受体14
- 1.5 Ⅲ型扰素的受体和信号转导14-15
- 1.6 Ⅲ型扰素的生物功能15-17
- 1.7 重组蛋白表达系统简述17-19
- 第2章 研究目的和意义19-20
- 第3章 材料与方法20-38
- 3.1 试验材料20-25
- 3.1.1 毒株、细胞与菌株20
- 3.1.2 载体与质粒20-22
- 3.1.3 工具酶及主要试剂22
- 3.1.4 培养基与抗生素及其配制22-23
- 3.1.5 主要缓冲液与相关试剂及其配制23-25
- 3.2 试验方法25-38
- 3.2.1 猪外周血单核细胞(PBMC)的分离及诱导培养25
- 3.2.2 猪PBMC总RNA的提取25
- 3.2.3 RT-PCR扩增PoIFN-λ125-26
- 3.2.4 RT-PCR产物或酶切产物的电泳检测26-27
- 3.2.5 PCR产物或酶切产物回收与纯化27
- 3.2.6 外源DNA片段与克隆质粒载体的连接反应27-28
- 3.2.7 大肠杆菌感受态细胞的制备(氯化钙法)28
- 3.2.8 连接产物的转化28
- 3.2.9 质粒的制备与鉴定28-30
- 3.2.10 PoIFN-λ1的原核表达30-32
- 3.2.11 PoIFN-λ1多克隆抗体的制备32
- 3.2.12 PoIFN-λ1的真核表达32-34
- 3.2.13 表达产物的Western blot检测34-35
- 3.2.14 ELISA试验35
- 3.2.15 半数细胞培养物感染量(TCID_(50))的测定35-36
- 3.2.16 PoIFN-λ1生物学活性的测定36
- 3.2.17 PoIFN-λ1抗PRRSV、PRV作用36-38
- 第4章 结果与分析38-49
- 4.1 PoIFN-λ1的扩增及序列分析38-40
- 4.1.1 PoIFN-λ1基因的扩增38-39
- 4.1.2 PoIFN-λ1的核苷酸序列和氨基酸序列39
- 4.1.3 PoIFN-λ1的氨基酸进化树分析39-40
- 4.2 PoIFN-λ1原核表达40-43
- 4.2.1 PoIFN-λ1原核表达质粒的构建40-41
- 4.2.2 融合蛋白的诱导表达41
- 4.2.3 融合蛋白的可溶性分析41-42
- 4.2.4 融合蛋白的Western blot检测及抗病毒活性测定42-43
- 4.2.5 PoIFN-λ1多克隆抗体的制备43
- 4.3 PoIFN-λ1真核表达43-45
- 4.3.1 PoIFN-λ1真核表达质粒的构建43-44
- 4.3.2 PoIFN-λ1真核表达产物的Western blot检测及抗病毒活性测定44-45
- 4.4 PoIFN-λ1对PRRSV和PRV的抑制作用45-49
- 4.4.1 PoIFN-λ1对PRRSV CH-1a增殖的影响45-46
- 4.4.2 PoIFN-λ1对PRRSV WuH3增殖的影响46-47
- 4.4.3 PoIFN-λ1对PRV Ea株增殖的影响47-49
- 第5章 讨论与结论49-53
- 5.1 讨论49-52
- 5.1.1 猪Ⅲ型干扰素IFN-λ1的克隆及序列分析49-50
- 5.1.2 猪Ⅲ型干扰素IFN-λ1的原核表达50-51
- 5.1.3 猪Ⅲ型干扰素IFN-λ1的真核表达51
- 5.1.4 猪Ⅲ型干扰素IFN-λ1对PRRSV和PRV抑制作用51-52
- 5.2 结论52-53
- 参考文献53-59
- 致谢59
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| 1 |
李珊,李秋艳,陈素华,李云龙;干扰素的新家族——IFN-λs研究现状[J];动物医学进展;2005年10期 |
| 2 |
刘运龙;程远国;刘学龙;;干扰素研究进展[J];动物医学进展;2008年02期 |
| 3 |
张永;;干扰素的分子生物学机制研究进展[J];海峡药学;2007年01期 |
| 4 |
李明才,何韶衡;白细胞介素-28和白细胞介素-29的研究进展[J];医学研究生学报;2004年07期 |
| 5 |
冯丽光;刘维藩;;新型干扰素—IFN-λ s的研究概况[J];中国现代普通外科进展;2008年02期 |
| 6 |
李明才;黄东阳;;人干扰素-λ的二级结构及其B细胞抗原表位的预测[J];汕头大学医学院学报;2006年04期 |
| 7 |
施国民,张锦海,李越希,吴玉章;人白细胞介素29的cDNA克隆和序列分析[J];中国生物工程杂志;2004年10期 |
| 8 |
张胜权,鲁云霞,罗欣,徐从贞,陈兵;人白细胞介素-29cDNA克隆及其在大肠杆菌系统的表达[J];实用医学杂志;2005年01期 |
| 9 |
李明才,何韶衡;人白细胞介素(IL)-28和IL-29基因的克隆与序列分析[J];细胞与分子免疫学杂志;2004年05期 |
| 10 |
严玉兰;刘洋;曹文雁;步雪峰;步志高;郑金旭;;人λ-干扰素在BHK-21中的表达及生物学活性的研究[J];细胞与分子免疫学杂志;2008年10期 |
|
|
|
|
|
| 1 |
张德震,吴淑华,侯云德,苏成芝;重组人γ干扰素的纯化[J];病毒学报;1989年01期 |
| 2 |
谢海燕,郭霄峰;猪α-干扰素基因的分子克隆与序列分析[J];动物医学进展;2002年06期 |
| 3 |
陈琳,张亚东;嗜甲醇酵母表达系统研究进展[J];国外医学(分子生物学分册);2002年01期 |
| 4 |
郑永波,王加力,李克荣,申世瑛,王新贵;猪白细胞干扰素在兽医临床上的应用试验研究[J];甘肃畜牧兽医;2003年02期 |
| 5 |
杨国师,杨国良;猪白细胞干扰素对乳猪疫病防治效果观察[J];贵州畜牧兽医;2001年05期 |
| 6 |
张永;;干扰素的分子生物学机制研究进展[J];海峡药学;2007年01期 |
| 7 |
谢海燕,郭霄峰;猪α-干扰素的原核表达[J];华南农业大学学报;2004年04期 |
| 8 |
吴玉章,朱锡华;一种病毒蛋白B细胞表位预测方法的建立[J];科学通报;1994年24期 |
| 9 |
曹瑞兵,周斌,陈德胜,陈溥言;猪γ干扰素的基因克隆、改造、表达及活性测定[J];南京农业大学学报;2003年02期 |
| 10 |
王新军,吴海玮,张兆松,季旻珺,王勇,吴观陵;应用因特网对SARS病毒M蛋白B细胞抗原表位的预测[J];南京医科大学学报(自然科学版);2003年06期 |
|