谷胱甘肽对凡纳滨对虾抗氧化防御的调控机理
【摘要】:凡纳滨对虾(Litopenaeus Vannamei)是世界上最优良的虾类养殖品种,在我国沿海地区已进行了大规模的人工养殖,目前是我国对虾的主导养殖品种和重要的出口水产品之一。但在集约化养殖过程中,对虾面临着大量的应激因素(如:拥挤、营养、环境、代谢等)。激烈的应激往往会引起对虾抗病力减弱,疾病爆发和流行,导致养殖者过度使用兽药和抗生素饲料添加剂。长期、大量使用抗生素会造成对虾肠道内菌群失调,破坏微生态环境,产生药物残留。药物残留会导致人类过敏反应、免疫抑制、致畸、致癌、致突变等。近几年我国发生了多起食品安全的重大事件,严重地挫伤了消费者的信心。随着国际贸易中绿色壁垒的逐渐加强,我国农产品特别是水产品出口受到的影响越来越大,所有这些严重威胁着我国对虾养殖业的可持续发展。因此,抗生素替代品的研究与开发已成为人们关注的热点。研制高效安全的抗氧化饲料添加剂,通过营养调控提高或激活对虾自身的抗氧化防御能力,是解决上述难题的有效的新途径之—
本论文以凡纳滨对虾为研究对象,通过“体内”(in vivo)和“体外”(in vitro)实验,系统研究了还原型谷胱甘肽(GSH)对凡纳滨对虾生长性能、抗氧化系统以及非特异免疫因子的影响;对凡纳滨对虾原代培养肝胰腺细胞的增殖、生理生化功能以及相关抗氧化酶的影响;并从分子水平上揭示了GSH在凡纳滨对虾上的抗氧化机理。本论文主要包括如下四个部分:
1.凡纳滨对虾组织抗氧化酶活性和脂质过氧化产物含量对氨氮胁迫的反应特点
本文选择南方有代表性的凡纳滨对虾(Litopenaeus vannamei)(初始体重为6.322±0.221g),分别测定了凡纳滨对虾在氨氮胁迫前后,腮丝、肌肉、肝胰腺和血清中超氧化物歧化酶(SOD)、过氧化氢酶(CAT)、谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)活性和GSH、丙二醛(MDA)含量以及机体总抗氧化能力(T-AOC)的变化情况。
结果显示,经离子铵氮胁迫后,凡纳滨对虾鳃丝中除GSH-Px (p0.05)外,肌肉中除SOD(p0.05)外,其它各抗氧化酶活性、T-AOC、GSH和MDA含量,在胁迫前后变化不大;在肝胰腺中,除T-AOC外,各项指标和胁迫前相比,有显著的变化(p0.05);在血清中,SOD、GSH-Px和MDA含量在氨氮胁迫前后有显著差异(p0.05)。其中肝胰腺中CAT、GSH,血清中GSH-Px活性与胁迫前相比,差异极显著(p0.01)。结果表明,血清和肝胰腺是凡纳滨对虾对铵氮造成胁迫的敏感组织,抗氧化酶SOD、CAT和GSH-Px、总抗氧化能力和MDA含量可作为衡量凡纳滨对虾氧化应激状态的敏感指标。
2.谷胱甘肽对凡纳滨对虾生长性能、抗氧化和非特异免疫功能的影响
在基础日粮中分别添加0、60、120、180、240和300mg/kg还原型谷胱甘肽(GSH),饲喂初始平均体重(initial body weight, IBW)为1.123±0.007g凡纳滨对虾(litopenaeus vannamei)(分别记为G0、G60、G120、G180、G240和G300组),研究饲料中添加GSH对凡纳滨对虾生长性能、机体抗氧化水平、脂质过氧化物含量和非特异免疫功能的影响。养殖试验持续8周。停止喂料24 h后,全部称重,统计耗料、死亡。每个重复随机取15只虾,取样。剩余部分放回原循环系统,加入20mg/L浓度的氯化铵处理1周,停止循环水,试验各组继续投喂试验饲料,第9周末,停喂24h后,统计成活率,取样。
试验结果显示:
(1)饲料中添加GSH能显著提高凡纳滨对虾的增重率、成活率和饲料转化效率。试验各组凡纳滨对虾成活率较对照组提高8.53%-31.69%(p0.05);增重率随GSH添加量的增加而增加,当添加量为180mg/kg时达到高峰;随着GSH添加量的进一步增加,增重率呈下降趋势(p0.05)。饲料中GSH添加量不低于120 mg/kg时,显著地降低饵料系数(p0.05);饲料中添加GSH提高了凡纳滨对虾血清、肝胰腺和肌肉中的蛋白浓度。当GSH添加量不低于180 mg/kg时,血清及肝胰腺蛋白浓度显著高于对照组(p0.05);肌肉蛋白浓度在GSH添加量180 mg/kg时达到最高(p0.05);鳃丝蛋白浓度试验各组差异不显著(p0.05);试验各组凡纳滨对虾的血淋巴细胞计数均显著高于对照组(p0.05),且与GSH添加量呈剂量-效应关系;当饲料中GSH的添加量分别60、120和180mg/kg时,凡纳滨对虾肝胰腺中GSH浓度显著升高(p0.05)。以增重率为评价指标,GSH在凡纳滨对虾饲料中的适宜添加量为174.13 mg/kg。
(2)饲料中添加一定量的GSH能提高凡纳滨对虾肝胰腺抗氧化能力和降低脂质过氧化物含量。饲料GSH能显著提高凡纳滨对虾肝胰腺中抗氧化酶活性(p0.05):其中120 mg/kg、180 mg/kg和300 mg/kg组的SOD活性,120 mg/kg、180 mg/kg和240 mg/kg组的GSH-Px活性,60 mg/kg、120 mg/kg组的GR活性,显著高于对照组(p0.05);各试验组肝胰腺中GSH含量和总抗氧化能力T-AOC比对照组分别提高了8.93%-52.57%和3.02%-37.03%,且呈剂量-效应关系(p0.05)。随着饲料GSH含量的升高,肝胰腺氧自由基(ROS)和脂质过氧化物MDA的含量呈下降趋势,分别在添加量为240 mg/kg和300 mg/kg时达到最低,且显著低于对照组(p0.05)。对虾成活率和肝胰腺抗O2能力,均呈现先升后降的趋势,各项指标分别在120 mg/kg、180 mg/kg组达到最高值,并显著高于对照组(p0.05)。
(3)在凡纳滨对虾的肝胰腺中,髓过氧化物酶(MPO)、溶菌酶(LSZ)、碱性磷酸酶(AKP)、酸性磷酸酶(ACP)活性随着饲料中GSH添加量的增加,均呈先升后降的趋势,在120-240 mg/kg之间达到最高值,且显著高于对照组(p0.05),但随着GSH量继续增加(高于240mg/kg时),各种酶的活性急剧下降。而在血清中,LSZ、AKP和ACP活性先随饲料GSH添加量的增加而增加,分别在180 mg/kg、240 mg/kg和240mg/kg达到最高值,然后急剧下降。血清和肝胰脏中的谷草转氨酶(AST/GOT)和谷丙转氨酶(ALT/GPT)呈下降趋势,在240 mg/kg组达到最低,且显著低于对照组(p0.05),但在300mg/kg组又有所回升。凡纳滨对虾经过离子铵胁迫1周后,发现一定添加量的GSH能提高氨氮胁迫凡纳滨对虾成活率,并对免疫因子有积极的影响。但不同的免疫因子,在不同组织敏感程度不一样,作用剂量不同。从本试验结果看,血清和肝胰腺中的LSZ、AST/GOT、ALT/GPT\ACP都是能反应凡纳滨对虾非特异免疫因子的敏感指标,与成活率结果比较一致;而MPO和肝胰腺中的AKP相对而言,规律性不强。
由上述可见,饲料中添加一定量的GSH能显著提高凡纳滨对虾的生长性能,提高凡纳滨对虾肝胰腺抗氧化能力和降低脂质过氧化物含量,有效提高凡纳滨对虾血清和肝胰腺中髓过氧化物酶、溶菌酶和磷酸酶活性,影响转氨酶的活性,并影响凡纳滨对虾机体的免疫因子水平,从而激发凡纳滨对虾的非特异免疫功能,提高凡纳滨对虾成活率,改善离子铵对凡纳滨对虾造成的氧化胁迫。
3.凡纳滨对虾肝胰腺线粒体脂质过氧化模型建立与GSH的抗氧化损伤作用
首先,建立凡纳滨对虾肝胰腺线粒体的制备方法。采用三种不同的差速离心法,提取凡纳滨对虾肝胰腺线粒体,用中性红—詹纳斯绿B (Jana's green B)染色鉴定,以OD260/OD280比值检查线粒体纯度。第二,建立凡纳滨对虾肝胰腺线粒体氧化损伤模型。分别用VC/FeSO4、NADH来诱导线粒体氧化,并确定各种催化剂的反应浓度,筛选反应时间和反应条件,建立两种诱导凡纳滨对虾肝胰腺线粒体的氧化模型。第三,研究GSH对凡纳滨对虾线粒体氧化损伤的抑制作用。在所建立的线粒体氧化损伤模型中加入不同浓度(0、0.1、0.2、0.4、0.8、1.2mmol/L)的GSH,以反应体系中MDA含量、线粒体膨胀度和DNA双链百分比为指标来观察GSH对线粒体脂质过氧化的抑制效果。研究结果显示:
(1)凡纳滨对虾肝胰腺线粒体制备方法为:按肝胰腺(鲜重):缓冲液=1:15加入缓冲液STE (mmol/L:Sucrose 250, Tris-HCl 10, EDTA 1, pH8.0)进行匀浆,4℃1000g离心15min;4℃10000g离心20min,用缓冲液STM (mmol/L:Sucrose 250, Tris-HCl 50, MgCl2 5, pH7.4)重悬浮纯化,中性红—詹纳斯绿B染色,高倍镜观察为亮绿色,OD260/OD280=1.73。
(2)建立的VC/FeSO4氧化模型为:在线粒体蛋白浓度1mg/ml, VC浓度0.2mmol/L, FeSO4浓度4μmol/L, pH7.4HEPES缓冲体系中,30℃,经30min反应。当外源GSH添加浓度为0.4mmol/L时,对线粒体脂质过氧化的抑制作用最显著。建立的NADH模型为:线粒体蛋白浓度1.0mg/ml, FeCl30.04mmol/L, ADP 4.0mmol/L,在25mmol/L HEPES/NaOH缓冲液pH7.4(含0.15mol/LKCl)条件下,加入NADH120μmol/L启动反应,30℃水浴,振荡30min后加入20%三氯乙酸终止反应。当外源GSH添加浓度为0.4mmol/L时,对线粒体的保护效果最好。
(3)通过对VC/FeSO4和NADH模型的比较发现,两种模型都能显著(p0.05)激发凡纳滨对虾肝胰腺线粒体的脂质过氧化,二者之间差异不显著(p0.05)。与对照组相比,两个模型MDA含量分别为2.10倍和1.43倍,线粒体膨胀度分别为1.71倍和1.38倍,DNA双链百分比分别是60.07%和55.13%。从MDA和线粒体膨胀度来看,NADH模型的效果更好;以DNA双链百分比作为指标,VC/FeSO4模型效果更佳。
4.凡纳滨对虾肝胰腺细胞原代培养、谷胱甘肽对细胞生长、生理生化和抗氧化功能以及抗氧化酶mRNA表达量的影响
首先建立凡纳滨对虾肝胰腺细胞原代培养方法。第二,研究GSH对细胞增殖、生理生化和抗氧化功能的影响。用含有不同浓度(0、0.1、0.2、0.4、0.8、1.2mmol/L)GSH的培养基对凡纳滨对虾肝胰腺细胞进行原代培养,分别在第24h、48h和72h,收集细胞培养上清液,测定离体肝胰腺细胞的活力、RNA/DNA比、白蛋白含量、一氧化氮合酶(NOS)、胰岛素样生长因子-I(IGF-Ⅰ)、ATPase、谷丙转氨酶(ALT/GPT)和谷草转氨酶(AST/GOT)活性。分别在第24h、48h和72h收集细胞,匀浆后,测定细胞匀浆上清液中SOD、GSH-Px、CAT活性、MDA和H202含量。第三,研究GSH对离体肝胰腺细胞SOD和CAT mRNA表达量的影响。收集原代培养72h的肝胰腺细胞,提取细胞RNA,测定SODmRNA和CATmRNA表达量。结果如下:
(1)建立的凡纳滨对虾肝胰腺细胞原代培养方法为:采用高锰酸钾浸泡、冰冷灭菌PBS溶液冲洗、75%乙醇体表消毒后取出肝胰腺,用0.05%Ⅱ型胶原酶27℃消化10min,低温离心(1200r/min, 10min; 1000r/min,5min),27℃、5%CO2和饱和湿度下进行培养(接种密度:5×105个细胞/m1)。72 h后,细胞状态良好,外表光滑,折光性好,经测定细胞活性高。
(2)GSH能促进凡纳滨对虾离体肝胰腺细胞增殖、提高RNA/DNA比,促进IGF-Ⅰ分泌,表明GSH能通过对生长有关激素的调控来促进细胞的生长,GSH除了本身的抗氧化功能外,还具有营养作用。GSH能促进离体肝胰腺细胞白蛋白和NOS酶分泌,提高体外培养肝细胞的生物活性。能通过提高ATPase活性,保护细胞膜通透性,维持膜的正常生理功能。
(3)培养72h后,添加GSH对抗氧化酶和MDA含量等的影响分别为:明显提高肝胰腺细胞匀浆中SOD活性,呈现先升后降,最后上升趋于平稳,除1.2 mmol/L组外,试验各组分别比对照组提高了17.28%、9.05%、37.04%和45.27%,其中0.8mmol/L组达到显著水平(p0.05);各试验组GSH-Px活性均高于对照组,但试验各组组间差异不显著(p0.05);MDA含量除1.2 mmol/L组外,试验各组均显著低于对照组(p0.05),在0.2 mmol/L组达到最低水平;H202含量在各试验组显著降低,各组依次降低了4.42%、17.85%、10.22%、25.58%和16.48%,其中试验0.8 mmol/L组能达到显著水平(p0.05)。
(4)添加GSH明显提高凡纳滨对虾离体肝胰腺细胞SODmRNA表达量,除0.1 mmol/L组外,各试验组的SODmRNA表达水平均显著高于对照组(p0.05)。与对照组相比,除1.2 mmol/L组外,添加GSH各组肝胰腺细胞CATmRNA的表达量均有所升高(p0.05)。结果表明,GSH能提高离体肝胰腺细胞中SOD酶活力,降低脂质过氧化产物含量,影响SOD和CATmRNA的表达。
5.结论
1) GSH在体内能改善凡纳滨对虾的生长性能,提高饲料转化效率和存活率,提高对虾机体的抗氧化水平和抗氧化能力,缓解离子铵引起的氧化应激。以增重率为评价指标,GSH在凡纳滨对虾饲料中的适宜添加量为174.13 mg/kg。
2)GSH在体外能抑制凡纳滨对虾肝胰腺线粒体的脂质过氧化,当GSH添加浓度为0.4mmol/L时,对线粒体的保护效果最好。外源GSH促进了离体肝胰腺原代培养细胞的生长、增殖,提高原代培养肝胰腺细胞的生物活性。能通过调节与生长代谢相关的酶和抗氧化酶的活性,降低MDA含量来保护细胞膜通透性,维持膜的正常生理功能。并提高了凡纳滨对虾离体肝胰腺细胞SODmRNA表达量,GSH的添加量为0.8 mmol/L时效果达显著水平。
【关键词】:谷胱甘肽 凡纳滨对虾 抗氧化酶 肝细胞原代培养 mRNA表达量
【学位授予单位】:华中农业大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2010
【分类号】:S968.22
【目录】:
【学位授予单位】:华中农业大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2010
【分类号】:S968.22
【目录】:
- 摘要12-17
- ABSTRACT17-26
- 缩略词表26-30
- 第一章 文献综述30-67
- 第一节 抗氧化理论及抗氧化剂的应用现状30-48
- 1 自由基与氧化应激的关系30-31
- 2 自由基、氧化应激对动物生产的影响31-33
- 2.1 自由基引起饲料氧化酸败31
- 2.2 自由基造成肉鸡腹水综合症31-32
- 2.3 自由基引起动物应激32
- 2.4 自由基降低畜禽肉品质32
- 2.5 自由基影响水产动物健康32-33
- 3 线粒体在氧化应激中的作用和地位33-36
- 3.1 线粒体的研究历史33
- 3.2 线粒体的生理功能33-34
- 3.3 线粒体的结构和分布34
- 3.4 线粒体与能量代谢34-35
- 3.5 线粒体与氧自由基损伤35-36
- 3.6 研究线粒体的意义36
- 4 氧化应激对生物的调节作用36-37
- 4.1 氧化应激在发育和分化过程中的作用36-37
- 4.2 氧化应激作为细胞凋亡的一种介导物37
- 4.3 氧化应激和信号转导相辅相成37
- 4.4 氧化应激通过调控基因对细胞凋亡进行调节37
- 5 自由基与营养物质的关系37-40
- 5.1 与蛋白质的关系38
- 5.2 与脂肪的关系38-39
- 5.3 与维生素的关系39
- 5.4 与矿物质的关系39-40
- 6 生物对氧化应激的应对措施40-45
- 6.1 第一道防线:细胞色素氧化酶使氧直接还原成水40
- 6.2 第二道防线:抗氧化酶40-43
- 6.3 第三道防线:抗氧化剂即自由基清除剂43-44
- 6.4 第四道防线:损伤后的修复44-45
- 6.5 第五道防线:凋亡45
- 7 抗氧化剂在水产动物中的应用现状45-46
- 7.1 保护饲料不受氧化损伤45-46
- 7.2 保护水产动物不受氧化损伤46
- 8 抗氧化理论研究的现状和饲料抗氧化剂研究的方向和发展趋势46-48
- 第二节 谷胱甘肽的生理功能及应用现状48-62
- 1 谷胱甘肽的结构和理化特性48-49
- 2 谷胱甘肽在动物体内的合成与代谢49-52
- 2.1 机体内GSH的主要来源49-50
- 2.2 GSH在动物体内的吸收50-51
- 2.3 GSH的消耗途径51-52
- 3 谷胱甘肽的生物学功能52-59
- 3.1 抗氧化、清除自由基、再生氧化剂52-53
- 3.2 谷胱甘肽的营养作用53-54
- 3.3 用于中毒的治疗或辅助治疗54-55
- 3.4 防辐射、防紫外线、抗衰老55-56
- 3.5 参与免疫反应56
- 3.6 谷胱甘肽与疾病56-59
- 4 谷胱甘肽在食品保健中的应用59
- 5 谷胱甘肽在动物中的应用59-62
- 5.1 GSH的促生长功能59-60
- 5.2 GSH在动物中抗氧化功能60
- 5.3 GSH在动物中其它功能60-61
- 5.4 谷胱甘肽在水产动物中的应用61-62
- 第三节 本项目研究的目的意义和研究内容62-67
- 1 本项目研究的必要性62-63
- 2 本项目研究的目的和意义63-64
- 3 本项目研究的主要内容64-65
- 3.1 凡纳滨对虾组织中抗氧化酶活性和脂质过氧化产物含量对氨氮胁迫的反应特点64
- 3.2 谷胱甘肽对凡纳滨对虾生长性能、抗氧化和非特异免疫功能的影响64
- 3.3 凡纳滨对虾肝胰腺线粒体脂质过氧化模型建立与GSH的抗氧化损伤作用64-65
- 3.4 凡纳滨对虾肝胰腺细胞原代培养、谷胱甘肽对离体肝胰腺细胞生长、生理生化和抗氧化功能以及抗氧化酶mRNA表达量的影响65
- 4 本研究的总体技术路线65-67
- 第二章 凡纳滨对虾组织中抗氧化酶活性和脂质过氧化产物含量对氨氮胁迫的反应特点67-76
- 1 引言67-68
- 2 材料与方法68-72
- 2.1 实验用虾68-69
- 2.2 测定指标69
- 2.3 样品的制备69-70
- 2.4 指标测定方法70-72
- 2.5 数据处理72
- 3 结果72-73
- 4 讨论73-75
- 5 小结75-76
- 第三章 谷胱甘肽对凡纳滨对虾生长性能、抗氧化和非特异免疫功能的影响76-108
- 1 引言76-77
- 2 材料与方法77-83
- 2.1 试验虾及饲养管理77-78
- 2.2 试验饲料78
- 2.3 样品收集与分析78-83
- 2.4 数据统计分析83
- 3 结果83-95
- 3.1 饲料中添加GSH对凡纳滨对虾生长性能的影响83-84
- 3.2 饲料中添加GSH对凡纳滨对虾组织蛋白含量的影响84-85
- 3.3 饲料中添加GSH对凡纳滨对虾血淋巴细胞计数、肝体比和肝胰腺GSH含量的影响85-86
- 3.4 试验虾肝胰腺中抗氧化酶活性和总抗氧化能力86-87
- 3.5 试验虾肝胰腺中氧自由基、抗超氧阴离子和脂质过氧化物含量87-88
- 3.6 GSH对离子铵胁迫前后凡纳滨对虾成活率的影响88
- 3.7 GSH对离子铵胁迫前后凡纳滨对虾肝胰腺中髓过氧化物酶(MPO)活性的影响88-89
- 3.8 GSH对离子铵胁迫前后凡纳滨对虾肝胰腺和血清中溶菌酶(LSZ)活性的影响89-90
- 3.9 GSH对离子铵胁迫前后凡纳滨对虾血清和肝胰腺中碱性磷酸酶(AKP)的影响90-91
- 3.10 GSH对离子铵胁迫前后凡纳滨对虾血清和肝胰腺中酸性磷酸酶(ACP)活性的影响91-92
- 3.11 试验各组凡纳滨对虾离子铵胁迫前后肝胰腺和血清中AST/GOT活性的变化92-94
- 3.12 试验各组凡纳滨对虾离子铵胁迫前后肝胰腺和血清中ALT/GPT活性的变化94-95
- 4 讨论95-106
- 4.1 GSH对凡纳滨对虾生长性能的影响95-96
- 4.2 GSH对凡纳滨对虾血淋巴细胞数量和肝胰腺GSH含量的影响96-97
- 4.3 GSH在凡纳滨对虾组织蛋白浓度和肝体比的影响97-98
- 4.4 GSH在凡纳滨对虾日粮中添加量的探讨98-99
- 4.5 GSH对凡纳滨对虾组织中抗氧化酶活性和机体总抗氧化能力的影响99-101
- 4.6 GSH对凡纳滨对虾组织中脂质过氧化产物的影响101
- 4.7 GSH在凡纳滨对虾体内抗氧化作用的可能机制101-102
- 4.8 铵氮胁迫对摄食GSH 8周后凡纳滨对虾体内非特异免疫因子的影响102-106
- 5 小结106-108
- 第四章 凡纳滨对虾肝胰腺线粒体脂质过氧化模型建立与GSH的抗氧化损伤作用108-129
- 第一节 凡纳滨对虾肝胰腺线粒体提取方法的研究108-116
- 1 引言108
- 2 材料与方法108-111
- 2.1 材料108-109
- 2.2 凡纳滨对虾的饲养管理109
- 2.3 仪器设备109
- 2.4 试剂的配制109-110
- 2.5 线粒体的提取110-111
- 2.6 线粒体纯度测定111
- 2.7 数据处理111
- 3 结果111-113
- 4 讨论113-115
- 4.1 提取温度113
- 4.2 提取时间113-114
- 4.3 细胞破碎方法114
- 4.4 匀浆条件114
- 4.5 纯化114
- 4.6 匀浆液pH值114-115
- 4.7 得率115
- 4.8 组织和匀浆液稀释比115
- 4.9 注意事项115
- 5 小结115-116
- 第二节 凡纳滨对虾肝胰腺线粒体脂质过氧化模型的建立以及GSH对线粒体氧化损伤的保护作用116-129
- 1 引言116
- 2 材料与方法116-120
- 2.1 实验材料116
- 2.2 仪器和试剂116-117
- 2.3 线粒体提取方法117
- 2.4 线粒体脂质过氧化模型建立117-119
- 2.5 指标测定119-120
- 2.6 数据分析120
- 3 结果与分析120-128
- 3.1 VC/FeSO4模型建立及GSH对线粒体脂质过氧化的保护效果120-124
- 3.2 NADH模型建立及GSH对线粒体脂质过氧化的保护效果124-127
- 3.3 VC/FeSO4和NADH氧化模型比较127-128
- 4 小结128-129
- 第五章 凡纳滨对虾肝胰腺细胞原代培养、谷胱甘肽对细胞生长、生理生化和抗氧化功能以及抗氧化酶MRNA表达量的影响129-168
- 第一节 凡纳滨对虾肝胰腺细胞原代培养方法的研究129-147
- 1 引言129-131
- 2 材料与方法131-136
- 2.1 实验用虾131-132
- 2.2 试剂配制132-133
- 2.3 细胞增殖检测方法133-134
- 2.4 细胞培养方法筛选134-136
- 2.5 原代细胞RNA/DNA值测定方法136
- 2.6 数据统计分析136
- 3 结果136-142
- 3.1 凡纳滨对虾肝胰腺细胞原代培养的优化条件136-141
- 3.2 优化条件培养的肝胰腺细胞原代培养照片141-142
- 4 讨论142-146
- 4.1 肝胰腺细胞最佳分离条件142-143
- 4.2 凡纳滨对虾肝胰腺细胞纯化条件143-144
- 4.3 凡纳滨对虾肝胰腺细胞适宜接种密度144
- 4.4 凡纳滨对虾肝胰腺细胞培养基144-145
- 4.5 培养基pH和盐度145-146
- 4.6 RNA/DNA值与细胞生长的关系146
- 5 小结146-147
- 第二节 GSH对凡纳滨对虾离体肝胰腺细胞生长、生理生化功能、抗氧化酶活性、SOD和CAT MRNA表达量的影响147-168
- 1 引言147
- 2 材料与方法147-151
- 2.1 实验对虾、试剂配制、肝胰腺细胞分离和培养方法147
- 2.2 GSH添加浓度147-148
- 2.3 肝胰腺细胞的培养上清液及细胞样品收集148
- 2.4 生化指标测定148-149
- 2.5 肝胰腺细胞中SOD和CATmRNA表达水平测定149-151
- 2.6 统计分析151
- 3 结果151-161
- 3.1 GSH对凡纳滨对虾离体肝胰腺细胞增殖和RNA/DNA比的影响151-152
- 3.2 GSH对凡纳滨对虾离体肝胰腺细胞中白蛋白和NOS的影响152-153
- 3.3 GSH对凡纳滨对虾离体肝胰腺细胞中IGF-Ⅰ含量和ATPase活性的影响153-154
- 3.4 GSH对凡纳滨对虾离体肝胰腺细胞中谷草转氨酶(AST/GOT)和谷丙转氨酶(ALT/GPT)的影响154-155
- 3.5 GSH对凡纳滨对虾离体肝胰腺细胞中抗氧化酶活性的影响155-156
- 3.6 GSH对凡纳滨对虾离体肝胰腺细胞中MDA和H2O2含量的影响156-157
- 3.7 GSH对凡纳滨对虾离体肝胰腺细胞SOD mRNA和CAT mRNA表达量的影响157-161
- 4 讨论161-167
- 4.1 GSH对凡纳滨对虾原代肝胰腺细胞增殖和RNA/DNA比的影响161-162
- 4.2 GSH对凡纳滨对虾离体肝胰腺细胞匀浆中白蛋白和NOS的影响162-163
- 4.3 GSH对凡纳滨对虾离体肝胰腺细胞匀浆中IGF-Ⅰ和ATPase活性的影响163-164
- 4.4 GSH对凡纳滨对虾离体肝胰腺细胞谷草转氨酶和谷丙转氨酶的影响164
- 4.5 GSH对凡纳滨对虾离体肝胰腺细胞中抗氧化酶活性、MDA和H_2O_2的影响164-165
- 4.6 GSH对凡纳滨对虾离体肝胰腺细胞SOD mRNA和CAT mRNA表达水平的影响165-167
- 5 小结167-168
- 第六章 结语168-170
- 1 结论168
- 2 创新点168-169
- 3 值得深入研究的内容169-170
- 参考文献170-189
- 致谢189-191
- 附录1191-192
- 附录2192
| 【参考文献】 | ||
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| 【共引文献】 | ||
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| 【二级参考文献】 | ||
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| 【相似文献】 | ||
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