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《中南大学》 2011年
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姜黄素聚氰基丙烯酸正丁酯纳米粒抗癌活性及逆转多药耐药研究

段菁华  
【摘要】:目的: 目前,抗肿瘤药物普遍存在药物靶向性差和全身毒性问题,限制了药物疗效的发挥和长期使用。而且普遍存在的肿瘤多药耐药(mu1tidrug resistance, MDR)也是治疗失败的主要原因。目前,体外逆转MDR的药物有很多,但是存在着体内不稳定,肿瘤靶点性差,毒副作用大等缺点。 近年来国内外学者开始从中药中筛选提取低毒的可逆转MDR的有效成分。姜黄素(curcumin, CUR)是常用中药姜黄(curcuma)中一个生物活性成分,具有多方面的药理作用,被认为是理想的抗癌化疗药物之一,具有逆转MDR的作用。作为中药逆转剂又较其他化药逆转剂有很大的优越性。但是姜黄素存在水溶性差,体内吸收少、不稳定,易降解等缺陷,因此限制了其应用。 生物纳米载体的应用不仅改善药物的溶解度,提高药物的生物利用度,而且还具有缓释性,延长药物体内滞留时间和靶向性,从而降低药物的毒性。 本研究的目的就是基于生物纳米载体的优势以及姜黄素的药学特点,筛选最佳的生物纳米材料,制备载姜黄素的纳米粒,并考察该纳米粒的抗癌活性及对人乳腺癌阿霉素耐药细胞MCF-7/ADR的逆转作用机制,为制备高效、长效、靶向和低毒的姜黄素奠定基础,为探索逆转MDR提供一条思路。 方法: (1) CUR-PBCA-NPs的制备及表征 采用阴离子乳化聚合法制备CUR-PBCA-NPs,通过单因素实验结合正交试验对CUR-PBCA-NPs的制备工艺进行了优化,考察稳定剂的种类、反应过程的pH值、单体的用量、稳定剂的用量及药物浓度对纳米粒的粒径、表面电位和包封率的影响,确定最佳制备工艺。 透射电子显微镜和激光粒度分析仪分别对纳米粒的外形、粒径和表面电位进行表征,紫外分光光度计和高效液相色谱的方法在420nm处测定药物的载药量和包封率,运用体外动态透析的方法研究了纳米粒中姜黄素的体外释药。 (2)体内外抗癌活性及药代动力学研究 MTT法比较CUR-PBCA-NPs、空白纳米粒(PBCA-NPs)和游离姜黄素(CUR)对人肝癌细胞HepG2、Be17402、Huh7和正常肝细胞L02存活率的影响,流式细胞仪和荧光显微镜检测不同浓度的载药纳米粒对HepG2细胞细胞周期和细胞凋亡的影响,western blotting方法比较了三者对HepG2细胞中的血管内皮生长因子(vascular endothelial growth factor, VEGF)和环氧合酶-2(cyclooxygenase, COX-2)表达的变化。 建立裸鼠移植性肝癌动物模型,尾静脉注射PBCA-NPs、CUR-PBCA-NPs和生理盐水后测定肿瘤大小,免疫组化法检测肿瘤组织中的VEGF和COX-2蛋白的表达。通过测定SD大鼠尾静脉注射CUR和CUR-PBCA-NPs后的血液中姜黄素的药物浓度来比较其主要的药物动力学参数。 (3)逆转多药耐药的研究 选用人乳腺癌阿霉素耐药细胞株MCF-7/ADR作为耐药细胞模型。MTT法比较CUR、CUR-PBCA-NPs和PBCA-NPs对MCF-7/ADR的逆转倍数,流式细胞仪测定CUR-PBCA-NPs对MCF-7/ADR细胞周期及细胞摄取阿霉素的影响。Western blotting方法比较CUR、CUR-PBCA-NPs和PBCA-NPs对MCF-7/ADR细胞中P-糖蛋白(P-glycoprotein, P-gp)、多药耐药相关蛋白1 (multidrug resistance-associated protein, MRP1)、乳腺癌耐药蛋白(breast cancer resistance protein, ABCG2)、DNA拓扑异构酶Ⅱα亚型(TopoisomeraseⅡα, TopoⅡα)多药耐药蛋白的表达,对姜黄素纳米粒逆转多药耐药的机制进行了探讨。 (4)阿霉素-姜黄素聚氰基丙烯酸正丁酯复方纳米粒(DOX-CUR-PBCA-NPs)的研制及逆转多药耐药的作用 采取乳化聚合法制备DOX-CUR-PBCA-NPs复方纳米粒,通过单因素实验考察姜黄素加入的时间、单体和壳聚糖的量、姜黄素和阿霉素的量对DOX-CUR-PBCA-NPs的粒径、表面电位、载药量和包封率的影响,确定最佳制备工艺。应用透射电子显微镜、傅里叶变换红外光谱、凝胶渗透色谱、示差扫描量热法来表征DOX-CUR-PBCA-NPs,运用体外动态透析的方法研究了复方纳米粒的体外释放,MTT实验和western blotting方法研究姜黄素与阿霉素联用的各种纳米制剂及单一药物纳米制剂对MCF-7/ADR的逆转效应。 结果: (1)优化的CUR-PBCA-NPs制备条件为:10mL反应体系,pH为1.22, BCA选择1.0%(V/V%),壳聚糖选择0.1%(W/V%),姜黄素的加入量为1mg。制备的姜黄素纳米粒的粒径约为185±13.12nm,表面电位为+50.1±2.08mV,载药量为1.078±0.05%,包封率为94.54±1.54%。制得的胶体溶液半年未发现有相分离和絮凝发生,其载药纳米粒粒径和分布无明显变化。CUR-PBCA-NPs的体外释药符合双相动力学释药规律,前30min有50%的突释,其余50%到第7天全部释放出来。 (2) CUR-PBCA-NPs的IC50 (250ng/mL,以游离姜黄素计算)远小于游离姜黄素的IC50 (15μg/mL),且对肿瘤细胞的生长抑制呈时间和浓度依赖性。CUR-PBCA-NPs减少了游离姜黄素本身对正常肝细胞L02的杀伤,在对正常肝细胞杀伤不大的同时能有效地抑制肝癌细胞的增殖。荧光显微镜、Annexin V-FITC/PI方法检测发现经姜黄素纳米粒处理后的HepG2细胞呈现明显的凋亡和坏死状态,细胞阻滞在G2/M期,与游离姜黄素呈现出相同周期的阻滞。体内实验表明:姜黄素纳米粒给药组治疗后的肿瘤体积的抑制率为56.46%,与生理盐水对照组和空白纳米粒对照组(抑制率约为7.69%)相比有显著性差异(P0.05%)。 CUR-PBCA-NPs治疗后使VEGF和COX-2在肿瘤组织的表达明显减少,肿瘤组织切片中COX-2和VEGF细胞染色为弱阳性,与强阳性的生理盐水组和空白纳米粒组相比,具有统计学差异(P0.05%)。同样,体外实验证明,20μg/mL CUR-PBCA-NPs(以纳米粒的浓度计算)处理HepG2细胞48h后,比等量的游离姜黄素更能抑制血管生成,使COX-2和VEGF的表达下调增加。 (3)通过SD大鼠尾静脉注射姜黄素纳米粒的水溶液和游离姜黄素药物的生理盐水溶液后,测定了不同时间点的血药浓度,比较得出,前者的平均滞留时间(MRT0-∞)比后者的长很多,表观容积分布Vd是后者的51倍,血药浓度-时间曲线下面积AUC0-∞约为后者的2倍,消除相消除半衰期(t1/2β)约为后者的52倍,说明姜黄素纳米粒具有比游离姜黄素更长的血药半衰期,生物利用度有了一定的提高,延长了姜黄素在循环系统内的滞留时间。 (4)姜黄素纳米粒相对于游离姜黄素的逆转效应增强了近两倍,10μg/mL DOX与阴性对照组对MCF-7/ADR的细胞周期的影响无显著性差异(P0.05%),而同时加入10μg/mL DOX与50μg/mL CUR-PBCA-NPs后,细胞出现G2/M期阻滞,同时加入40μg/mL的DOX与50μg/mL CUR-PBCA-NPs后,细胞则呈现S期阻滞。MCF-7/ADR经50μg/mL CUR-PBCA-NPs与5、10、20μg/mL DOX同时处理后,细胞内阿霉素的荧光强度明显高于相对应的阿霉素试验组。 CUR-PBCA-NPs能有效逆转MCF-7/ADR中P-gp的表达,随着孵育时间的递增,表达明显下降,处理5d时,P-gp的表达开始下降,到第7d时,就基本上检测不到P-gp的表达了。MRP1的下调程度不大。但TopoⅡα和ABCG2蛋白的表达与阴性对照组的细胞相比没有显著性的差异。说明姜黄素纳米粒逆转MDR的机制可能是逆转能量依赖性药物转出泵P-gp。(5)采用同样的乳化聚合法制备DOX-CUR-PBCA-NPs复方纳米粒,该纳米粒平均粒径为133±5.34nm, Zeta电位为+32.23±4.56mV, DOX和CUR的包封率分别为49.98±3.32%,94.52±3.14%。复方纳米粒中姜黄素和阿霉素的体外释放与单一药物纳米粒非常相似,说明两种药物共存并不影响各自的释放。MTT实验结果和Western Blotting实验结果均表明,DOX-CUR-PBCA-NPs与CUR-PBCA-NPs+ DOX-PBCA-NPs体外对MCF-7/ADR细胞的生长抑制活性相当,下调MCF-7/ADR细胞中P-gp的表达也相当,较没有用PBCA纳米粒包载的游离药物、单一药物的纳米制剂及其他形式的制剂联用的抗肿瘤活性及逆转多药耐药的性能都显著增强。说明利用PBCA纳米粒同时包裹抗癌药物阿霉素与中药逆转剂姜黄素协同用药可以增强克服MDR的疗效。 结论: 制备的这种带正电荷的CUR-PBCA-NPs很好地保留且增强了姜黄素的抗癌活性和逆转MCF-7/ADR细胞中P-gp介导的多药耐药。改善了姜黄素本身的水不溶性,提高了它的生物利用度,延长了其在循环系统内的滞留时间。将抗癌药物阿霉素包载在中药逆转剂姜黄素的PBCA纳米粒中形成复方纳米粒协同用药,可以进一步增强克服MDR的疗效。载药纳米技术用于逆转肿瘤多药耐药是很有前途的应用之一,这一方法给解决MDR提供了新策略,较其它的策略更为可靠易行,可为临床上对化疗产生耐药的患者提供一条新的治疗方法,具有广阔的应用开发前景。
【学位授予单位】:中南大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2011
【分类号】:R285

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3 刘燕玲;从中草药中研制新药[N];健康报;2006年
4 ;五味子:增长之果[N];吉林日报;2007年
5 曾艳兵 张妮娜 卜平;中药影响肿瘤细胞信号转导研究有待深入[N];中国医药报;2006年
6 胡德荣;胃癌多药耐药研究获新进展[N];中国医药报;2003年
7 上海长海医院中医科 苏永华 副主任医师;防治化疗中易出现的肿瘤多药耐药(上)[N];上海中医药报;2010年
中国博士学位论文全文数据库 前10条
1 刘立新;恶性淋巴瘤患者多药耐药的研究[D];中国协和医科大学;1994年
2 赵春亭;环孢菌素A逆转多药耐药的临床和基础研究[D];中国协和医科大学;1994年
3 段菁华;姜黄素聚氰基丙烯酸正丁酯纳米粒抗癌活性及逆转多药耐药研究[D];中南大学;2011年
4 周龙恩;孕激素受体拮抗剂ZXH951的生化药理及其作用机制研究[D];中国协和医科大学;2000年
5 李琳;肿瘤多药耐药性逆转的相关研究[D];复旦大学;2006年
6 李咏;克服肿瘤细胞多药耐药性的药物及其机制研究[D];中国协和医科大学;2008年
7 孟胜男;卡莫氟固脂纳米粒体外抗癌活性及其逆转人大肠癌细胞多药耐药作用[D];中国医科大学;2003年
8 翟宝进;超声波逆转人肿瘤多药耐药的体内实验研究[D];重庆医科大学;2004年
9 黄利华;青蒿琥酯对人急性白血病原代细胞增殖抑制作用及其机制的研究[D];广州中医药大学;2011年
10 席广民;自噬在双联苄化合物逆转耐药及紫杉醇化疗中的作用[D];山东大学;2011年
中国硕士学位论文全文数据库 前10条
1 苏爱玲;汉防己甲素联合屈洛昔芬逆转白血病细胞多药耐药机理研究[D];东南大学;2004年
2 宋玉成;千金藤素逆转多药耐药细胞EAC/ADR的作用与核因子κB的关系[D];郑州大学;2002年
3 金霞;复方藤梨根制剂对K562/ADM荷瘤裸鼠体内多药耐药逆转机制研究[D];浙江中医药大学;2006年
4 孙丽蕊;喹喔啉酮类化合物逆转多药耐药作用及QA3逆转机制研究[D];山东大学;2009年
5 王艳;夏枯草对肿瘤细胞多药耐药基因表达影响的研究[D];郑州大学;2009年
6 胡江文;INF-γ和VPL联合逆转人肺癌细胞系HTB-56R耐药性及逆转机制的研究[D];苏州大学;2001年
7 谢瑜;难治性多发性骨髓瘤的治疗进展[D];昆明医学院;2003年
8 张浪辉;rhTNF-α联合bcl-2反义寡核苷酸对血液肿瘤细胞株HL60和Ca46增殖与凋亡的影响[D];福建医科大学;2003年
9 武亚玲;盐酸千金藤碱逆转K562/ADR的多药耐药性及其与Bcl-2和P210~(bcr/abl)的关系[D];郑州大学;2005年
10 宋宇宁;川芎嗪茋类衍生物对K562/A02细胞的耐药逆转作用及机制研究[D];山东大学;2010年
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