放线菌HNS2-2的分离、鉴定及抗烟草花叶病毒活性产物的研究
【摘要】:
植物病毒病是农业生产中发生普遍、危害严重的一类病害,每年给农业生产带来很大的经济损失。现有的化学药物对植物病毒病的防治效果不佳,且对生态环境、人畜生存质量有负面影响。植物源农药因植物资源有限、成本高、效果不稳定等因素,难以商品化生产。因此,筛选、开发微生物源抗植物病毒活性物质是防治植物病毒的主要研究方向。
放线菌(Actinomycetes)是与人类关系极为密切的一类微生物,它们广泛存在于不同自然生态环境中,可以产生多种抗生素及非抗生素类活性产物,应用于人类细菌病、真菌病、寄生虫病、肿瘤甚至病毒病的防治。放线菌中以链霉菌合成抗生素次生代谢产物的能力最强,放线菌产生的抗生素中有90%是以链霉菌作为生产菌种生产的。现已从链霉菌中得到土霉素、金霉素、氯霉素、红霉素等氨基糖苷类、大环内酯类、多烯类、聚醚类抗生素。但对于防治植物病害的抗生素,尤其是抗植物病毒的活性物质,却很少报道。
本文从土壤放线菌的分离、抗TMV菌株的筛选、菌株的鉴定、摇瓶发酵条件的优化以及活性物质追踪分析等方面进行了系统研究,结果如下:
1)为了提高土壤中放线菌的分离效率,解决放线菌分离培养中真菌、细菌污染问题,采用多种分离培养基和不同浓度抑制剂,从土壤样品中选择性分离放线菌,试验结果表明,土样于90℃条件下加热处理1h,在10倍稀释的土壤悬浮液中,加入0.05%SDS,于40℃振荡20min后,用稀释平板涂布法接种于含有重铬酸钾(质量浓度为100mg/L)高氏1号培养基平板上,28℃培养6、7d,生长的放线菌数量多,且细菌、真菌数量少,最适于放线菌分离。采用此种方法从117份土样中分离得到放线菌菌株413个。
2)采用摩擦接种法接种烟草花叶病毒(TMV)系统侵染寄主普通烟草K326、枯斑寄主曼陀罗,反复筛选,得到具有抗TMV活性的放线菌菌株HNS2-2。
3)通过对HNS2-2菌株进行培养性状、形态特征、生理生化特征、16S rDNA序列的测定及其系统发育分析的研究,表明HNS2-2为一种链霉菌,与草绿色链霉菌的模式菌株S.herbaricolor strain NRRL B-3299T的序列同源性为100%,因此归入草绿色链霉菌,16S rDNA序列已在GenBank注册,登录序列号为EU035296。
4)进行摇瓶发酵培养基筛选、发酵温度、初始pH、接种量、装液量、种龄、发酵时间等条件优化,得出发酵培养基为10%大米粉、2.2%黄豆粉为主要成分,最佳发酵条件为取种龄24h按接种量8%接种,在初始pH7.2-7.4、30℃、220r/min条件下进行摇瓶发酵培养。
5)在对新菌株HNS2-2抗病毒活性物质的研究中,通过对发酵液进行加热酸化预处理、蒸发浓缩、透析分离、乙酸乙酯萃取逐级分离和活性追踪分析,得知HNS2-2活性物质为小分子脂溶性复合物。
【关键词】:链霉菌 烟草花叶病毒 抗病毒活性物 分离 筛选 发酵
【学位授予单位】:湖南农业大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2007
【分类号】:S432.43
【目录】:
【学位授予单位】:湖南农业大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2007
【分类号】:S432.43
【目录】:
- 摘要4-6
- Abstract6-15
- 第一章 文献综述15-34
- 1 链霉菌及其抗生素15-23
- 1.1 链霉菌的基本特点15-16
- 1.2 链霉菌产生的抗菌素16-23
- 1.2.1 链霉菌产生的氨基糖苷类抗生素16-17
- 1.2.2 链霉菌产生的大环内酯类抗生素17-18
- 1.2.3 链霉菌产生的多烯抗生素18-19
- 1.2.4 链霉菌产生的含磷多糖类抗生素19
- 1.2.5 链霉菌产生的聚醚类抗生素19-20
- 1.2.6 链霉菌产生的苯烃基胺类抗生素20
- 1.2.7 链霉菌产生的四环类抗生素20-21
- 1.2.8 链霉菌产生的多肽类抗生素21
- 1.2.9 链霉菌产生的其他抗生素21-23
- 2 农用抗生素的开发研究方法23-26
- 2.1 抗生素的一般开发模式23-24
- 2.2 农用抗生素开发研究要点24-26
- 2.2.1 拮抗菌株的分离、筛选24-25
- 2.2.2 开发价值的初步评价25
- 2.2.3 拮抗菌株的分类、鉴定25
- 2.2.4 发酵工艺优化25-26
- 2.2.5 抗生素作用机理的研究26
- 3 微生物抗植物病毒剂研究进展26-32
- 3.1 微生物抗植物病毒活性物的来源26-29
- 3.1.1 细菌及其代谢产物26-27
- 3.1.2 放线菌及其代谢产物27-28
- 3.1.3 真菌及其代谢产物28-29
- 3.2 微生物抗植物病毒物质的作用机制29-31
- 3.2.1 抑制植物病毒侵染29
- 3.2.2 抑制病毒的复制29-30
- 3.2.3 诱导植物抗性30-31
- 3.3 微生物抗植物病毒物质的筛选方法31-32
- 3.3.1 盆栽植株筛选法31
- 3.3.2 离体培养筛选法31-32
- 3.3 开发微生物抗植物病毒物质的展望32
- 4 本论文的目的与意义32-34
- 第二章 抗病毒活放线菌菌株的分离筛选34-50
- 1 材料与方法34-39
- 1.1 材料34-36
- 1.1.1 土壤样品34-35
- 1.1.2 试验用植物品种35
- 1.1.3 供试毒源35
- 1.1.4 培养基35
- 1.1.5 主要仪器和试剂35-36
- 1.2 方法36-39
- 1.2.1 土壤放线菌菌株的分离、纯化36-37
- 1.2.2 分离菌株的纯化和保藏37
- 1.2.3 抗病毒放线菌的初筛试验37-38
- 1.2.4 抗病毒放线菌的复筛试验38-39
- 2 结果与分析39-47
- 2.1 土壤放线菌菌株的分离、纯化结果及分析39-42
- 2.1.1 不同培养基对放线菌分离的影响39-40
- 2.1.2 重铬酸钾K_2Cr_2O_7对放线菌分离效果的影响40-41
- 2.1.3 土样热处理温度对放线菌分离的影响41-42
- 2.1.4 孢子活化条件对放线菌分离的影响42
- 2.2 抗病毒放线菌的初筛结果42-44
- 2.3 抗病毒放线菌的复筛结果44-47
- 2.3.1 抗病毒放线菌的复筛44
- 2.3.2 HNS2-2对TMV在枯斑寄主曼陀罗上的作用效果44-46
- 2.3.3 HNS2-2的代谢产物对TMV在系统侵染寄主上的防效46-47
- 3 小结与讨论47-50
- 3.1 小结47
- 3.2 讨论47-50
- 第三章 抗TMV放线菌的分类鉴定50-67
- 1 材料与方法51-60
- 1.1 主要试剂与溶液51-52
- 1.1.1 主要试剂51
- 1.1.2 主要溶液51-52
- 1.2 主要仪器52
- 1.3 供试菌株来源52
- 1.4 培养基52-54
- 1.4.1 分类鉴定培养基(培养特征和形态特征)52-53
- 1.4.2 分类鉴定培养基(生理生化特征)53-54
- 1.4.3 其他培养基54
- 1.5 形态培养特征观察54
- 1.6 生理生化特性鉴定54-55
- 1.6.1 明胶液化54-55
- 1.6.2 淀粉水解55
- 1.6.3 牛奶的凝固与陈化55
- 1.6.4 纤维素水解试验55
- 1.6.5 硝酸盐还原55
- 1.6.6 碳源利用55
- 1.7 16SrDNA序列测定及系统发育分析55-60
- 1.7.1 菌株基因组DNA的提取55-56
- 1.7.2 16S rDNA的PCR扩增56-57
- 1.7.3 PCR扩增产物的回收57
- 1.7.4 连接反应及连接产物的转化57-58
- 1.7.5 DH5a感受态细胞的制备58
- 1.7.6 连接产物的转化58
- 1.7.7 检测58-60
- 1.7.8 系统发育分析60
- 2 结果与分析60-65
- 2.1 HNS2-2形态及培养特征60-62
- 2.2 生理生化特征62-63
- 2.3 16S rDNA序列分析63-65
- 2.4 菌株HNS2-2鉴定结果65
- 3 小结与讨论65-67
- 3.1 小结65
- 3.2 讨论65-67
- 第四章 HNS2-2菌株发酵条件的优化67-81
- 1材料与方法67-71
- 1.1 主要试剂67
- 1.2 主要仪器67-68
- 1.3 试验菌株来源68
- 1.4 培养基68
- 1.5 活性物质检测指示菌的筛选68
- 1.6 碳源、氮源对菌株HNS2-2产活性物质的影响68-70
- 1.6.1 不同碳源对菌株HNS2-2产活性物质的影响69
- 1.6.2 不同氮源对菌株HNS2-2产活性物质的影响69
- 1.6.3 碳氮源正交优化实验69-70
- 1.7 培养条件对菌株HNS2-2产活性物质的影响70-71
- 1.7.1 温度对菌株HNS2-2产活性物质的影响70
- 1.7.2 初始pH对菌株HNS2-2产活性物质的影响70
- 1.7.3 接种量对菌株HNS2-2产活性物质的影响70
- 1.7.4 装液量对菌株HNS2-2产活性物质的影响70
- 1.7.5 种龄对菌株HNS2-2产活性物质的影响70
- 1.7.6 摇床转速对菌株HNS2-2产活性物质的影响70
- 1.7.7 发酵时间对菌株HNS2-2产活性物质的影响70
- 1.7.8 发酵过程中菌丝生长发育的规律70-71
- 2 结果与分析71-78
- 2.1 活性物质检测指示菌的筛选71
- 2.2 碳源、氮源对菌株HNS2-2产活性物质的影响71-73
- 2.3 培养条件对菌株HNS2-2产活性物质的影响73-78
- 2.3.1 温度对菌株HNS2-2产活性物质的影响73-74
- 2.3.2 初始pH对菌株HNS2-2产活性物质的影响74
- 2.3.3 接种量对菌株HNS2-2产活性物质的影响74-75
- 2.3.4 装液量对菌株HNS2-2产活性物质的影响75
- 2.3.5 种龄对菌株HNS2-2产活性物质的影响75-76
- 2.3.6 摇床转速对菌株HNS2-2产活性物质的影响76
- 2.3.7 发酵时间对菌株HNS2-2产活性物质的影响76
- 2.3.8 发酵过程中菌丝生长发育的规律76-78
- 3 小结与讨论78-81
- 3.1 小结78-79
- 3.2 讨论79-81
- 第五章 HNS2-2生物活性物质的活性追踪研究81-89
- 1 材料和方法81-84
- 1.1 材料81-82
- 1.1.1 试验用植物品种81
- 1.1.2 供试毒源81
- 1.1.3 HNS2-2发酵液81
- 1.1.4 主要试剂81
- 1.1.5 其它设备81-82
- 1.2 TMV提纯程序82
- 1.3 发酵液的预处理活性测定82-83
- 1.4 预处理发酵液的透析分离及活性测定83
- 1.5 透析外渗液的萃取分离及活性测定83-84
- 1.5.1 有机相、水相复合物对TMV在曼陀罗上的抑制作用83
- 1.5.2 有机相、水相复合物对金黄色葡萄球菌的抑制作用83
- 1.5.3 混合处理时间对萃取相复合物体外抑制病毒作用的影响83-84
- 2 结果与分析84-87
- 2.1 不同预处理对发酵液抗病毒活性的影响84
- 2.2 发酵液中大小分子复合物的抗病毒活性比较84-85
- 2.3 萃取分离物的抗病毒活性比较85-87
- 3 小结与讨论87-89
- 3.1 小结87
- 3.2 讨论87-89
- 第六章 结论与创新点89-90
- 1 结论89
- 2 创新点89-90
- 参考文献90-101
- 致谢101-102
- 作者简历102-103
- 附录103
| 【引证文献】 | ||
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| 【参考文献】 | ||
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| 【共引文献】 | ||
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| 【同被引文献】 | ||
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| 【二级引证文献】 | ||
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| 【二级参考文献】 | ||
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| 【相似文献】 | ||
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