小麦基因枪转化体系的建立和抗除草剂基因的导入
【摘要】:
小麦是重要的粮食作物之一,利用基因工程进行遗传改良的研究一直倍受人
们关注。本研究以西南地区小麦栽培品种为材料,建立起良好的再生体系和基因
枪转化体系,并把报告基因GUS和抗除草剂Bar基因导入小麦,获得了抗除草剂
Basta的转基因小麦新材料。主要结果如下:
1.基因型的选择和再生体系的建立
通过14个小麦品种的成熟胚培养,筛选出再生频率比较高、组培性状好的四
个栽培品种:川育G413、95319、绵阳19和川麦28。建立幼穗和幼胚的再生体
系:幼穗以绵阳19为主,取0.4~1.0cm长的幼穗为外植体材料诱导愈伤组织,分
化培养基MS+KT0.5mg/L+NAA0.2mg/L为最佳,再生率达到58.8%;幼胚培养
以川育G413和95319为主,接种时采用盾片朝上的方式,幼胚愈伤组织最佳的
分化培养基为MS+ZT0.5mg/L+NAA0.5mg/L,生根、壮苗培养基为1/2MS+IBA
5mg/L+蔗糖5%。在此条件下,幼胚愈伤再生频率达到55~75%。
2.小麦基因枪转化体系的建立
建立了小麦基因枪转化体系,并通过GUS基因的表达优化了转化条件和轰
击参数:包裹子弹的沉淀剂用50μl 2.5mol/L Ca(NO_3)_2+20μl 4O% PEG4000,
DNA/金粉的用量为0.25μg/125μg,轰击压力为1350psi,真空度27~28inches Hg,
每皿轰击一次。幼穗在轰击前预培养1d,轰击距离为9cm;幼胚在轰击前预培养
14d,轰击距离12cm;受体材料分别在轰击前4h和轰击后16h作渗透培养
(0.4mol/L渗透剂)。
3.转化体的筛选和抗性植株的获得
确定了不同筛选阶段的选择压浓度:愈伤组织继代时Basta为10~30mg/L;分化
时Basta为5mg/L或0mg/L;生根时Basta为30mg/L。按以上优化的基因枪转化
体系进行转化及筛选,最终得到了川育G413、绵阳19和Bobwhite三个品种的7
株转基因植株,转化率在0.45~1.2%之间,转化周期缩短至3个月左右。
4.转基因植株的鉴定
转基因植株经PCR检测和PCR-Southern检测证明外源Bar基因已导入小麦。
对7株转基因小麦叶片作除草剂Basta的表型性分析,结果有4株表现完全抗性,
3株表现部分抗性,表明Bar基因已在小麦植株中得到表达。
【关键词】:小麦;再生体系;基因枪;遗传转化
【学位授予单位】:西南农业大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2001
【分类号】:S512.103.5
【目录】:
【学位授予单位】:西南农业大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2001
【分类号】:S512.103.5
【目录】:
- 中文摘要5-6
- 英文摘要6-8
- 第一章8
- 一、 文献综述8-20
- 1. 植物基因工程概述8-9
- 2. 植物抗除草剂基因工程9-13
- 2.1 植物抗除草剂基因工程的策略10-12
- 2.2 抗除草剂基因工程的应用前景12-13
- 3. 禾谷类作物遗传转化研究进展13-20
- 3.1 禾谷类作物的组织培养13-14
- 3.2 应用于禾谷类作物的转化方法14-16
- 3.3 禾谷类作物转化使用的选择标记和报告基因16-19
- 3.4 小麦遗传转化的现状、存在问题及展望19-20
- 二、 引 言20-21
- 第二章 小麦再生体系的优化21-33
- 一、 材料与方法21-24
- 1. 植物材料21
- 2. 试验方法21-22
- 2.1 无菌材料的获得21-22
- 2.2 培养基22
- 2.3 植株材料的培养条件22
- 3. 再生体系的建立22-24
- 3.1 成熟胚的培养22
- 3.2 幼穗的培养22-23
- 3.3 幼胚的培养23-24
- 二 结果与分析24-33
- 1. 成熟胚培养24-25
- 2. 幼穗再生体系的建立25-27
- 2.1 不同发育时期幼穗的培养25-26
- 2.2 不同激素条件下幼穗愈伤组织的分化26-27
- 3. 幼胚再生体系的建立27-33
- 3.1 幼胚接种时最佳的放置方式27-28
- 3.2 ABA对幼胚愈伤组织分化的影响28-29
- 3.3 不同细胞分裂素对幼胚愈伤组织分化的影响29-30
- 3.4 ZT与不同生长素组合对愈伤组织分化的影响30-31
- 3.5 干燥处理对愈伤组织分化的影响31
- 3.6 不同生长素和蔗糖浓度对生根的影响31-33
- 三、 讨论33-36
- 第三章 小麦的基因枪转化36-57
- 一、 材料与方法36-45
- 1. 材料36-38
- 1.1 受体材料36
- 1.2 质粒36
- 1.3 主要仪器36
- 1.4 主要试剂36-37
- 1.5 常用培养基或溶液配方37-38
- 2. 试验方法38-45
- 2.1 大肠杆菌感受态细胞的制备及转化38
- 2.2 质粒DNA的大量提取38-39
- 2.3 质粒DNA的纯化39
- 2.4 质粒DNA的定量39
- 2.5 微弹制备和基因枪轰击39-40
- 2.6 基因枪转化体系的优化40-41
- 2.7 受体材料对除草剂Basta的敏感性试验41
- 2.8 轰击前材料的准备和轰击后转化子的筛选41
- 2.9 转基因植株的鉴定41-45
- 二 结果与分析45-53
- 1. 质粒DNA的提取、纯化和定量45
- 2. 基因枪转化体系的优化45-49
- 2.1 子弹包裹方式对GUS基因表达效果的影响45-46
- 2.2 不同金粉及DNA用量对转化效果的影响46-47
- 2.3 轰击的氦气压力对转化的影响47
- 2.4 幼穗转化条件的优化47-48
- 2.5 幼胚转化条件的优化48-49
- 2.6 基因枪转化体系的确立49
- 3. 受体材料对除草齐Basta的敏感性试验49
- 4. 转化体的筛选和抗性植株的获得49-50
- 5. 转化体的检测和鉴定50-53
- 5.1 GUS基因瞬时表达的检测50-51
- 5.2 抗性愈伤组织的PCR检测51-52
- 5.3 转化植株叶片对除草齐Basta的抗性52
- 5.4 转化植株的PCR检测52-53
- 5.5 转化植株的PCR-Southern杂交53
- 5.6 小麦转基因植株的育性表现53
- 三、 讨论53-57
- 附图57-60
- 小结60-61
- 参考文献61-68
- 缩略词表68-69
- 致谢69
| 【引证文献】 | ||
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| 【参考文献】 | ||
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| 【共引文献】 | ||
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| 【同被引文献】 | ||
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| 【二级引证文献】 | ||
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| 【二级参考文献】 | ||
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| 【相似文献】 | ||
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