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《西安交通大学》 2009年
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TLR4介导AngⅡ的致炎信号通路及PPARα/γ激动剂的干预

姬媛媛  
【摘要】:研究背景:动脉粥样硬化(atherosclerosis, As)是缺血性心脑血管病的病理基础,目前认为属慢性炎症性或自身免疫性疾病,但发病机制尚未完全清楚。Toll样受体(toll-like receptors, TLRs)是一类重要的模式识别受体,作为新的炎症信号传递门户蛋白,是免疫反应、慢性炎症和脂代谢紊乱间的桥梁。 血管紧张素II(angiotensin II, Ang II)在As等疾病的发病机制中扮演重要角色。Ang II与其受体结合后激活多种信号通路,诱导血管细胞释放多种细胞因子及生长因子,诱发血管炎性反应,导致As发生发展,但Ang II致炎效应与TLR4之间的关系及相关信号通路,国内外尚未见报道。 过氧化物酶增殖体激活受体(peroxisome proliferator-activated receptors, PPARs)是一类由配体激活的核转录因子,与代谢、炎症及As发生等有关。PPARα激动剂非诺贝特和PPARγ激动剂罗格列酮具有抗炎和抗As作用,但作用机制并不完全清楚,是否与干扰TLR4的信号转导有关尚不十分清楚。 研究目的: 1.观察Ang II对血管平滑肌细胞(VSMCs)中TLR4表达及炎性因子产生的影响,探讨Ang II的致炎效应与TLR4信号通路的关系,为阐明As的发病机制提供新的理论依据; 2.研究非诺贝特和罗格列酮对Ang II刺激的VSMCs中TLR4表达及炎性因子产生的影响和分子机制,以期阐明PPARs激动剂新的抗炎和抗As作用机制。研究方法: 1.动物实验 利用微渗透泵大鼠皮下埋植方法,在体输注Ang II(150 ng/kg/min),同时灌胃给非诺贝特(150 mg/kg)和罗格列酮(5、10 mg/kg)。用放射免疫法测定血清TNF-α和血浆6-酮-前列腺素F1α(6-keto-PGF1α);免疫荧光双标染色法检测主动脉平滑肌TLR4和基质金属蛋白酶-9(MMP-9)表达;western blot、real-time PCR法检测主动脉平滑肌TLR4、MMP-9、PPARα及PPARγ表达。 2.细胞培养和处理 原代培养大鼠VSMCs,以不同浓度Ang II(10~-9~10~(-6) M)和LPS(50~200 ng/ml)刺激细胞;另一组预先1 h加入非诺贝特(25~100μM)或罗格列酮(2.5~10μM),再用10~(-7) M Ang II刺激12、24、36、48 h后,用ELISA法测定细胞上清液中TNF-α和6-keto-PGF1α,细胞免疫荧光染色法检测VSMCs中TLR4和MMP-9表达,同法检测VSMCs中TLR4、MMP-9、PPARα及PPARγ表达。 3. Ang II刺激VSMCs产生炎性因子的TLR4信号通路研究 预先1 h加入TLR4阻断剂,再用10~(-7) M Ang II刺激细胞24 h,同法测定细胞上清液TNF-α和6-keto-PGF1α、VSMCs中MMP-9、PPARα及PPARγ的表达。 预先30 min加入AT1抑制剂losartan、AT2抑制剂PD123319、ERK1/2抑制剂PD098059或不同的联合,再用10~(-7) M Ang II刺激细胞24 h,同法检测VSMCs中TLR4表达。 预先30 min加入TLR4阻断剂,再用10~(-7) M Ang II刺激细胞24 h,同法检测VSMCs中IP-10表达。 预先1 h加入IP-10阻断剂,再用10~(-7) M Ang II刺激细胞24 h,同法检测VSMCs中PKC表达。 预先1 h加入PKC抑制剂白菜屈红碱(CH),再用10~(-7) M Ang II刺激细胞24 h,同法检测细胞中NF-κBp65表达。 4.小分子干扰RNA(small-interfering RNA, siRNA) 培养VSMCs,按照试剂盒说明用DharmaFECT 2转染试剂将TLR4 siRNA, IP-10 siRNA或negative control siRNA(NC siRNA)瞬时转入VSMCs中。在转染NC siRNA或TLR4 siRNA 48 h后,预先1 h加入非诺贝特(100μM)或罗格列酮(10μM),用10~(-7) M Ang II刺激细胞24 h,同法测定细胞上清液TNF-α和6-keto-PGF1α、VSMCs中MMP-9、PPARα和PPARγmRNA表达。 5.非诺贝特和罗格列酮对Ang II刺激VSMCs产生炎性因子TLR4信号通路的影响研究 预先1 h加入TLR4阻断剂,再给予非诺贝特(100μM)或罗格列酮(10μM)作用1 h,然后用10~(-7) M Ang II或100 ng/ml LPS刺激细胞24 h,同法测定细胞上清液TNF-α和6-keto-PGF1α、VSMCs中MMP-9、PPARα和PPARγ蛋白表达。 预先30 min加入losartan、PD123319、PD098059,再给予非诺贝特(100μM)或罗格列酮(10μM)作用1 h,然后用10~(-7) M Ang II刺激24 h;预先1 h加入非诺贝特(100μM)或罗格列酮(100μM),再用10~(-7) M Ang II刺激5 min或24 h,同法检测VSMCs中TLR4、ERK1/2和AT1蛋白表达。 细胞在转染NC siRNA或TLR4 siRNA 48 h后,预先1 h加入非诺贝特(100μM)或罗格列酮(100μM),再用10~(-7) M Ang II刺激24 h,同法检测VSMCs中IP-10蛋白表达;另一组细胞在转染NC siRNA或IP-10 siRNA 48 h后,预先1 h加入非诺贝特(100μM)或罗格列酮(10μM),再用10~(-7) M Ang II刺激24 h后,同法检测VSMCs中PKC蛋白表达。 预先1 h加入CH,再给予非诺贝特(100μM)或罗格列酮(10μM)作用1 h,然后用10~(-7) M Ang II或PKC特异性激动剂佛波酯(PMA)刺激24 h,同法检测VSMCs中NF-κBp65蛋白表达。 研究结果: 1. Ang II体内对VSMCs中TLR4和炎性因子产生的影响及PPARα/γ激动剂的干预结果显示,模型组血清TNF-α升高,血浆6-keto-PGF_(1α)降低(P0.05);主动脉VSMCs中TLR4、MMP-9蛋白和mRNA表达增强,PPAR_α、PPAR_γ蛋白和mRNA表达减少(P0.05)。与模型组相比,非诺贝特和罗格列酮降低TNF-α含量,升高6-keto-PGF_(1α)水平(P0.05),减少VSMCs中TLR4、MMP-9蛋白和mRNA表达(P0.05);非诺贝特增加PPARα蛋白和mRNA表达(P0.001),但对PPARγ蛋白和mRNA表达无明显影响(P0.05);罗格列酮增加PPARγ蛋白和mRNA表达(P0.001),但对PPARα蛋白和mRNA表达无明显影响(P0.05)。 2. Ang II体外对培养VSMCs中TLR4和炎性因子产生的影响及PPARα/_γ激动剂的干预 Ang II和LPS刺激VSMCs后,TNF-α剂量和时间依赖性升高,6-keto-PGF1α降低(P0.01)。非诺贝特和罗格列酮剂量依赖性降低TNF-α,升高6-keto-PGF1α( P0.01)。 Ang II和LPS刺激VSMCs后,TLR4、MMP-9蛋白和mRNA表达增加,PPARα、PPARγ蛋白和mRNA表达减少(P0.05)。非诺贝特和罗格列酮均可减少TLR4和MMP-9蛋白及mRNA表达(P0.05),但非诺贝特仅可增加PPARα蛋白和mRNA表达(P0.001),罗格列酮仅可增加PPARγ蛋白和mRNA表达(P0.001)。 3. Ang II刺激VSMCs产生炎性因子的TLR4信号通路 结果表明,阻断TLR4降低Ang II诱导的VSMCs中TNF-α(P0.05),升高6-keto-PGF1α(P0.05);抑制Ang II诱导的VSMCs中MMP-9蛋白和mRNA表达(P0.05),增加PPARα及PPARγ蛋白和mRNA表达(P0.05)。losartan和PD098059明显抑制Ang II诱导的VSMCs中TLR4蛋白和mRNA表达(P0.05),而PD123319对此无明显影响,说明Ang II激活TLR4主要由AT1及随后的ERK1/2介导。 Ang II增加VSMCs中IP-10蛋白和mRNA表达(P0.01),阻断TLR4减少Ang II诱导的VSMCs中IP-10表达(P0.05),说明IP-10可能位于TLR4致炎信号通路的下游。 Ang II明显增加VSMCs中PKC蛋白和mRNA表达(P0.001),IP-10阻断剂减少Ang II诱导的VSMCs中PKC表达(P0.01),说明Ang II可能通过IP-10激活PKC而发挥致炎作用。 Ang II增加VSMCs中NF-κBp65蛋白表达(P0.001),CH减少Ang II诱导的VSMCs中NF-κBp65表达(P0.01),说明Ang II可能通过PKC而激活NF-κB。 4. PPARα/γ激动剂对Ang II致炎的TLR4信号通路的干预 结果显示,Ang II和LPS明显升高VSMCs中TNF-α,降低6-keto-PGF1α( P0.001);TLR4阻断剂、罗格列酮和非诺贝特均明显减少Ang II和LPS诱导的VSMCs中TNF-α(P0.05),升高6-keto-PGF1α(P0.05);而且罗格列酮和非诺贝特也可增强TLR4阻断剂的效应。TLR4阻断剂、罗格列酮和非诺贝特减少Ang II诱导的VSMCs中MMP-9蛋白表达(P0.05),但TLR4阻断剂增加PPARα和PPARγ蛋白表达(P0.05),非诺贝特增加PPARα蛋白表达(P0.05),罗格列酮促进PPARγ蛋白表达(P0.05),三者合用也有协同作用。 TLR4 siRNA、非诺贝特和罗格列酮减少Ang II诱导的VSMCs中TNF-α产生(P0.001),增加6-keto-PGF1α释放(P0.001),抑制MMP-9 mRNA表达,但TLR4 siRNA几乎完全取消了非诺贝特和罗格列酮的效应。TLR4 siRNA也可取消Ang II减少VSMCs中PPARα和PPARγmRNA表达的效应(P0.05)。在NC siRNA组,非诺贝特或罗格列酮单独上调VSMCs中PPARα或PPARγmRNA表达(P0.05),也可促进Ang II诱导的VSMCs中PPARα或PPARγmRNA表达(P0.05),但TLR4 siRNA并不改变非诺贝特或罗格列酮促PPARα或PPARγmRNA表达的效应。 Losartan、PD098059、非诺贝特和罗格列酮均抑制Ang II诱导的VSMCs中TLR4蛋白表达(P0.05),但非诺贝特与losartan、PD098059合用无协同效应,而罗格列酮对losartan抑制TLR4蛋白表达无加强作用(P0.05),却可增强PD098059的阻断效应(P0.05)。 Ang II增强VSMCs中ERK1/2的磷酸化(P0.001),罗格列酮明显抑制这一效应(P0.001),但对未刺激细胞ERK1/2的磷酸化无明显影响。非诺贝特对Ang II刺激或未刺激的细胞ERK1/2磷酸化均无明显影响。Ang II刺激VSMCs后,AT1蛋白表达减少(P0.05),非诺贝特和罗格列酮对此无影响。 TLR4 siRNA、非诺贝特和罗格列酮减少Ang II诱导的VSMCs中IP-10蛋白表达(P0.05),但TLR4 siRNA几乎完全取消非诺贝特和罗格列酮的抑制效应(P0.05)。 IP-10 siRNA、非诺贝特及罗格列酮明显抑制Ang II诱导的VSMCs中PKC蛋白表达(P0.05),但IP-10 siRNA可取消非诺贝特和罗格列酮的效应(P0.05)。 非诺贝特和罗格列酮明显下调Ang II和PMA诱导的VSMCs中NF-κBp65蛋白表达(P0.05),增强CH的抑制效应(P0.01)。 研究结论: 1. Ang II体内外诱发大鼠VSMCs炎症反应及PPARα/γ激动剂的干预 1)Ang II促进大鼠VSMCs中TNF-α产生,抑制6-keto-PGF1α释放。 2)Ang II上调大鼠VSMCs中TLR4及MMP-9表达,下调PPARα及PPARγ表达。 3)非诺贝特和罗格列酮通过减少Ang II诱导的大鼠VSMCs中TNF-α分泌、促进6-keto-PGF1α释放,调节促炎和抗炎之间平衡,发挥抗炎、抗As作用。 4)非诺贝特和罗格列酮下调Ang II诱导的大鼠VSMCs中TLR4及MMP-9表达,上调PPARα或PPARγ表达,缓解炎症反应,遏制As的发生发展。 2. Ang II通过TLR4依赖信号通路诱导VSMCs的炎症反应TLR4依赖的信号通路(AT1→ERK1/2→TLR4→IP-10→PKC→NF-κB)介导Ang II对VSMCs的致炎反应,这一发现不但有助于阐明Ang II新的致炎及致As机制,而且为As的药物防治提供了新的靶点和途径。 3. PPARα/γ激动剂调控Ang II诱导的VSMCs炎症反应涉及TLR4依赖信号通路PPARα激动剂非诺贝特和PPARγ激动剂罗格列酮通过调控Ang II诱导的VSMCs中炎症因子产生,发挥抗炎及抗As作用。而这一作用的药理学基础与PPARα和PPARγ激活后干预TLR4依赖的致炎信号通路有关。因此,TLR4依赖的致炎信号通路有望成为PPARs激动剂防治As一个新的靶途径。
【学位授予单位】:西安交通大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2009
【分类号】:R963

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10 齐继成;减出健康 减出美[N];医药经济报;2002年
中国博士学位论文全文数据库 前10条
1 魏来;PPARγ1基因冠脉转染对大鼠缺血再灌注心肌的保护作用及机制[D];中南大学;2010年
2 罗居东;PPARα和YY1调控HO-1对肿瘤细胞生物学功能的影响及机制研究[D];苏州大学;2014年
3 王允亮;葛根芩连汤及其有效组分干预非酒精性脂肪性肝炎PPARγ的作用机制研究[D];北京中医药大学;2014年
4 陈韶华;PPARα基因V227A变异在肝细胞中的生物学作用及其机制研究[D];浙江大学;2011年
5 张又枝;NF-κB和PPAR-γ交叉对话调控LDL穿胞及其在动脉粥样硬化中的作用[D];华中科技大学;2013年
6 张又枝;NF-κB和PPAR-γ交叉对话调控LDL穿胞及其在动脉粥样硬化中的作用[D];华中科技大学;2013年
7 姬媛媛;TLR4介导AngⅡ的致炎信号通路及PPARα/γ激动剂的干预[D];西安交通大学;2009年
8 何谐;核受体PPARγ和FXR的抗炎机制研究[D];第三军医大学;2013年
9 王冠梁;熊果酸通过PPARα/γ信号转导通路改善KKA~y小鼠胰岛素抵抗的机制研究[D];第二军医大学;2011年
10 郑芬萍;LXRs激动对PPARγ转录调节脂肪因子表达的作用及机制研究[D];浙江大学;2011年
中国硕士学位论文全文数据库 前10条
1 曹园园;PPARγ和RXRα基因多态性与2型糖尿病易感性的分子流行病学研究[D];南京医科大学;2010年
2 关翘;PPARγ激动剂用于治疗阿尔茨海默氏症的行为学和电生理学的研究[D];宁波大学;2011年
3 杨旭红;同型半胱氨酸硫内酯诱导血管内皮损伤机制与PPARγ关系的探讨[D];中南大学;2010年
4 杨洋;HDAC4对转录因子PPARγ活性在神经元中的调节作用[D];南方医科大学;2010年
5 王全华;小檗碱抗Ang Ⅳ诱导的血管平滑肌细胞增殖与PPARα-NO信号通路关系研究[D];重庆医科大学;2011年
6 李丽婷;PPARγ2内源性配体对成骨细胞及骨髓细胞骨代谢相关基因表达的影响[D];山西医科大学;2011年
7 王素格;IR与PPARα/γ在NASH中变化及意义的实验性研究[D];河北医科大学;2010年
8 宋玉萍;PPARγ2基因Pro12Ala多态性与2型糖尿病及其血脂的关系[D];中国医科大学;2010年
9 冯彦景;游泳训练对胰岛素抵抗小鼠PPAR-γ及糖代谢的影响[D];中南大学;2010年
10 韩芳;PPARγ基因修饰对非酒精性脂肪性肝纤维化的防治机制[D];河北医科大学;2010年
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