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《西北农林科技大学》 2010年
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MEF2A基因原核表达系统构建及黄牛MEF2A、DLK1和CLPG基因遗传分析

陈付英  
【摘要】:本研究以南阳牛、秦川牛、郏县红牛、晋南牛、安格斯牛、中国荷斯坦牛、牦牛和水牛8个群体共1223个个体为材料,采用生物信息学、DNA双向测序技术、DNA序列分析、F-PCR-RFLP和PCR-SSCP分子标记技术,检测了MEF2A、DLK1和CLPG三个基因18个位点的遗传变异,分析了其遗传结构和遗传多样性,并将南阳牛、秦川牛和郏县红牛3个群体在上述基因位点的多态性与其生长性状进行了相关分析,以期获得相应的分子遗传学信息,探索这些基因的多态对3个黄牛群体生长发育的遗传效应,找到对重要经济性状具有显著效应的遗传标记,为中国黄牛的高效选育和分子标记数据库的建立、种质资源保存与利用提供遗传学依据。同时通过基因工程技术构建了黄牛MEF2A基因原核表达系统,实现了MEF2A基因在大肠杆菌中的成功表达,为进一步研究其功能奠定基础。本研究获得了以下结果: 1.MEF2A基因的克隆、表达及生物信息学分析 成功克隆黄牛MEF2A基因完整编码区(CDS)和1.2 Kb的3'UTR区,CDS区全长1494bp,编码498个氨基酸。生物信息学软件预测表明:该蛋白分子量为53.38 kDa,理论等电点为7.13。MEF2A蛋白包括三个重要部分:N端是高度保守的MADS-box(第1~56位氨基酸肽段)和MEF2(第57~86位氨基酸肽段)结构域,C端转录激活域存在差异;3'UTR区包括与mRNA稳定性有关的AU(ATTTA)序列。构建pET-MEF2A原核表达载体,经过IPTG诱导,在体外成功表达。 2.MEF2A基因的变异位点 本研究共设计了12对引物检测了MEF2A基因的9个外显子和1.1 Kb的3'UTR部分区域,检测到6个SNP位点,其中5个在外显子11,一个在3'UTR。在第11外显子的E11-A位点的C1598T突变,导致第420位氨基酸发生了ProLeu变化,其它4个突变均为同义突变(P420P、P421P、E434E、P465P)。G2032C突变位点位于3'UTR。突变间的连锁分析表明,C1598T突变位点和A1602G突变位点存在一定的连锁关系。 3.MEF2A基因基因遗传变异位点与生长性状的关系 MEF2A基因的6处突变均影响个体的早期生长性状。E11-A位点C1598T错义突变影响12月龄的胸围(P0.05),E11-B位点G1641A突变影响12月龄日增重(P0.05),E11-C位点C1734T突变影响6月龄体重和6月龄日增重(P0.05),E11-D位点G1599A突变影响12月龄日增重(P0.05),3'UTR位点G2032C突变影响南阳牛6月龄的体重、体高、体长和胸围。 4.DLK1的遗传分析 本研究共涉及DLK1基因外显子2~5和3'UTR。该基因编码区高度保守,在秦川牛和南阳牛群体中,外显子5发生了一个C451T同义突变,低度多态,处于哈代-温伯格平衡状态,在其它群体中没有发现突变。在3'UTR区发现一个碱基突变和两种碱基C缺失模式。在3'UTR区,秦川牛发生了C1103T突变,南阳牛发生了1104位碱基C缺失,郏县红牛发生了1104-1105位碱基C缺失。相对于黄牛,水牛3'UTR区的碱基1087和1088之间插入一个碱基T,1089位碱基发生CT突变。 E5-A所有指标优于E5-B,但未达到显著水平(P0.05)。其它群体未检测到多态。3'UTR位点检测到突变,显著影响12月龄胸围(P0.05),突变个体的该项指标低于纯合野生型个体。 DLK1蛋白的分子量大约为33.01 kD,理论等电点为4.466,DLK1是1型膜蛋白,氨基末端外表皮生长因子样结构域(25~206 aa),其次是一个相对较小的细胞外阳性膜区(59氨基酸),一个跨膜域(230~252 aa)和一个小的羧基端细胞质域(56氨基酸)。二级结构的两端以α螺旋为主,中间部分以β折叠为主。 5.牛的CLPG基因的遗传分析 分析了包括黄牛、牦牛和水牛3个牛属的8个群体,在秦川牛上发现C137T突变,检测到两种基因型AA和AB,突变杂合子AB型显著降低胸深指标(P0.05)。CLPG基因的序列在不同的属种存在AT-CG碱基转换。黄牛和水牛之间发现4处碱基转换,黄牛和牦牛之间仅存在一处碱基转换。
【关键词】: PCR-SSCP F-PCR-RFLP 多态 生长性状
【学位授予单位】:西北农林科技大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2010
【分类号】:S823.82
【目录】:
  • 摘要6-8
  • ABSTRACT8-14
  • 文献综述14-25
  • 第一章 分子标记研究进展14-17
  • 1.1 DNA 直接测序14-15
  • 1.2 单链构象多态性15
  • 1.3 变性高压液相色谱检测15
  • 1.4 温度梯度凝胶电泳15
  • 1.5 DNA 芯片15-16
  • 1.6 全基因组关联分析16-17
  • 第二章 本研究候选基因研究进展17-25
  • 2.1 骨骼肌的形成和分化及信号调控17-19
  • 2.2 MEF2A 基因研究进展19-21
  • 2.2.1 MEF2 基因的结构19-20
  • 2.2.2 MEF2 基因的功能20-21
  • 2.2.3 MEF2 基因与bHLH 家族之间相互关系21
  • 2.3 DLK1 的研究进展21-22
  • 2.3.1 DLK1 基因结构21-22
  • 2.3.2 DLK1 基因的功能22
  • 2.4 CLPG 基因的研究进展22-23
  • 2.5 CLPG 基因和DLK1 之间互作关系的研究进展23
  • 2.6 本研究的目的意义23-25
  • 试验研究25-83
  • 第三章 MEF2A 基因的克隆、原核表达及生物信息学分析25-43
  • 3.1 试验材料25
  • 3.1.1 材料25
  • 3.1.2 主要溶液与缓冲液25
  • 3.2 试验方法25-29
  • 3.2.1 DNA 和RNA 的提取25-26
  • 3.2.2 引物的设计与合成26
  • 3.2.3 退火温度的筛选26
  • 3.2.4 第一链的合成26-27
  • 3.2.5 扩增MEF2A 基因27
  • 3.2.6 目的基因的纯化27
  • 3.2.7 pGM-T 连接27-28
  • 3.2.8 目的基因的原核表达28-29
  • 3.3 结果29-40
  • 3.3.1 RNA 提取和目的基因克隆29
  • 3.3.2 目的片段与表达载体pET-32a 连接29-30
  • 3.3.3 诱导表达30
  • 3.3.4 MEF2A 基因3'UTR 扩增30
  • 3.3.5 MEF2A 基因DNA 序列和推测的蛋白30-34
  • 3.3.6 MEF2A 基因的密码子偏好性分析34-38
  • 3.3.7 MEF2A 蛋白结构特征分析与结构预测38-40
  • 3.4 讨论40-42
  • 3.5 本章小结42-43
  • 第四章 MEF2A 基因遗传多态性及其与生长发育的相关性43-64
  • 4.1 实验材料和方法43-44
  • 4.1.1 实验动物43-44
  • 4.1.2 实验试剂44
  • 4.1.3 主要溶液及缓冲液及主要仪器设备44
  • 4.1.4 实验方法44
  • 4.1.5 资料的统计分析方法44
  • 4.2 结果与分析44-60
  • 4.2.1.D NA 池PCR 扩增44-47
  • 4.2.2 MEF2A 基因Forced-PCR-RFLP 引物设计47-48
  • 4.2.3 MEF2A 遗传变异检测48-49
  • 4.2.4 MEF2A 遗传遗传结构分析49-53
  • 4.2.5 MEF2A 基因多态性与发育性状之间的相关分析53-54
  • 4.2.6 MEF2A 与MRFs 基因家族互作分析54-59
  • 4.2.7 基因间连锁不平衡分析59-60
  • 4.3 讨论60-63
  • 4.3.1 中国地方黄牛MEF2A 遗传变异位点分析60-61
  • 4.3.2 不同黄牛群体MEF2A 基因多态与群体遗传结构分析61
  • 4.3.3 MEF2A 基因的多态性与体尺指标的关系61-62
  • 4.3.4 MEF2A 基因11 外显子独特复杂的结构62
  • 4.3.5 MEF2A 基因与MRFs 基因家族部分基因之间互作分析62-63
  • 4.4 小结63-64
  • 第五章 DLK1 基因遗传多态性与生长发育的相关性64-76
  • 5.1 实验材料和方法64-65
  • 5.1.1 实验材料和方法64
  • 5.1.2 PCR 引物64-65
  • 5.2 结果与分析65-74
  • 5.2.1.P CR 扩增及电泳检测65-66
  • 5.2.2 PCR 产物的SSCP 分析66-68
  • 5.2.3 遗传多态性指标68-69
  • 5.2.4 DLK1 基因不同SNPs 与表型间相关分析69-72
  • 5.2.5 DLK1 基因与MRFs 家族不同位点之间的相互作用72
  • 5.2.6 不同群体间的遗传差异及聚类分析72
  • 5.2.7 蛋白结构预测72-74
  • 5.3 讨论74-75
  • 5.4 小结75-76
  • 第六章 CLPG 遗传多态性及其与生长发育之间的相关分析76-82
  • 6.1 实验材料和试验方法76
  • 6.2 结果与分析76-79
  • 6.2.1 PCR 产物的检测76
  • 6.2.2 遗传多态性指标76-77
  • 6.2.3 不同品种/种CLPG 测序结果比较77-78
  • 6.2.4 CLPG 突变与表型间相关性分析78
  • 6.2.6 CLPG 基因和 DLK1 基因间连锁不平衡分析78-79
  • 6.2.7 CLPG 基因和 DLK1 基因间互作分析79
  • 6.3 讨论79-80
  • 6.3.1 秦川牛CLPG 基因多态性及与体尺指标的关系79-80
  • 6.3.2 CLPG 群体遗传学分析80
  • 6.3.3 CLPG 基因和DLK1 基因间连锁不平衡分析及互作分析80
  • 6.4 小结80-82
  • 第七章 结论与创新点82-83
  • 7.1 结论82
  • 7.2 创新点82-83
  • 参考文献83-93
  • 附录93-108
  • 致谢108-109
  • 作者简介109

【参考文献】
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