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《西北农林科技大学》 2002年
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mtlD/gutD双价耐盐基因转化杨树、猕猴桃的研究

樊军锋  
【摘要】: 我国“三北”及沿海地区有大量盐碱地。随着工业迅速发展、人口猛增和可耕地面积的减少,培育抗盐植物材料,开发利用盐碱地显得日益重要。 杨树为“三北”地区主要人工造林树种,栽培数量很大;猕猴桃为一新兴果树,经济价值较高。提高这2个树种抗盐性,扩大其栽培区域是开发利用盐碱地的有效途径,具有重要的生产意义。 本实验计划通过将mtlD/gutD双价耐盐基因导入杨树、猕猴桃,来提高这2个树种的抗盐能力。转化方法以叶盘法为主,辅助使用了基因枪法。所用植物双价双元表达载体为pBIMG,其上含有双价抗盐基因mtlD/gutD、双重增强的35S启动子和TMV“Ω”片段的翻译增强子及NPT-Ⅱ卡那霉素抗性标记基因,农杆菌菌株为LBA4404。杨树选用“三北”地区栽植数量较多的美洲黑杨×青杨杂种,猕猴桃选用经济价值较高的秦美猕猴桃。主要研究内容如下。 1利用正交等实验设计开展了杨树、猕猴桃叶片外植体高效再生系统建立研究。通过系统实验,筛选出杨树叶片外植体不定芽诱导最佳配方为MS+6-BA0.5mg/L+NAA 0.01mg/L,不定芽生根诱导最适配方为1/2MS+NAA 0.01mg/L;猕猴桃叶片外植体不定芽诱导最佳配方为:MS+6-BA 6mg/L+NAA 0.1mg/L,不定芽生根诱导最适配方为:1/2MS+NAA 0.01mg/L+IBA 0.5mg/L+GA 1mg/L。 2通过卡那霉素敏感实验,确定了杨树叶片不定芽诱导卡那霉素临界敏感浓度为50mg/L,不定芽生根诱导卡那霉素临界敏感浓度为60mg/L;秦美猕猴桃叶片不定芽诱导卡那霉素临界敏感浓度为50mg/L,不定芽生根诱导卡那霉素临界敏感浓度为40mg/L。 3利用叶盘法开展了mtlD/gutD双价耐盐基因转化杨树的研究。经叶盘不定芽诱导及不定芽生根诱导阶段卡那霉素连续筛选,获得了38株生根卡那霉素抗性植株。抗性植株经PCR检测,28株呈阳性。对其中7株阳性植株进行southern及Western杂交,有4株二者均呈阳性,确证双价耐盐基因成功整合到杨树基因组中并得到表达;利用叶盘法和基因枪相结合的办法,开展了mtlD/gutD双价耐盐基因转化猕猴桃的研究。获得卡那霉素生根抗性植株20株,其中6株经PCR检测呈阳性,初步证明双价耐盐基因转化获得成功。 4开展了转基因植株耐盐性测定。结果表明,杨树未转基因植株NaCl最高耐受浓度为0.2%,4株转基因植株抗NaCl能力最低为0.4%,最高达0.6%,比对照有较大幅度提高;猕猴桃未转基因植株NaCl最高耐受浓度为0.1%,6株PCR阳性植株中,2株抗NaCl能力与对照一致(为0.1%),推测为假阳性,另4株NaCl耐受浓度为0.2~0.4%,比对照有不同程度提高。 2 milD/gutD双价耐盐基因转化杨树、猕猴桃的研究 本实验在建立了杨树、猕猴桃叶片外植体高效再生系统及确定了卡那霉素耐受浓 度的基础上,利用叶盘法、叶盘法和基因枪相结合的办法分别开展了milD哈utD双价 耐盐基因转化杨树和猕猴桃的研究。经PCR、Southern及Western杂交检测,确证 milD哈utD双价耐盐基因成功整合到4株杨树基因组中并得到表达。同时,PCR检测 也初步证明部分猕猴桃植株转化获得成功。耐盐测定表明转化植株耐盐性比对照均有 不同程度提高。这在杨树、猕猴桃耐盐基因工程研究中尚属首次。
【关键词】:milD/gutD双价耐盐基因 杨树 猕猴桃 基因转化 分子生物学检测 耐盐测定
【学位授予单位】:西北农林科技大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2002
【分类号】:S188
【目录】:
  • 中文摘要3-5
  • 英文摘要5-13
  • 第一章 文献综述13-32
  • §1 植物的抗盐性13-15
  • 1 土壤盐分过多对植物的危害13-14
  • 1.1 渗透胁迫13
  • 1.2 营养缺乏胁迫13
  • 1.3 离子毒性胁迫13-14
  • 1.4 生理代谢紊乱14
  • 2 植物抗盐的生理基础14-15
  • 2.1 避盐机理14-15
  • 2.1.1 拒盐14
  • 2.1.2 泌(排)盐14
  • 2.1.3 稀盐14-15
  • 2.2 耐盐机理15
  • 2.2.1 耐渗透胁迫15
  • 2.2.2 耐营养缺乏15
  • 2.2.3 耐代谢失调15
  • §2 植物耐盐基因工程研究的意义及耐盐基因(或蛋白)的分离克隆15-16
  • 1 意义15-16
  • 2 耐盐基因(或蛋白)的分离克隆16
  • §3 植物耐盐的分子机制16-18
  • 1 植物的柜钠、排钠机制17
  • 2 合成相溶性物质17
  • 3 调控K离子运输系统,提高K离子的选择吸收能力17
  • 4 调控水通道蛋白17-18
  • 5 增强抗氧化防御反应18
  • 6 改变植物的光合作用途径18
  • §4 抗渗透胁迫基因工程研究进展18-21
  • 1 mtlD和gutD(1-磷酸甘露醇脱氢酶基因和6-磷酸山梨醇脱氢酶基因)18-19
  • 2 SacB(果聚糖-蔗糖酶基因)19
  • 3 OTSA和OTSB(6-磷酸海藻糖合成酶基因和6-磷酸海藻糖磷酸化酶基因)19
  • 4 BADH基因(甜菜碱醛脱氢酶基因)19-20
  • 5 LEA(胚胎发生晚期丰富蛋白基因)20
  • 6 H氢口比咯-5-羧酸合成酶基因(P5CS)20
  • 7 IMTl(肌醇甲基转移酶)和Inpsl(1-磷酸肌醇合成酶)20
  • 8 DMS合成酶基因(3-Dimethylsulfonioproponate)二甲基硫堇化合物合成酶基因20
  • 9 Osmotin合成酶基因(渗调蛋白合成酶基因)20-21
  • §5 山梨醇、甘露醇代谢途径及mtlD、gutD基因研究进展21-24
  • 1 甘露醇、山梨醇在植物中的分布21
  • 2 山梨醇、甘露醇的作用21
  • 3 甘露醇、山梨醇的代谢21-23
  • 3.1 甘露醇代谢21-22
  • 3.1.1 甘露醇在高等植物中的代谢21-22
  • 3.1.2 甘露醇在大肠杆菌中的代谢22
  • 3.2 山梨醇代谢22-23
  • 3.2.1 山梨醇在高等植物中的代谢22
  • 3.2.2 山梨醇在大肠杆菌中的代谢22-23
  • 4 甘露醇和山梨醇在转基因植物中的可能代谢途径及命运23
  • 4.1 可能代谢途径23
  • 4.2 可能的命运23
  • 5 mtlD、gutD的研究及基因克隆23-24
  • 5.1 mtlD、gutD的研究23-24
  • 5.2 gutD、mtlD基因的克隆24
  • 6 mtlD、gutD基因的转化24
  • §6 转化基因的遗传特性24-28
  • 1 转基因植物中外源DNA的整合位点和拷贝数24-25
  • 1.1 整合位点24-25
  • 1.2 整合的拷贝数25
  • 2 外源基因对植物基因组基因结构的影响25
  • 3 外源基因的大小及T-DNA对基因整合的影响25
  • 4 转基因植物中外源DNA整合的遗传效应25-26
  • 4.1 位置效应26
  • 4.2 共拟制效应26
  • 4.2.1 正意拟制(即基因沉默)26
  • 4.2.2 反意拟制(即重复诱导的基因沉默)26
  • 4.3 重排效应(rearrangement)26
  • 5 转化基因的遗传稳定性26-27
  • 6 外源基因在转化植株中的遗传传递规律27
  • 6.1 单基因位点的孟德尔遗传27
  • 6.2 多基因位点的孟德尔遗传27
  • 6.3 非孟德尔的遗传方式27
  • 7 转化方法对整合外源基因结构及遗传特性的影响27-28
  • 7.1 转化方法对外源基因结构的影响28
  • 7.1.1 农杆菌介导转化的外源DNA的结构特点28
  • 7.1.2 DNA直接转化的外源DNA的结构特点28
  • 7.2 转化方法对外源基因遗传稳定性的影响28
  • §7 植物耐盐基因工程研究应采用的几个策略28-29
  • 1 加强非盐生植物耐盐机理研究28
  • 2 开展耐盐基因定位及分离研究28-29
  • 3 使用盐胁迫诱导的组织特异性启动子29
  • 4 构建并转移复合基因29
  • 5 优化转化载体中各元件的组合,消除基因沉默(gene silence)29
  • 6 运用MAR序列29
  • §8 植物耐盐基因工程前景展望29-31
  • 引言31-32
  • 第二章 材料和方法32-45
  • §1 材料32-33
  • 1 植物材料32
  • 2 基因、质粒及菌株32
  • 3 阳性对照质粒32
  • 4 抗体32-33
  • 5 引物33
  • 6 试剂33
  • §2 方法33-45
  • 1 菌的保存与活化33-34
  • 2 转化受体系统的建立34-35
  • 2.1 杨树转化受体系统的建立34
  • 2.1.1 再生系统的建立34
  • 2.1.2 卡那霉素敏感性试验34
  • 2.1.3 农杆菌敏感性试验34
  • 2.2 猕猴桃转化受体系统的建立34-35
  • 2.2.1 再生系统的建立34-35
  • 2.2.2 卡那霉素敏感性实验35
  • 2.2.3 农杆菌敏感性试验35
  • 3 转化及筛选35-38
  • 3.1 杨树转化及筛选35-36
  • 3.1.1 菌的活化36
  • 3.1.2 转化36
  • 3.2 猕猴桃的转化及筛选36-38
  • 3.2.1 基因枪转化所用基因提取、制备及基因枪的操作36-38
  • 3.2.2 菌的活化38
  • 3.2.3 转化、筛选及再生38
  • 4 PCR检测38-39
  • 4.1 杨树PCR检测38-39
  • 4.1.1 杨树DNA提取38-39
  • 4.1.2 阳性对照质粒DNA提取39
  • 4.1.3 PCR扩增及检测39
  • 4.2 猕猴桃PCR检测39
  • 5 Southern杂交(ECL法)39-42
  • 5.1 探针标记39
  • 5.2 凝胶制备及电泳39-40
  • 5.3 凝胶处理40
  • 5.4 毛细管印迹40
  • 5.5 印迹处理40
  • 5.6 杂交和洗膜40-41
  • 5.7 信号产生及检测41-42
  • 6 Western杂交42-44
  • 6.1 植物可溶性蛋白的提取42
  • 6.2 阳性对照的制备42-43
  • 6.3 蛋白质聚丙烯酰胺凝胶电泳43
  • 6.4 蛋白质的转膜43
  • 6.5 免疫反应43-44
  • 7 耐盐性测定44-45
  • 7.1 杨树耐盐性测定44
  • 7.2 猕猴桃耐盐性测定44-45
  • 第三章 结果与分析45-65
  • §1 转化受体系统的建立45-57
  • 1 杨树转化受体系统的建立45-50
  • 1.1 再生系统的建立45-48
  • 1.1.1 叶片不定芽诱导最佳配方筛选45-47
  • 1.1.2 不定芽生根诱导最佳配方筛选47-48
  • 1.2 卡那霉素敏感性实验48-50
  • 1.2.1 叶片外植体不定芽诱导卡那霉敏感性试验48-49
  • 1.2.2 不定芽生根诱导卡那霉素敏感性试验49-50
  • 2 猕猴桃转化受体系统的建立50-57
  • 2.1 再生系统的建立50-56
  • 2.1.1 无菌叶片外植体的获取50-51
  • 2.1.2 叶片预培养51
  • 2.1.3 叶片不定芽诱导最佳配方筛选51-54
  • 2.1.4 不定芽生根诱导最佳配方筛选54-56
  • 2.2 卡那霉素敏感性实验56-57
  • 2.2.1 叶片卡那霉素敏感性实验56-57
  • 2.2.2 不定芽生根诱导卡那霉素敏感性试验57
  • §2 转化及筛选57-59
  • 1 杨树转化及筛选57-59
  • 2 猕猴桃的转化及筛选59
  • §3 分子生物学检测59-62
  • 1 PCR检测59-61
  • 1.1 杨树PCR检测59-60
  • 1.2 猕猴桃PCR检测60-61
  • 2 杨树Southern杂交61
  • 3 杨树Western杂交61-62
  • §4 耐盐性测定62-65
  • 1 杨树耐盐性测定62-64
  • 2 猕猴桃耐盐性测定64-65
  • 第四章 讨论65-68
  • 1 高效再生系统的建立65
  • 2 提高基因转化率65-66
  • 2.1 优选农杆菌菌株65
  • 2.2 使用乙酰丁香酮等vir基因活化剂65-66
  • 2.3 掌握好共培养时间66
  • 2.4 灵活使用卡那霉素66
  • 2.5 基因枪转化和叶盘法转化的结合使用66
  • 3 外源基因的整合及遗传效应分析66-67
  • 4 糖醇含量测定及与抗盐性关系研究67
  • 5 加强植物耐盐机理及高效表达载体构建研究67-68
  • 结论68-69
  • 致谢69-70
  • 参考文献70-76
  • 作者简介76-77
  • 缩略词77

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