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《甘肃农业大学》 2004年
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应用甜菜碱醛脱氢酶基因工程提高马铃薯抗逆性的研究

张宁  
【摘要】:干旱和盐碱是影响植物生长发育最主要的非生物胁迫因子,许多重要的农作物如水稻、马铃薯、烟草等对干旱和盐碱比较敏感,缺乏有效的耐旱机理,经常因干旱和盐碱造成严重的产量损失。培育抗旱耐盐农作物新品种是利用干旱盐碱地最为经济、有效的措施。随着现代分子生物技术的飞速发展,通过基因工程技术改良农作物抗旱耐盐性工作取得了很大的进展。高等植物适应环境胁迫的重要生理机制之一是渗透调节,甜菜碱是其中最重要的渗透调节物质之一。而且它的合成途径简单,对细胞无毒害,具有稳定酶和细胞膜结构,清除过氧化物等非渗透保护功能,被认为是最有希望的渗透调节物质之一。 许多农作物如水稻、马铃薯、烟草、番茄等自身并不能积累甜菜碱,如果利用基因工程技术,把与甜菜碱合成相关的基因转入农作物,使其积累甜菜碱,将有可能达到增强农作物抗旱耐盐性的目的。迄今为止,已有不少植物被成功地导入了与甜菜碱合成相关的基因,并在不同程度上提高了这些植物的抗旱耐盐性。 本研究的主要目的是从菠菜中分离合成甜菜碱的关键酶甜菜碱醛脱氢酶(Betaine aldehyde dehydrogenase,BADH)基因,从拟南芥中分离干旱、盐碱、低温及ABA诱导型启动子rd29A,构建CaMV 35S 和rd29A启动子驱动的BADH基因表达载体,然后转入优良马铃薯栽培品种中,提高其抗旱耐盐性。同时,研究不同启动子驱动的外源基因在逆境胁迫下高效表达的分子机理,为丰富植物转基因理论和培育抗逆作物新品种提供理论依据。取得的主要研究结果如下: 1.从菠菜叶片中分离了BADH基因的cDNA,序列分析结果表明该基因含有1494 bp长度的开放阅读框,编码497个氨基酸。核酸序列同源性分析表明,该cDNA与已发表的菠菜BADH基因具有99.87%的同源性,与其它植物的BADH 基因也有80%以上的同源性。Northern杂交结果表明,BADH mRNA转录水平随盐浓度的增加而提高,经500 mmol/L NaCl持续处理4 d 时,BADH基因的转录约为对照水平的4倍。随着干旱胁迫天数的增加,菠菜叶片中BADH mRNA含量明显增加。这些实验结果表明菠菜BADH 基因的表达受盐胁迫和干旱胁迫的诱导。 2.从拟南芥(Arabidopsis thaliana)基因组中用PCR技术分离了rd29A基因上游824 bp的调控序列,序列分析表明该片段与已报道的rd29A启动子有99.39%的同源性,包括缺水诱导表达元件DRE、ABA作用元件ABRE等顺式作用元件。将此片段与GUS基因连接构建了植物表达载体pBIrd,用农杆菌介导法获得了转基因马铃薯植株。对转基因植株进行的GUS基因Northern杂交和GUS活性组织染色的分析结果是一致的,未受诱导处理的转基因植株GUS基因有微弱表达,而逆境4℃低温、100 μmol/L ABA、缺水和250 mmol/L NaCl胁迫处理24 h均可诱导GUS大量表达,且rd29A启动子驱动的GUS基因表达无组织特异性。 WP=8 3.将BADH基因分别与组成型启动子CaMV 35S和逆境诱导表达型启动子rd29A融合,构建了植物表达载体pBIBB和pBIrB,通过冻融法导入根癌农杆菌LBA4404中,经酶切鉴定和PCR检测证明表达载体已导入农杆菌中。 4.用组成型启动子CaMV 35S驱动的BADH基因表达载体pBIBB转化烟草,获得了卡那霉素抗性植株。经PCR、Southern、Northern杂交,证明BADH基因已整合到烟草基因组中并在转基因植株中转录和表达。对获得的转基因植株叶片中甜菜碱醛脱氢酶活性进行了测定,结果显示未转基因的对照植株没有BADH酶活性,转基因植株的各个株系间甜菜碱醛脱氢酶比活力差异较大,范围在0.1-1.0 U/mg之间,转BADH基因的烟草在盐胁迫和PEG条件下,生长状态良好,生长势强于未转基因的植株。说明本实验克隆的BADH基因能在异源植物中进行正常翻译表达。 5.以两个马铃薯栽培品种甘农薯2号和Favorita的试管薯为供体材料,分别用组成型启动子CaMV 35S和逆境诱导表达型启动子rd29A驱动的BADH基因表达载体pBIBB和pBIrB进行遗传转化,获得了转基因马铃薯。通过PCR扩增和Southern杂交表明BADH基因已整合到受体马铃薯的基因组中。Northern杂交分析表明,未转基因的马铃薯对照中检测不到BADH基因的转录产物;转rd29A启动子驱动的BADH基因马铃薯中,BADH基因仅有微弱表达,在受干旱和NaCl胁迫的诱导时BADH基因才会较强地转录;但在转CaMV 35S启动子驱动的BADH基因马铃薯中,BADH基因的表达较强且不受胁迫条件诱导。 6.BADH酶活性分析表明,在转CaMV 35S启动子驱动的BADH基因马铃薯中,各转化株系在胁迫前后BADH酶活性近似,但在不同的转基因个体间BADH酶活性差异较大,变化范围在2-11 U之间,而对照检测不到。BADH酶活性与叶片的相对电导率有一定的负相关关系(y=-3.7264x+57.898,r2=0.9202),说明BADH酶活性越强,对植株细胞膜通透性的保护能力越强,证明外源BADH基因的导入,确实提高了转基因马铃薯植株在干旱和盐胁迫条件下的抗性。在转rd29A启动子驱动的BADH基因马铃薯中,植株在未经胁迫时,BADH酶活性很低,但当转化植株分别经NaCl和PEG胁迫后,BADH酶活性显著提高,其活性值在10-12 U之间,而且株系间差异很小,表明转rd29A启动子驱动的BADH基因的不同马铃薯株系抗旱耐盐能力相近。 7.对转基因马铃薯植株的形态学观察表明,转基因植
【关键词】:BADH基因 rd29A启动子 抗旱 耐盐 转化 马铃薯 烟草
【学位授予单位】:甘肃农业大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2004
【分类号】:S532
【目录】:
  • 目录2-6
  • 缩略语表6-7
  • 摘要7-9
  • Abstract9-12
  • 第一章 文献综述12-40
  • 1.1 植物抗干旱机制12-13
  • 1.2 植物抗干旱和耐盐碱基因工程策略13-24
  • 1.2.1 渗透调节13-19
  • 1.2.1.1 脯氨酸积累与P5CS、P5C基因14-16
  • 1.2.1.2 甜菜碱合成与BADH、CMO基因16
  • 1.2.1.3 甘露醇、山梨醇合成与mtlD、gutD基因16-17
  • 1.2.1.4 海藻糖积累与TPS基因17-19
  • 1.2.1.5 果聚糖积累改善了转基因烟草的抗旱性19
  • 1.2.1.6 多胺类化合物的超量表达19
  • 1.2.2 抗氧化防御系统19-20
  • 1.2.3 通道蛋白20-22
  • 1.2.3.1 盐的区隔化20-21
  • 1.2.3.2 调控钾离子运输系统21
  • 1.2.3.3 调控水通道蛋白21-22
  • 1.2.4 干旱保护蛋白22
  • 1.2.5 胁迫引起的基因应答及脱落酸的作用22-24
  • 1.2.5.1 ABA依赖型基因23
  • 1.2.5.2 ABA非依赖型基因23-24
  • 1.2.5.3 不能被ABA诱导的基因24
  • 1.3 甜菜碱及其相关合成酶基因24-38
  • 1.3.1 甜菜碱的结构和生物合成25-26
  • 1.3.2 甜菜碱的含量及其诱导表达26-27
  • 1.3.2.1 甜菜碱的含量26
  • 1.3.2.2 甜菜碱的诱导表达26-27
  • 1.3.3 甜菜碱的生理功能27-28
  • 1.3.4 大肠杆菌的Bet操纵元28-30
  • 1.3.4.1 大肠杆菌的Bet操纵元结构28-29
  • 1.3.4.2 BetB序列的比较29
  • 1.3.4.3 甜菜碱前体的运送机制29-30
  • 1.3.4.4 细菌Bet操纵元在植物中表达的可能性30
  • 1.3.5 胆碱单加氧酶(CMO)研究进展30-32
  • 1.3.5.1 胆碱单加氧酶的分子生物学研究30-32
  • 1.3.5.2 胆碱单加氧酶的作用机理32
  • 1.3.5.3 胆碱单加氧酶的基因工程32
  • 1.3.6 甜菜碱醛脱氢酶(BADH)研究进展32-37
  • 1.3.6.1 甜菜碱醛脱氢酶的生物化学研究32-33
  • 1.3.6.2 甜菜碱醛脱氢酶在细胞中的定位33
  • 1.3.6.3 甜菜碱醛脱氢酶基因克隆及其序列比较33-34
  • 1.3.6.4 甜菜碱醛脱氢酶基因的表达34-36
  • 1.3.6.5 甜菜碱醛脱氢酶基因工程36-37
  • 1.3.7 展望37-38
  • 1.4 本研究的内容及目的意义38-40
  • 第二章 菠菜甜菜碱醛脱氢酶基因的分离及其诱导表达40-50
  • 2.1 前言40
  • 2.2 材料与方法40-43
  • 2.2.1 植物材料及处理40
  • 2.2.2 酶和试剂40
  • 2.2.3 BADH基因cDNA的克隆40-42
  • 2.2.3.1 逆转录合成cDNA第一链40-41
  • 2.2.3.2 PCR扩增41
  • 2.2.3.3 扩增产物加尾及连接41-42
  • 2.2.3.4 大肠杆菌感受态细胞制备及转化42
  • 2.2.3.5 转化子蓝白斑筛选42
  • 2.2.3.6 重组转化子鉴定42
  • 2.2.4 序列分析及同源性比较42
  • 2.2.5 Northern杂交42-43
  • 2.3 结果与分析43-48
  • 2.3.1 菠菜叶片BADH基因的分离43-44
  • 2.3.1.1 PyrobestTM DNA聚合酶特异性扩增BADH基因43
  • 2.3.1.2 DNA聚合酶的选择43-44
  • 2.3.2 BADH克隆到pUCm-T载体的重组子酶切鉴定44
  • 2.3.3 BADH基因序列测定及同源性分析44-47
  • 2.3.3.1 BADH基因序列44-46
  • 2.3.3.2 几个物种BADH基因cDNA序列同源性比较46-47
  • 2.3.4 菠菜BADH基因诱导表达分析47-48
  • 2.3.4.1 菠菜BADH基因盐胁迫诱导表达47
  • 2.3.4.2 菠菜BADH基因干旱胁迫诱导表达47-48
  • 2.4 讨论48-50
  • 第三章 拟南芥rd29A启动子的克隆及其在转基因马铃薯中的功能分析50-61
  • 3.1 前言50
  • 3.2 材料与方法50-54
  • 3.2.1 酶和试剂50
  • 3.2.2 菌株和载体50-51
  • 3.2.3 拟南芥DNA提取及PCR扩增51
  • 3.2.4 表达载体构建及重组子鉴定51
  • 3.2.5 马铃薯的遗传转化51-52
  • 3.2.6 转基因马铃薯植株PCR检测52
  • 3.2.7 GUS基因表达的Northern杂交分析52
  • 3.2.8 GUS活性的组织染色52-54
  • 3.3 结果与分析54-59
  • 3.3.1 rd29A启动子5′-端序列的扩增与克隆54-55
  • 3.3.2 PCR扩增片段的序列分析55-56
  • 3.3.3 rd29A启动子驱动GUS基因的植物表达载体pBIrd构建56
  • 3.3.4 表达载体导入农杆菌PCR检测结果56-57
  • 3.3.5 转基因马铃薯植株的获得及Kan抗性培养基上的生根筛选57
  • 3.3.6 转基因马铃薯PCR检测57-58
  • 3.3.7 不同诱导条件下GUS基因表达的Northern杂交分析58
  • 3.3.8 不同诱导条件下GUS活性的组织染色分析58-59
  • 3.4 讨论59-61
  • 第四章 BADH基因植物表达载体的构建61-73
  • 4.1 前言61
  • 4.2 材料和方法61-68
  • 4.2.1 菌种和载体61
  • 4.2.2 酶和试剂61
  • 4.2.3 质粒DNA制备61-62
  • 4.2.4 大肠杆菌感受态细胞制备及转化62
  • 4.2.5 农杆菌感受态细胞的制备及冻融法转化62-63
  • 4.2.6 中间载体pSKtB的构建63-64
  • 4.2.7 CaMV35S启动子驱动的BADH基因表达载体构建64
  • 4.2.8 rd29A启动子驱动的BADH基因表达载体构建64-68
  • 4.3 结果与分析68-71
  • 4.3.1 中间载体pSKtB的构建68
  • 4.3.2 CaMV 35S启动子驱动的BADH基因表达载体pBIBB的构建68-69
  • 4.3.3 表达载体pBIBB酶切鉴定69
  • 4.3.4 质粒pBIBB导入农杆菌PCR扩增鉴定69-70
  • 4.3.5 rd29A启动子驱动的BADH基因表达载体pBIrB构建70
  • 4.3.6 表达载体pBIrB酶切鉴定70-71
  • 4.3.7 质粒pBIrB导入农杆菌PCR扩增鉴定71
  • 4.4 讨论71-73
  • 第五章 BADH基因在烟草中的表达73-82
  • 5.1 前言73-74
  • 5.2 材料和方法74-76
  • 5.2.1 植物材料与繁殖74
  • 5.2.2 菌株和质粒74
  • 5.2.3 酶和试剂74
  • 5.2.4 烟草遗传转化和植株再生74
  • 5.2.5 转基因烟草检菌测验74-75
  • 5.2.6 转基因烟草的PCR检测75
  • 5.2.7 转基因烟草Southern杂交检测75
  • 5.2.8 转基因烟草Northern杂交检测75
  • 5.2.9 转基因烟草甜菜碱醛脱氢酶活性分析75-76
  • 5.2.10 转基因烟草抗旱、耐盐性分析76
  • 5.3 结果与分析76-80
  • 5.3.1 转基因烟草植株再生76-77
  • 5.3.2 转基因烟草在Kan培养基上生根77
  • 5.3.3 转基因植株PCR鉴定77
  • 5.3.4 转基因烟草Southern杂交鉴定77-78
  • 5.3.5 转基因烟草Northern杂交鉴定78-79
  • 5.3.6 转基因烟草BADH酶活性分析79
  • 5.3.7 转基因烟草抗旱性、耐盐性观察与分析79-80
  • 5.4 讨论80-82
  • 第六章 组成型和逆境诱导型启动子驱动的BADH基因转化马铃薯的研究82-92
  • 6.1 前言82
  • 6.2 材料与方法82-85
  • 6.2.1 植物材料与繁殖82-83
  • 6.2.2 菌株和质粒83
  • 6.2.3 酶和试剂83
  • 6.2.4 马铃薯遗传转化和植株再生83
  • 6.2.5 转基因马铃薯检菌测验83-84
  • 6.2.6 转基因马铃薯PCR检测84
  • 6.2.7 转基因马铃薯Southern杂交检测84
  • 6.2.8 不同启动子驱动的BADH基因表达差异分析84
  • 6.2.9 转基因马铃薯甜菜碱醛脱氢酶活性分析84
  • 6.2.10 转基因马铃薯植株抗旱耐盐性生理指标测定84-85
  • 6.2.11 转基因马铃薯抗旱耐盐性性状观察85
  • 6.3 结果与分析85-90
  • 6.3.1 转基因马铃薯植株再生85
  • 6.3.2 转基因马铃薯在Kan筛选培养基上生根85-86
  • 6.3.3 转基因植株PCR鉴定86
  • 6.3.4 转基因马铃薯Southern杂交鉴定86-87
  • 6.3.5 组成型启动子和逆境诱导型启动子驱动的BADH基因表达分析87-88
  • 6.3.6 转基因马铃薯BADH酶活性分析88-89
  • 6.3.7 转基因马铃薯抗旱耐盐性生理指标分析89
  • 6.3.8 转基因马铃薯抗旱性耐盐性性状观察89-90
  • 6.4 讨论90-92
  • 第七章 讨论92-98
  • 7.1 干旱和盐碱逆境与马铃薯生产92
  • 7.2 基因工程与马铃薯抗旱耐盐碱育种92-94
  • 7.3 BADH基因的克隆及其功能鉴定94-95
  • 7.4 逆境诱导启动子rd29A的分离及利用95
  • 7.5 转BADH基因马铃薯的获得及抗逆性分析95-96
  • 7.6 甜菜碱基因工程的局限性及展望96-98
  • 参考文献98-114
  • 附录Ι BADH基因在GENBANK登记信息114-116
  • 附录Ⅱ 博士在读期间发表论文116-117
  • 致谢117

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