收藏本站
《甘肃农业大学》 2008年
收藏 | 手机打开
二维码
手机客户端打开本文

血管内皮生长因子促进绵羊卵母细胞体外成熟机理研究

曹忻  
【摘要】: 本研究通过10个系列试验,在绵羊卵母细胞体外培养液中添加血管内皮生长因子(Vascular Endothelial Growth Factor,VEGF),研究VEGF对绵羊卵母细胞体外受精及胚胎发育的影响,并通过绵羊卵母细胞成熟过程中细胞的形态学结构、细胞骨架、胞内丝裂原活化蛋白激酶(P44/p42 Mitogen-activated Protein Kinases,P44/p42 MAP kinases)、蛋白激酶C (Protein Kinase C,PKC)和酪氨酸蛋白激酶(Protein Tyrosine Kinases,PTK)活性的变化,以及VEGF及其两受体KDR/Flk-1和Flt-1在绵羊卵母细胞成熟过程中表达的研究,揭示VEGF对绵羊卵母细胞体外成熟的作用和机理。 一、血管内皮生长因子对绵羊卵母细胞体外成熟、体外受精及胚胎发育的影响 试验1:不同浓度VEGF对绵羊胚胎体外发育的影响 在绵羊卵母细胞体外成熟培养液(TCM199+胎牛血清)、HSOF受精液及SOF胚胎发育液中添加不同剂量的VEGF(对照组0 ng/ml、试验组Ⅰ5 ng/ml和试验组Ⅱ10 ng/ml),研究其对卵母细胞成熟和早期胚胎发育的影响。结果显示:对照组、试验组Ⅰ、试验组Ⅱ卵母细胞成熟率分别是80.68%、86.09%和85.22%。试验组Ⅰ和试验组Ⅱ与对照组相比,极显著的提高了卵母细胞成熟率(P0.01),但试验组Ⅰ和试验组Ⅱ之间差异不显著。试验组Ⅰ和试验组Ⅱ的卵裂率分别是75.18%和73.48%,高于对照组的69.38%,但差异不显著。试验组Ⅰ的桑葚胚率和囊胚率是45.45%和30.06%,极显著的高于对照组37.61%和23.65%(P0.01);同时试验组Ⅱ的桑葚胚率和囊胚率是40.25%和27.80%,低于试验组Ⅰ,高于对照组,但差异不显著。结果表明:体外培养液中添加5ng/mlVEGF为适宜添加量,VEGF明显提高了受精卵发育到桑葚胚和囊胚的能力。 试验2:BSA成熟培养液中添加VEGF对绵羊卵母细胞体外成熟、体外受精及胚胎发育的影响 本试验采用在成分相对明确的BSA成熟培养液系统中,添加不同浓度VEGF,检测对卵母细胞成熟和胚胎发育的作用。成熟培养液(TCM199+BSA)中分别添加0 ng/mlVEGF对照组、5 ng/ml、10 ng/ml的VEGF试验组卵母细胞成熟培养后,经体外受精和体外培养。结果显示:试验组Ⅰ和试验组Ⅱ的成熟率分别是83.98%和80.23%,对照组是75.76%。试验组Ⅰ和试验组Ⅱ与对照组相比,极显著的提高了绵羊卵母细胞的成熟率(P0.01),并且试验组Ⅰ和试验组Ⅱ之间差异显著(P0.05)。试验组Ⅰ的卵裂率是79.39%,高于试验组Ⅱ和对照组的72.24%和75.85%,差异不显著。试验组Ⅰ桑葚胚率是45.03%,明显高于试验组Ⅱ和对照组38.85%和38.94%的桑葚胚率,差异不显著。试验组Ⅰ囊胚率是23.54%,极显著高于对照组的18.09%(P0.01);试验组Ⅱ囊胚率是21.05%,高于对照组Ⅰ的18.09%,差异不显著。结果表明:BSA成熟培养液中添加5ng/ml VEGF为适宜添加量,对绵羊卵母细胞体外胚胎的发育有积极的促进作用。 试验3:VEGF添加对绵羊卵母细胞体外受精多精入卵的影响 在绵羊卵母细胞体外成熟培养液(TCM199+BSA)中添加不同剂量的VEGF(对照组0 ng/ml和试验组5 ng/ml)成熟培养,经体外受精培养后,地衣红染色结果显示:试验组和对照组的受精率分别是83.86%和75.75%,多精入卵率分别是7.68%和12.64%,未受精率是8.47%和11.60%。试验组受精率极显著高于对照组(P0.01);试验组多精入卵率极显著低于对照组(P0.01);试验组的未受精率显著低于对照组(P0.05)。结果表明:VEGF明显降低了多精入卵率,有效的抑制了绵羊卵母细胞受精过程中的多精入卵现象的发生。 二、VEGF促进绵羊卵母细胞体外成熟的机理研究 1、VEGF对绵羊卵母细胞体外成熟过程中细胞核成熟和细胞质成熟的影响 试验4:在绵羊卵母细胞体外成熟培养液(TCM199+BSA)中添加不同剂量的VEGF(对照组0 ng/ml和试验组5 ng/ml)进行成熟培养,再采用地衣红染色技术,研究VEGF对绵羊卵母细胞体外成熟过程中染色体形态的影响。结果显示:试验组拥有正常染色体成熟卵母细胞的成熟率是87.42%,高于对照组的83.89%。结果表明:VEGF对卵母细胞体外成熟和维持染色体正常形态具有一定的促进作用。 试验5:在BSA成熟培养系统中成熟培养后,采用免疫细胞化学和激光共聚焦显微技术,研究VEGF对绵羊卵母细胞体外成熟过程中α-tubulin蛋白和微管组织中心(Microtubule Organizing Centers,MTOCs)时空迁移和重新组装的影响。结果显示:试验组与对照组相比,极大的促进了α-tubulin从微管组织中心向染色体的空间迁移和重新组装。同时试验得出,试验组和对照组的微管蛋白和MII期染色体的正常分布率分别是77.50%和62.60%。试验组与对照组相比,极显著的提高了微管蛋白和MII期染色体的正常分布率(P0.01)。结果表明:VEGF促进了MTOCs从胞内和皮质区的消失,并加速了α-tubulin重新分配和向染色体的聚集,有效的提高了卵母细胞核成熟质量。 试验6:在BSA成熟培养系统中成熟培养后,采用免疫细胞化学和激光共聚焦显微技术,研究VEGF对绵羊卵母细胞体外成熟过程中皮质颗粒(Cortical Granule,CGs)时空迁移和重新组装的影响。结果显示:试验组与对照组相比,极大的促进了CGs从胞质向皮质区的时空迁移。试验组和对照组的皮质颗粒正常迁移分布率分别为79.24%和60.97%。试验组与对照组相比,极显著的提高了皮质颗粒正常迁移分布率(P0.01)。结果表明:VEGF通过促进绵羊卵母细胞成熟过程中CGs的时空迁移,对绵羊卵母细胞胞质成熟具有积极促进作用。 2、VEGF对绵羊卵母细胞体外成熟过程中细胞超微结构变化的影响 试验7:在绵羊卵母细胞体外成熟培养液(TCM199+BSA)中添加不同剂量的VEGF(对照组0 ng/ml和试验组5 ng/ml)进行成熟培养,再结合透射电镜技术,研究VEGF对绵羊卵母细胞体外成熟过程中细胞超微结构变化的影响。结果显示:①VEGF有效促进了微绒毛的发育和变化,增加了游离端斜行插入透明带微绒毛的数量,促进了细胞内外物质交流和养分的吸收;②VEGF促进了皮质颗粒在卵母细胞成熟培养过程中向皮质区迁移的时间和空间变化;③发现特征性绵羊卵母细胞线粒体――带帽状线粒体,并且VEGF对线粒体的迁移有一定的促进作用;④VEGF的添加对卵母细胞成熟过程中脂滴数量的增加没有显著的作用,但VEGF减少了小脂滴聚集为大脂滴。 3、VEGF对绵羊卵母细胞体外成熟过程中胞内磷酸化P44/p42 MAP kinases、PKC和PTK活性变化的影响 试验8:在绵羊卵母细胞体外成熟培养液(TCM199+BSA)中添加不同剂量的VEGF(对照组0 ng/ml和试验组5 ng/ml)进行成熟培养,再结合酶联免疫技术,检测胞内磷酸化P44/p42 MAP kinases、PKC和PTK活性的变化。结果显示:绵羊卵母细胞成熟过程中三种磷酸化激酶活性都呈波动变化,试验组的P44/p42 MAP kinases、PKC和PTK相对含量始终高于对照组相对含量。成熟培养16小时和20小时时,试验组P44/p42 MAP kinases(Erk1和Erk2)含量显著高于对照组(P0.05);成熟培养16、21小时和24小时时,试验组PTK含量显著升高于对照组(P0.05)。结果表明:VEGF添加到绵羊卵母细胞成熟培养液中,改变了PTK磷酸化水平,进一步引起信号传递分子MAP kinase和PKC的磷酸化,从而有效促进了绵羊卵母细胞体外成熟。 4、VEGF及其受体KDR/Flk-1和Flt-1在绵羊卵母细胞体外成熟过程中的表达 试验9:在绵羊卵母细胞体外成熟培养液(TCM199+BSA)中添加不同剂量的VEGF(对照组0 ng/ml和试验组5 ng/ml)进行成熟培养,再结合RT-PCR技术,研究VEGF及其受体KDR/Flk-1和Flt-1mRNA在绵羊卵母细胞体外成熟过程中颗粒细胞和卵母细胞细胞中的表达。结果显示:①卵母细胞培养前VEGF mRNA在卵母细胞中就有表达。在整个成熟过程中对照组中其表达一直持续,但比培养前的表达量有所下降;在试验组中,VEGF mRNA在卵母细胞中的表达呈下降趋势,到成熟培养24小时时表达量微弱;卵母细胞培养前VEGF mRNA在颗粒细胞中有表达。到培养8小时时,对照组表达量升高,但后期表达量明显下降。试验组在培养8小时时表达量就已经下降,24小时时持续低水平表达。②卵母细胞培养前Flt-1 mRNA在卵母细胞中有微弱表达,随着培养时间的延续表达量明显下降。培养8小时和24小时对照组比试验组表达强,到24小时试验组几乎检测不到Flt-1 mRNA的表达;卵母细胞培养前Flt-1 mRNA在颗粒细胞中有表达,到8小时时对照组表达加强,随培养时间延续其表达量下降,直至24小时检测不到。试验组从培养8小时开始就几乎检测不到Flt-1 mRNA的表达。③卵母细胞培养前KDR/Flk-1 mRNA在卵母细胞中有微弱表达,随着培养时间的延续,无论是试验组还是对照组其表达量都明显上升;卵母细胞培养前KDR/Flk-1 mRNA在颗粒细胞中有强表达,随培养时间的延续其表达量在对照组培养8小时时加强,但在试验组中减弱,培养到24小时时,两组表达量都很微弱。结果表明:外源VEGF的加入,改变了卵母细胞和颗粒细胞中VEGF及其受体KDR/Flk-1和Flt-1 mRNA的表达。 试验10:结合免疫细胞化学和激光共聚焦显微技术,研究KDR/Flk-1和Flt-1蛋白在卵母细胞成熟观过程中颗粒细胞和卵母细胞中的表达。结果显示:绵羊卵母细胞成熟培养过程中,无论是在卵母细胞膜表面还是在颗粒细胞膜表面都检测到KDR/Flk-1和Flt-1蛋白的表达。
【学位授予单位】:甘肃农业大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2008
【分类号】:S826

手机知网App
【引证文献】
中国硕士学位论文全文数据库 前1条
1 郭延华;EGF对不同直径卵泡绵羊卵母细胞体外成熟、受精及胚胎发育的影响[D];石河子大学;2010年
【参考文献】
中国期刊全文数据库 前10条
1 李云龙;秦鹏春;;猪卵巢内卵母细胞发育的超微结构研究[J];东北农学院学报;1983年01期
2 孙青原;秦鹏春;;牛卵母细胞发育过程的细胞核变化[J];东北农学院学报;1990年03期
3 孙青原,秦鹏春,刘国艺,杨庆章;牛卵丘-卵母细胞复合体体外成熟前后超微结构[J];东北农业大学学报;1996年02期
4 刘素娟;卵泡发育和卵母细胞成熟[J];国外兽医学.畜禽疾病;1995年03期
5 金海霞,孙莹璞;人类卵母细胞超微结构的研究进展[J];国外医学(计划生育分册);2004年03期
6 钱云,丁家桐,刘红林;卵母细胞成熟的形态学特征及其调控[J];国外畜牧科技;1999年06期
7 李镅,杨利国;卵母细胞微绒毛形态与机能研究进展[J];黑龙江畜牧科技;1998年04期
8 孙青原,秦鹏春;哺乳动物的卵母细胞成熟机理[J];黑龙江动物繁殖;1995年01期
9 高志花,周虚,高庆华;哺乳动物卵泡发育过程中的超微结构变化[J];黑龙江动物繁殖;2002年04期
10 谭景和;孙青原;杨增明;秦鹏春;;山羊卵母细胞发育的超微结构研究[J];解剖学报;1992年01期
【共引文献】
中国期刊全文数据库 前10条
1 魏红芳;张长兴;昝林森;徐照学;;谷胱甘肽(GSH)对牛卵母细胞体外受精胚胎发育的影响[J];安徽农业科学;2009年33期
2 吴海庆;李明云;叶帅东;陈炯;史雨红;;镉胁迫下大弹涂鱼肝脏蛋白质组双向电泳分析[J];安全与环境学报;2010年01期
3 雍艳红;余四九;巨向红;崔燕;;牦牛卵泡细胞及其卵母细胞不同发育时期的结构变化[J];动物学报;2005年06期
4 高志花,周虚,高庆华;哺乳动物卵泡发育过程中的超微结构研究进展[J];黄牛杂志;2003年02期
5 夏丰;苏雷;;卵母细胞成熟及其成熟调控因子[J];中国牛业科学;2008年01期
6 黄芬香;杨春艳;庞春英;郑海英;尚江华;张秀芳;梁贤威;;水牛卵丘细胞和颗粒细胞单层对卵母细胞体外受精及其胚胎发育的影响[J];中国牛业科学;2011年06期
7 章保平,易建明;体外化生产牛胚胎的影响因素及其研究进展[J];草食家畜;2001年S2期
8 雷安民,杨春荣,高志敏,窦忠英;牛卵母细胞体外成熟的研究[J];草食家畜;2001年S2期
9 刘云波;黄贺;胡鹏飞;张金友;张贵学;;东北细毛羊胎羊卵巢卵泡超微结构研究[J];河北农业大学学报;2006年05期
10 赵彦檩;彭龙;赵锦;刘孟军;;枣MAPK基因片段克隆与分析[J];河北农业大学学报;2010年06期
中国重要会议论文全文数据库 前5条
1 孙庆春;郑成淑;梁芳;张翠华;;MAPKs及其在植物细胞生命活动中的信号转导[A];2008园艺学进展(第八辑)——中国园艺学会第八届青年学术讨论会暨现代园艺论坛论文集[C];2008年
2 刘丑生;王志刚;周佰成;赵有璋;赵俊金;孟飞;;绵羊卵母细胞成熟与体外授精的研究[A];中国畜牧兽医学会2006学术年会论文集(上册)[C];2006年
3 王晓丽;杨娟;陈玉;成俊萍;潘红平;韦精卫;陆凤花;石德顺;;水牛卵丘颗粒细胞凋亡与卵母细胞体外发育潜能的研究[A];中国畜牧兽医学会动物解剖学及组织胚胎学分会第十五次学术研讨会论文集[C];2008年
4 齐艳萍;李和平;崔凯;;鹿卵母细胞体外培养与体外受精的超微结构研究[A];2010中国鹿业进展[C];2010年
5 周石琼;周悦;王晓丽;;卵母细胞超微结构及核仁内rDNA分布的研究概况[A];中国畜牧兽医学会动物解剖学及组织胚胎学分会第十七次学术研讨会论文集(下)[C];2012年
中国博士学位论文全文数据库 前10条
1 王飞娟;汞胁迫下水稻根蛋白质组学及抗性相关基因功能分析[D];浙江大学;2010年
2 孙杰;黑三棱破血消癥作用的药理机制及活性成分研究[D];西北大学;2011年
3 刘玉鲲;玉米MAPK基因家族的鉴定及ZmMPK4基因对的功能分析[D];山东农业大学;2011年
4 亓美玉;牛卵母细胞体外受精及热应激条件下IGF-I对其影响的研究[D];东北农业大学;2011年
5 张洪映;小麦逆境应答基因TaSnRK2.8的克隆与分析[D];西北农林科技大学;2011年
6 殷晓军;Ⅰ中亚滨藜盐诱导启动子的分离及功能鉴定 Ⅱ胁迫诱导盐地碱蓬促分裂原活化蛋白激酶激酶(SsMAPKK)的表达[D];山东师范大学;2002年
7 叶华虎;山羊精子介导基因转移的实验研究[D];第三军医大学;2003年
8 田永胜;三种海水鱼类胚胎玻璃化冷冻保存研究[D];华中农业大学;2004年
9 钱云;卵母细胞的体外成熟及其分子生物学机制的初步研究[D];南京医科大学;2005年
10 吕丽华;山羊胚胎体外培养体系的优化以及胚胎干细胞分离培养技术的研究[D];山西农业大学;2004年
中国硕士学位论文全文数据库 前10条
1 郭莹;小鼠卵母细胞成熟过程中MicroRNAs的表达和功能研究[D];南京医科大学;2010年
2 高达;卵泡大小对山羊卵母细胞皮质颗粒分布与迁移的影响[D];山东农业大学;2010年
3 邸炜鹏;氨海水与5-羟色胺对栉孔扇贝解剖卵体外促熟作用的研究[D];中国海洋大学;2010年
4 侯敏;Gdf9、Dnmt1、Zar1、Mater基因在绵羊卵母细胞、卵丘细胞和胚胎中的表达分析[D];新疆农业大学;2010年
5 刘志涛;绵羊卵丘细胞中组织蛋白酶基因表达及其对卵母细胞发育能力影响[D];河北农业大学;2011年
6 胡慧丽;不同浓度Avastin对角膜新生血管抑制作用的实验研究[D];暨南大学;2011年
7 朱丽;玉米赤霉烯酮对体外培养猪卵巢颗粒细胞的毒性作用及凋亡机理研究[D];湖南农业大学;2011年
8 郭延华;EGF对不同直径卵泡绵羊卵母细胞体外成熟、受精及胚胎发育的影响[D];石河子大学;2010年
9 王黎黎;猕猴川西亚种下丘脑—免疫—生殖内分泌轴组织学及ERα、ERβ、NOS1的表达研究[D];四川农业大学;2011年
10 谷文龙;HIF-1α、P-gp、COX-2在非小细胞肺癌中的表达及临床意义[D];宁夏医科大学;2010年
【同被引文献】
中国期刊全文数据库 前10条
1 魏红芳;昝林森;徐照学;辛小玲;;激素和表皮生长因子对牛卵母细胞体外受精的影响[J];安徽农业科学;2007年33期
2 杨晓菁,姚红军,王玉凤;哺乳动物卵母细胞凋亡的研究进展[J];动物学杂志;2004年06期
3 卢晟盛,杨秀荣,卢克焕;猪卵泡液和胎牛血清对猪小腔卵泡卵母细胞体外成熟的影响[J];河北农业大学学报;2004年06期
4 王树迎;侯衍猛;;促性腺激素及其受体的研究进展[J];山东畜牧兽医;2008年05期
5 何宝祥,余四九;生殖激素与卵巢卵泡颗粒细胞凋亡[J];广西农业生物科学;2003年01期
6 赵荫农;上皮生长因子受体及其突变、功能和在临床上可能的作用[J];广西医学;2000年01期
7 马红;;表皮生长因子受体在绵羊卵巢中的表达[J];黑龙江农业科学;2008年02期
8 马红;郭镇华;李忠秋;吴赛辉;刘娣;;表皮生长因子在绵羊卵母细胞体外成熟过程中的作用[J];黑龙江畜牧兽医;2007年07期
9 柳海珍,刘以训;EGF在新生大鼠原始卵泡生长启动中的作用[J];中国科学C辑:生命科学;2000年03期
10 杨淑华;徐世文;李金龙;王金涛;;生殖激素对禽类卵泡细胞凋亡的影响[J];吉林畜牧兽医;2005年10期
中国博士学位论文全文数据库 前1条
1 周平;EGF、TGFα、EGFR在绵羊早期胚胎中的表达和作用研究[D];内蒙古大学;2007年
中国硕士学位论文全文数据库 前2条
1 付蒙;卵泡直径及卵泡内环境与卵母细胞成熟度相关性研究[D];河北医科大学;2006年
2 邱志芳;牛早期卵母细胞和成熟前后的超微结构变化[D];安徽农业大学;2006年
【二级参考文献】
中国期刊全文数据库 前10条
1 李云龙;秦鹏春;;猪卵巢内卵母细胞发育的超微结构研究[J];东北农学院学报;1983年01期
2 王周吉;;猪卵泡形成中后期卵母细胞发育和闭锁变化的超微结构研究[J];东北农学院学报;1987年03期
3 孙青原,秦鹏春,刘国艺,杨庆章;牛卵丘-卵母细胞复合体体外成熟前后超微结构[J];东北农业大学学报;1996年02期
4 谭景和;孙青原;杨增明;秦鹏春;;山羊卵母细胞发育的超微结构研究[J];解剖学报;1992年01期
5 秦鹏春,吴光明,谭景和,徐立滨,杨庆章;猪卵母细胞体外成熟与体外受精的超微结构研究[J];解剖学报;1994年03期
6 周欢敏,曹贵方;山羊离体腔前卵泡的超微结构[J];内蒙古畜牧科学;1998年04期
7 孙青原,秦鹏春;牛卵母细胞发育的超微结构研究[J];山东农业大学学报;1989年04期
8 芮荣,曹贵方,张涌;山羊腔前卵泡卵母细胞体外发育的超微结构研究[J];四川农业大学学报;1998年04期
9 钱菊汾,王建辰,刘灵,康竹梅,姚亚琴,蒋选利;小鼠输卵管卵母细胞的形态学研究[J];西北农林科技大学学报(自然科学版);1991年03期
10 钱菊汾,刘灵;山羊卵母细胞成熟的超微结构研究[J];西北农业大学学报;1995年03期
【相似文献】
中国期刊全文数据库 前10条
1 旭日干,张锁链,薛晓先,廛洪武,李喜和,刘东军,斯琴;绵羊卵母细胞的体外培养、受精与发育的观察[J];动物学杂志;1989年03期
2 周波,洪海燕,旭日干,夏国良;磷酸二酯酶亚型抑制剂与细胞周期蛋白抑制剂对绵羊卵母细胞体外成熟的影响[J];中国农业大学学报;2005年02期
3 卫恒习,田树军,朱士恩,桑润滋;提高绵羊卵母细胞发育能力的研究[J];黑龙江畜牧兽医;2005年05期
4 叶小芳;黄俊成;陈静波;吕雪峰;;DTT延缓绵羊卵母细胞老化的研究[J];中国畜牧杂志;2011年11期
5 施巧婷,王旭光,王立虎,杨梅,郭志勤;绵羊卵母细胞的孤雌激活[J];中国畜牧杂志;2004年06期
6 周佰成;王志刚;刘丑生;赵有璋;赵俊金;孟飞;;细胞松弛素B对绵羊GV期卵母细胞玻璃化冷冻效果的影响[J];中国畜牧兽医;2007年03期
7 王静;林嘉鹏;石庆华;陈博;汪立芹;赵云程;黄俊成;;玻璃化冷冻对绵羊卵母细胞中母源基因mRNA表达量的影响[J];畜牧兽医学报;2011年09期
8 孙风俊;人及绵羊卵泡液对绵羊卵母细胞体外成熟受精及发育的影响[J];中国畜牧杂志;1994年01期
9 刘喆,李荣凤,旭日干;体外培养绵羊卵母细胞核质成熟的研究[J];内蒙古大学学报(自然科学版);2000年01期
10 马红;郭镇华;李忠秋;吴赛辉;刘娣;;表皮生长因子在绵羊卵母细胞体外成熟过程中的作用[J];黑龙江畜牧兽医;2007年07期
中国重要会议论文全文数据库 前5条
1 李俊杰;吴国权;岳明星;贾宝瑜;夏威;莫显红;梁莹;袁佃帅;杜明;王亮;周艳华;朱士恩;;组蛋白磷酸化在绵羊卵母细胞体外成熟过程中的变化研究[A];中国畜牧兽医学会动物繁殖学分会第十五届学术研讨会论文集(下册)[C];2010年
2 汪立芹;林嘉鹏;王静;陈童;赵云程;黄俊成;;供精个体等因素对绵羊卵母细胞体外受精的影响[A];中国畜牧兽医学会动物繁殖学分会第十五届学术研讨会论文集(上册)[C];2010年
3 刘志涛;田树军;陈晓勇;张艳普;胡媛媛;温兵强;;培养液PH值及平衡时间对绵羊卵母细胞体外发育影响的研究[A];中国畜牧兽医学会动物繁殖学分会第十五届学术研讨会论文集(上册)[C];2010年
4 刘冀珑;王敏康;廉莉;李劲松;高绍荣;韩之明;孙青原;宋祥芬;张冬梅;李义海;徐直;陈大元;;非休眠期成年雄牛真皮细胞用于核移植[A];中国动物科学研究——中国动物学会第十四届会员代表大会及中国动物学会65周年年会论文集[C];1999年
5 陈晓勇;孙洪新;敦伟涛;田树军;李丽云;;羔羊卵母细胞体外发育能力研究进展[A];中国畜牧兽医学会养羊学分会全国养羊生产与学术研讨会议论文集[C];2010年
中国博士学位论文全文数据库 前2条
1 曹忻;血管内皮生长因子促进绵羊卵母细胞体外成熟机理研究[D];甘肃农业大学;2008年
2 白瑞霞;Ghrelin对绵羊卵母细胞体外成熟影响的研究[D];内蒙古农业大学;2011年
中国硕士学位论文全文数据库 前10条
1 林雍峰;绵羊卵母细胞差异蛋白质组学研究[D];甘肃农业大学;2011年
2 莫显红;影响绵羊卵母细胞玻璃化冷冻效果的因素研究[D];河北农业大学;2011年
3 胡大勇;绵羊卵母细胞形态学及体外成熟的研究[D];延边大学;2010年
4 胡媛媛;两步体外成熟法对绵羊卵母细胞发育能力的影响[D];河北农业大学;2012年
5 赖彦;绵羊核移植技术的研究[D];内蒙古农业大学;2010年
6 杜晨光;绵羊卵母细胞孤雌激活与体细胞核移植的研究[D];内蒙古大学;2005年
7 皮文辉;绵羊卵母细胞体外成熟与体外受精的初步研究[D];广西大学;2003年
8 张晓建;绵羊卵母细胞孤雌激活与体细胞核移植[D];西北农林科技大学;2005年
9 王旭光;绵羊卵母细胞体外成熟和孤雌激活的研究[D];新疆农业大学;2003年
10 汤连升;体外成熟过程中绵羊卵母细胞组蛋白乙酰化和山羊卵母细胞线粒体的动态变化[D];山东农业大学;2007年
 快捷付款方式  订购知网充值卡  订购热线  帮助中心
  • 400-819-9993
  • 010-62791813
  • 010-62985026