拮抗细菌诱导番茄植株抗灰霉病及其机理研究
【摘要】:
本文研究了地衣芽孢杆菌(Bacillus licheniformis)W10、多粘类芽孢杆菌(Paenibacillus polymyxa)W3、Y2及其去菌液诱导番茄植株对灰霉病的抗性,并探讨了诱导抗性产生的机理。结果表明,拮抗菌及其去菌液诱导处理番茄叶片,都能诱导其产生对灰霉病的系统抗性。3株菌中以多粘类芽孢杆菌W3及其去菌液的诱导效果最大,分别达64.5%和53.1%。W3及其去菌液诱导处理后3d即己产生诱抗效果,5d时诱抗效果达高峰值,后逐渐下降,12d时诱导抗性仍存在。不同浓度拮抗菌诱导效果有显著差异。在一定范围内,诱导效果随菌浓度增加而增强。当菌浓度达10~8cfu/ml时,诱抗效果最大。拮抗细菌及其去菌液诱导处理后,番茄不同叶位叶片均能产生诱导抗性,但不同叶位叶片之间诱抗效果没有显著差异。
拮抗细菌及其去菌液诱导处理后,番茄植株体内的抗性酶类活性产生变化,主要表现在过氧化物酶(POD)、多酚氧化酶(PPO)、超氧化歧化酶(SOD)、苯丙氨酸解氨酶(PAL)活性增加。其中,POD、PPO的活性在处理后1d逐渐增加,第3d时达最大值,分别比对照高51.4%和78.7%;3d后逐渐下降,第6d时仍比对照高20%和47.4%。SOD活性在诱导处理后1d增加,第2d时酶活性达高峰,比对照高52.42酶活单位;后酶活性逐渐下降,第6d时酶活性与对照相近。PAL活性在诱导处理后,第1d时达最大值,为对照的3.9倍;后逐渐下降,但第6d时酶活性仍为对照的2.5倍。虽然灰霉病菌接种番茄也能引起植株抗性酶活性增加,但是拮抗菌及其去菌液诱导处理植株的酶活性增加速度快,增加幅度大,且下降较缓慢。此外,拮抗菌和病原菌同时处理时,植株体内抗性酶活性的变化趋势与拮抗菌单独诱导处理相一致。
拮抗细菌及其去菌液诱导处理后,番茄叶片中活性氧(AOS)产生速率第1d时上升,比对照高89%,比病原菌接种的高155.6%;2d后急剧下降,第6d时比病原菌接种的低111.8%,与对照相近。拮抗细菌和病原菌同时接种的植株,活性氧产生速率的变化趋势与拮抗菌单独诱导处理时相似。
扬州大学硕士学位论文
拮抗细菌诱导处理可显著提高番茄植株叶片中水杨酸(SA)含量。处理叶sA
含量24h后大量增加,达2.25ng/g;48h后下降,但仍比对照同一叶位叶片高80.5%。
处理叶上一叶位叶片中的SA含量24h后也增加;48h时达到最大值,浓度为
1.64ng/g,比对照株相同叶位叶片高59.2%;96h后SA含量下降,但仍比对照株相
同叶位叶片高10%。
综上所述,拮抗细菌及其去菌液诱导番茄植株对灰霉病的抗性增加趋势与植
株体内抗性酶类活性变化间存在着密切关系。其中PAL和SOD酶活性高峰先于诱
导效果最大值出现的时间(第3d),PPO和POD酶活性高峰值与最佳诱导效果同时
出现,这说明在拮抗细菌及其去菌液诱导的系统抗性中,不同抗性酶类可能起着
不同的作用。从活性氧产生速率变化和诱导接种症状表现可以看出,这一诱导抗
性不属于过敏性坏死反应。拮抗细菌及其去菌液诱导处理后,植株活性氧产生速
率短暂上升,可能引起信号物质的传导,激活植株体内的防卫反应。SA含量变化
规律表明,在拮抗细菌诱导的植株系统获得抗性中,SA可能参与了抗病性信号传
导和调控。
【关键词】:拮抗细菌 灰霉病菌 诱导抗性 过氧化物酶 多酚氧化酶 苯丙氨酸解氨酶 超氧化歧化酶 活性氧 水杨酸
【学位授予单位】:扬州大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2003
【分类号】:S436.41
【目录】:
【学位授予单位】:扬州大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2003
【分类号】:S436.41
【目录】:
- 中文摘要5-7
- 英文摘要7-10
- 前言10-21
- 一、 灰霉病生物防治10-13
- (一) 生物防治的概念及重要性10
- (二) 生防微生物的种类10-13
- 1 、 细菌及其代谢物10-12
- 2 、 真菌及其代谢物12-13
- 3 、 链霉菌及其代谢物13
- 二、 诱导抗病性13-19
- (一) 诱导抗病性的概念13-14
- (二) 诱导抗病性的研究进展14-15
- (三) 诱导抗病性的诱导因子15-17
- 1 、 生物因子15-16
- 2 、 非生物因子16-17
- (四) 诱导抗病性机理17-19
- 1 、 水杨酸(SA)在诱导抗性中的作用17-18
- 2 、 寄主防御酶在诱导抗性中的作用18
- 3 、 活性氧及膜脂过氧化在诱导抗性中的作用18-19
- 4 、 病程相关蛋白(PR)在诱导抗性中的作用19
- 5 、 木质素和富羟脯氨酸糖蛋白(HRGP)在诱导抗性中的作用19
- 三、 论文研究目的和意义19-21
- 材料与方法21-28
- 一、 供试菌株21
- (一) 拮抗细菌21
- (二) 病原真菌21
- 二、 培养基21
- (一) 马铃薯蔗糖琼脂培养基(PSA)21
- (二) 肉汁胨培养液(BP)21
- 三、 供试植物21
- 四、 拮抗细菌及其去菌液诱导番茄植株的抗病性测定21-23
- (一) 不同诱导物的诱导抗性测定21-22
- 1 、 诱导物制备21-22
- 2 、 病原菌制备22
- 3 、 诱导处理方法22
- (二) 诱导抗性持续时间测定22-23
- (三) 不同浓度拮抗细菌的诱导抗性测定23
- (四) 拮抗细菌及其去菌液对不同叶位叶片的诱导抗性测定23
- 五、 拮抗细菌及其去菌液诱导番茄植株抗病性产生的机理研究23-28
- (一) 抗性酶类的活性测定23-25
- 1 、 过氧物酶(POD)的测定23-24
- 2 、 多酚氧化酶(PPO)的测定24
- 3 、 苯丙氨酸解氨酶(PAL)的测定24-25
- 4 、 超氧化歧化酶(SOD)的测定25
- (二) 活性氧(AOS)产生速率的测定25-27
- (三) 水杨酸(SA)含量的测定27-28
- 结果与分析28-36
- 一、 拮抗细菌诱导番茄植株对灰霉病的抗性28-30
- (一) 不同诱导物处理的诱抗效果28-29
- (二) 不同浓度拮抗细菌的诱抗效果29
- (三) 拮抗细菌及其去菌液诱抗效果的持续时间29-30
- (四) 拮抗细菌及其去菌液对不同叶位叶片的诱抗效果30
- 二、 拮抗细菌及其去菌液诱导番茄植株对灰霉病的抗性机理30-36
- (一) 抗性酶类活性变化30-34
- 1 、 过氧化物酶(POD)活性变化30-31
- 2 、 多酚氧化酶(PPO)活性变化31-32
- 3 、 苯丙氨酸解氨酶(PAL)活性变化32-33
- 4 、 超氧化歧化酶(SOD)活性变化33-34
- (二) 活性氧(AOS)产生速率变化34
- (三) 水杨酸(SA)含量变化34-36
- 讨论36-39
- (一) 拮抗细菌及其去菌液诱导番茄植株对灰霉病的抗性36
- (二) 抗性酶类活性与诱导抗性的关系36-37
- (三) 活性氧产生速率变化与诱导抗性的关系37-38
- (四) 水杨酸在诱导抗病性中的作用38
- (五) 诱导抗病性是拮抗细菌防治灰霉病的一个重要机制38-39
- 参考文献39-48
- 致谢48-49
- 附录49-51
| 【引证文献】 | ||
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| 【参考文献】 | ||
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| 【共引文献】 | ||
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| 【同被引文献】 | ||
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| 【二级引证文献】 | ||
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| 【二级参考文献】 | ||
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| 【相似文献】 | ||
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