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《第一军医大学》 2007年
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慢病毒介导的双自杀基因靶向治疗大肠癌的实验研究

陈海金  
【摘要】: 研究背景 我国大肠癌发病率从20年前的十万分之十上升到了今天的十万分之三十,在大城市恶性肿瘤的排名中大肠癌从第六位上升至第二位。大肠癌发病率正以4%的年增长率迅速上升,但治愈率却没有得到根本改变。传统的治疗方法有其自身的局限性,因此寻找新的疗法迫在眉睫。肿瘤自杀基因疗法是近年来肿瘤基因治疗中一个重要的研究策略,尤其是自杀基因的选择与重组,载体系统的优化,基因的靶向性转移表达,以及自杀基因的联合治疗等均有助于提高自杀基因特异性表达,增强杀伤肿瘤细胞的作用。 肿瘤自杀基因治疗是将自杀基因导入肿瘤靶细胞并使之表达,基因编码的酶将无毒的药物前体转化为具有细胞毒性的代谢物,从而诱导靶细胞产生自杀作用,杀伤肿瘤细胞,同时还通过旁观者作用杀伤邻近未转染的肿瘤细胞。目前研究最多的且被美国FDA批准应用于临床试验的自杀基因系统主要有单纯疱疹病毒Ⅰ型胸苷激酶/丙氧鸟苷系统(HSV-TK/GCV)和胞嘧啶脱氨酶/5-氟胞嘧啶系统(CD/5-FC)。此两系统的抗肿瘤效能已在多种肿瘤的体内外实验中得到证实。日本、荷兰、墨西哥等地的学者已开始进行HSV-TK基因治疗前列腺癌的临床试验。目前的临床试验认为,针对人前列腺癌的原位基因治疗安全而有效,具有良好的抗癌生物学活性。鉴于不同类型肿瘤细胞对自杀基因系统的敏感性不同、单一自杀基因系统治疗时部分肿瘤细胞易产生耐药以及CD/5-FC和HSV-TK/GCV系统的作用机理具有很强的互补性,联合应用此两系统不仅可以提高肿瘤细胞杀伤作用,改善治疗效果,而且可以扩大肿瘤治疗谱,减少耐药现象发生。 众所周知,肿瘤的自杀基因治疗虽已成为基因治疗中研究热点之一,但目的基因的靶向性及基因转移的低效率是这一疗法广泛开展的主要障碍。实验研究中大多使用逆转录病毒载体和腺病毒载体进行基因转染治疗,与其它几种常用的病毒载体相比较,逆转录病毒载体病毒滴度低,只能感染分裂期细胞,容纳外源基因的DNA片段长度不超过8 kb。而腺病毒载体感染细胞时,病毒DNA游离在细胞核内,并不整合到染色体上,在体内不能实现稳定的长期表达,且反复应用容易引起免疫反应,因而在应用上这两种病毒载体都受到一定的限制。慢病毒载体最大的特点是可以感染分裂期及非分裂期细胞,容纳外源性目的基因的片段大,可以在体内长期地表达,免疫反应小,安全性较好,可在更多范围的宿主细胞内生成高滴度的病毒,已成为当前基因治疗中载体研究的热点。同时,如能使自杀基因选择性地作用于目的肿瘤细胞而不在正常细胞中表达,将能使该治疗策略更加完善。既往研究利用肿瘤特异性基因调控元件调控自杀基因表达,如以erbB-2、α-人乳白蛋白(hALA)启动子驱动自杀基因进行乳腺癌基因治疗,甲胎蛋白(AFP)基因启动子用于肝癌自杀基因疗法,癌胚抗原(CEA)基因启动子用于肠道肿瘤自杀基因疗法等。上述治疗方案中,每一特异启动子仅能进行针对某一类型肿瘤细胞靶向基因治疗,而绝大多数恶性实体瘤的生物学特性为生长迅速,致使其滋养血管不能及时供应所有肿瘤细胞,该特点使前体药物难以接近所有肿瘤细胞。选择一合适启动子既靶向肿瘤血管内皮细胞,又靶向肿瘤细胞,如此既可杀伤肿瘤细胞,又可靶向破坏肿瘤滋养血管使得其灌流区大量肿瘤细胞缺血性坏死,这样即高效放大了自杀基因的疗效。大量研究证明,KDR在正常人体组织中呈低水平表达,而在绝大多数肿瘤中呈现高表达,且KDR不仅表达于血管内皮细胞,还表达于肿瘤细胞,其表达水平与血管内皮细胞更新速度及肿瘤恶性程度呈正相关。它不仅促进血管内皮细胞分裂、增殖,且诱导肿瘤血管增生,并促使肿瘤细胞生长转移。在肿瘤组织内KDR表达明显高于正常内皮细胞,血管的发生对于肿瘤的生长和转移起着关键的作用。因此,将KDR作为靶点,可为治疗和诊断肿瘤提供了新的理论依据。国内外众多作者报道,KDR在在胃癌、结肠、直肠、卵巢、乳腺癌等多数肿瘤组织中的表达明显增高,并与其生物学行为相关,并伴随肿瘤分级的上升而表达增强。 基于上述研究,为弥补单自杀基因的不足、克服以往启动子仅适用于某一肿瘤细胞的缺点、并利用慢病毒载体的优势,本课题设计思路如下:应用慢病毒载体构建KDR启动子驱动的CD/TK融合基因的重组慢病毒,感染血管内皮细胞ECV304及大肠癌细胞LOVO,观察该治疗系统的体外杀伤作用,为重组慢病毒介导KDR启动子驱动的CD/TK融合基因靶向治疗大肠癌的进一步研究提供依据。 注:本课题来源于:广东省自然科学基金重点项目(013072)。 目的 研究慢病毒介导的KDR启动子驱动的CD/TK双自杀基因系统对大肠肿瘤细胞选择性杀伤作用,并为进一步研究奠定基础。首先利用FUGW慢病毒载体构建携带KDR启动子调控的双自杀基因重组慢病毒,将所构建的重组慢病毒感染LOVO细胞和ECV304细胞,测定感染效率,检测转基因的表达,对转基因细胞施以前药(5-FC和/或GCV),观察转基因细胞对前药的敏感性。最后,以LOVO细胞株建立裸鼠皮下移植瘤动物模型,观察该治疗体系的体内抑瘤效应。 方法 一、重组慢病毒的构建 将FUGW慢病毒载体酶切去掉Ubiqutin启动子,应用PCR扩增出KDR启动子、CD基因、TK基因序列,亚克隆入中间载体pcDNA3,构建pcDNA3-KDRP-CD/TK,然后酶切KDRP-CD/TK片断,插入到FGW中,构建KDR启动子调控下的CD/TK融合基因慢病毒重组质粒FGW-KDRP-CD/TK。重组质粒在2937细胞中包装成病毒,并进一步扩增、纯化,通过荧光显微镜下293T细胞中绿色荧光蛋白(GFP)的表达观察重组病毒的包装与复制,并以PCR方法鉴定重组慢病毒。 二、慢病毒介导的FGW-KDRP-CD/TK融合基因系统对LOVO细胞及ECV304细胞的体外杀伤作用 用重组慢病毒FGW-KDRP-CD/TK感染LOVO细胞、ECV304细胞及LS174T细胞(对照),检测目的基因的表达。在前药5-氟胞嘧啶(5-FC)和/或更昔洛韦(GCV)作用下,测定肿瘤细胞的存活率,观察旁观者效应,并分别通过流式细胞仪、透射电镜观察细胞凋亡与坏死。 三、慢病毒介导FGW-KDRP-CD/TK融合基因系统对大肠癌LOVO细胞裸鼠模型的体内抑瘤效应 采用BALB/C雌性裸鼠,4~6周龄,对数生长期的LOVO细胞接种于裸鼠左侧腋窝皮下,建立大肠癌动物模型,当肿瘤直径达0.5cm时,将荷瘤裸鼠随机分为Ⅰ组:注射重组慢病毒FGW-KDRP-CD/TK与前药5-FC与GCV;Ⅱ组:仅注射前药5-FC与GCV;Ⅲ组:仅注射重组慢病毒FGW-KDRP-CD/TK;Ⅳ组:空白对照,不施加任何处理。每5d测量肿瘤生长状况,估算肿瘤体积,绘制肿瘤生长曲线,25天治疗结束后处死裸鼠,称瘤重,计算肿瘤生长抑制率并观察该治疗体系的体内抑瘤效应,行组织内CD/TK基因表达的检测、肿瘤组织常规病理检查,并观察重要脏器心、肝、脾、肺、肾有无病理变化。 结果 一、重组慢病毒质粒的鉴定 1.重组慢病毒质粒FGW-KDRP-CD/TK的鉴定 在重组慢病毒质粒FGW-KDRP-CD/TK的构建过程中,主要采用酶切和测序的方法进行鉴定。将PCR所得的CD片段、TK片段及KDR分别连于T载体(pMD18-T)送上海申友生物技术有限公司测序,结果正确。FGW-KDRP-CD/TK以HindⅢ和BamHI酶切后电泳出现大小约2.4kb(CDglyTK)片段,结果正确。 2.重组慢病毒质粒在293T细胞的包装及滴度测定 将10μg的转移载体,7.5μg的CMV△R8.2包装质粒,5μg的VSV-G包膜质粒,加入130μL的2mol/L CaCL_2中,磷酸钙法三质粒瞬时共转染293T细胞,24h后通过荧光显微镜即可见GFP荧光表达,72h后收集上清,0.45μm滤器过滤,25000rpm离心90min,沉淀溶于Hanks溶液,-80℃贮存备用。将梯度稀释的病毒液,加入293T细胞中,72h后置于荧光显微镜下观察GFP的表达情况,计数发荧光细胞数目,根据病毒用量和稀释度计算滴度。 二、慢病毒介导的FGW-KDRP-CD/TK融合基因系统对LOVO细胞及ECV304细胞的体外杀伤作用 1.重组慢病毒体外感染及鉴定 细胞LOVO、ECV304、LS174T分别加入200μl的重组慢病毒悬液(100MOI)培养72小时后,在荧光显微境下观察GFP基因的表达,可见80-90%有绿色荧光存在,三种细胞具有相似的感染率。通过RT-PCR检测发现,除LS174T细胞外,LOVO、ECV304细胞检测有目的基因的表达。 2.重组慢病毒对各细胞的体外抑制效应 将200μl的重组慢病毒悬液(100MOI)感染各细胞株,加入不同浓度的前药培养72h后MTT法检测细胞生长抑制率。结果:感染慢病毒FGW-KDRP-CD/TK的LOVO及ECV304细胞对前药具有较高的敏感性,转基因细胞的存活率随前药浓度的增加而递减。当前药浓度为GCV=100mg/L,5-FC=160mg/L时,LOVO存活率为(5.40±1.85)%,ECV304存活率为(5.26±1.82)%。而感染慢病毒的LS174T细胞对前药不敏感,LS174T存活率仍有(95.02±2.82)%,与其他各组细胞相比差异有显著性意义(F=6567.806,P<0.001)。感染FGW-KDRP-CD/TK的LOVO、ECV304及LS174T细胞,单用浓度100mg/L的GCV时,生存率分别为(31.96±1.62)%、(29.10±2.86)%、(96.57±1.89)%,单用浓度为160mg/L的5-FC,生存率分别为(29.60±1.91)%、(25.23±2.05)%、(96.20±1.91)%,二者联合时,各细胞生存率分别为(5.40±1.85)%、(5.26±1.82)%、(95.02±2.82)%,提示联合用药比单一用药对LOVO细胞和ECV304细胞均有较强杀伤效应(F=803.123,P<0.001;F=375.99,P<0.001;F=1.555,P=0.226)。 3、旁观者效应 将感染慢病毒的细胞与未感染细胞以不同混合培养,观察到该体系明显的旁观者效应,其随转基因细胞所占比例的增加而明显增强。当转基因细胞的比率为40%时,LOVO和ECV304细胞分别有(32.40±1.29)%、(29.95±1.96)%的存活,而LS174T细胞存活率仍在(97.74±1.74)%,三者比较差异均有显著性意义(F=5180.938,P<0.001)。 4、重组慢病毒对LOVO细胞及ECV304细胞凋亡的影响 转基因LOVO细胞给以前药(GCV:1mg/L;5-FC:40mg/L)处理24h后,流式细胞仪检测发现:治疗组LOVO细胞加药24h后凋亡率为27.09±1.45%,明显高于对照组凋亡率2.96±0.34%(P=0.007)。 转基因ECV304细胞给以前药(GCV:1mg/L;5-FC:40mg/L)处理24h后,流式细胞仪检测发现:治疗组ECV304细胞加药24h后凋亡率为10.85±1.50%,明显高于对照组凋亡率2.25±0.55%(P=0.035)。 5、前药处理前后LOVO细胞的电镜观察 透射电镜下见部分细胞出现细胞体收缩、染色质边聚,有的胞核形态不规则,核发生碎裂,胞浆内可见多个电子密度增强的核碎片,有的可见凋亡小体、(或整个凋亡细胞)被吞噬和降解的现象。部分细胞出现细胞器溶解等坏死征象。 三、慢病毒介导的FGW-KDRP-CD/TK自杀基因系统对大肠癌LOVO细胞裸鼠模型的体内抑瘤效应 1.荷瘤裸鼠肿瘤生长情况 接种肿瘤细胞后10d左右,出现皮下肿瘤结节。裸鼠成瘤达0.5cm后开始治疗,治疗结束时肿瘤标本的称重结果及抑瘤率:Ⅰ组:(21.34±5.72)mg,95.59%:Ⅱ组:(466.61±67.89)mg,3。58%;Ⅲ组:(451.91±48.29)mg,6.61%;Ⅳ组:空白对照组(483.91±51.60)mg。可见,组间瘤重有显著性差异(F=165.805,P<0.001),Ⅰ组明显缩小,第Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ组肿瘤生长情况无统计学意义。 2.肿瘤病理变化及肿瘤组织目的基因表达的检测 前药加慢病毒治疗组肿瘤组织切片中可见片状坏死区,而且这些区域可见大量炎性细胞浸润。RT-PCR检测发现重组慢病毒转基因荷瘤动物肿瘤组织内有CD/TK融合基因表达。 3.治疗后裸鼠重要脏器的组织学观察 为了解该治疗系统对裸鼠有无毒副作用,取治疗组小裸鼠心、肝、脾、肺、肾行常规病理检查未见明显异常。 4.裸鼠可视化大肠癌动物模型 成功的建立了大肠癌裸鼠皮下移植瘤可视化动物模型,LT-9MACIMSYSPULS整体荧光成像系统下,可满意观察到GFP绿色荧光,其优点:①早期发现肿瘤形成;②动态观察肿瘤生长及转移情况等。 结论 1.本实验首先以慢病毒为载体,成功地构建含KDR启动子驱动的CD/TK自杀基因系统的重组慢病毒,重组慢病毒的滴度达6×10~(10)pfu/ml; 2.重组慢病毒对LOVO细胞、ECV304细胞及LS174T细胞均具有较高的转染率,且对三者转染率相似; 3.重组慢病毒能将KDR启动子驱动的CD/TK融合基因转入LOVO细胞及ECV304细胞中并进行有效表达,使该系统对LOVO细胞及ECV304细胞具有满意的靶向杀伤作用,这种杀伤作用具有浓度依赖性,并且联合应用两种前药较单用一种前药更为有效; 4.该治疗体系的作用机制为对靶细胞的直接杀伤作用及旁观者效应,表现为处理后靶细胞的凋亡及坏死; 5.应用LOVO细胞可成功建立大肠癌移植瘤裸鼠普通动物模型及可视化动物模型,并能方便地检测肿瘤的生长、转移; 6.重组慢病毒转基因荷瘤动物肿瘤组织内可表达CD/TK融合基因产物,使该治疗体系具有满意的体内抑瘤效应,表现为肿瘤的生长抑制及肿瘤组织坏死; 7.KDR启动子驱动的CD/TK融合基因系统治疗后,荷瘤裸鼠心、脾、肝、肺、肾等器官无明显组织学变化,提示该系统对荷瘤裸鼠无系统毒副作用。
【学位授予单位】:第一军医大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2007
【分类号】:R735.34

【参考文献】
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1 傅建新,王玮,白霞,王玲,朱子玲,陈子兴,阮长耿;肿瘤细胞系血管内皮生长因子及其受体共表达的研究[J];癌症;2002年11期
2 李振宇;慢病毒载体构建及结构优化[J];国外医学(分子生物学分册);2002年05期
3 时彦胜,耿志贤,战大伟,孙岩松,洪宝庆,陈应麟,付生发,杨毅,毛慧生;SCID小鼠和BALBc裸鼠对两株人体肿瘤细胞系移植敏感性的研究[J];中国实验动物学杂志;2000年01期
4 胡胜;臧爱华;;癌症治疗中药物相互作用[J];中国肿瘤;2006年01期
5 于波,李世拥,安萍,吕文平,蔡惠云;双启动子引导自杀基因靶向杀伤5-FU耐药肿瘤细胞的研究[J];中华外科杂志;2002年11期
6 王允,周清华,覃扬,袁淑兰,孙芝琳,王燕萍,陈小禾,孙泽芳,宋毅,杨妍;外源性FHIT基因表达对肺腺癌细胞株A549恶性表型的逆转作用[J];中华医学遗传学杂志;2002年03期
【共引文献】
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1 周军智;邹永康;李建国;刘楠乔;蔡亚非;王根林;;含PGK启动子慢病毒表达质粒的构建与鉴定[J];安徽师范大学学报(自然科学版);2009年02期
2 陈建发,黄宗海,黄元媛,宋慧娟,车小燕;应用AdEasier-1系统高效制备含VEGFP驱动TK自杀基因的重组腺病毒[J];癌症;2004年09期
3 常树建;陈卫昌;杨吉成;谢宇峰;盛伟华;;表达抗-VEGF发夹状核酶腺病毒载体的构建及其对结肠癌生长的抑制作用[J];癌症;2009年04期
4 王丽群;孟祥晨;;HSV_1-TK基因原核表达载体的构建及表达检测[J];东北农业大学学报;2009年02期
5 赵忠玮;于永铎;;结直肠癌相关肿瘤标志物临床应用[J];结直肠肛门外科;2007年06期
6 张华霖,吴爱国;MMP-9和VEGF在乳腺癌的表达及临床意义[J];中国医师杂志;2005年S1期
7 张雨生,王健民,翟勇平;酵母菌胞嘧啶脱氨酶/5-氟胞嘧啶基因治疗系统对K562B细胞杀伤效应的初步研究[J];第二军医大学学报;2002年02期
8 李立文,王臻,苏明权,马越云,于文彬,杨旻,李哲;构建由缺氧反应元件修饰的hTERT核心启动子引导FCY1基因表达的复制缺陷型腺病毒[J];第四军医大学学报;2002年12期
9 林荣凯,黄宗海,苏国强,柯志勇,陈建雄,周俊杰;血管内皮生长因子受体启动子驱动重组腺病毒双自杀基因系统选择性杀伤大肠癌细胞[J];第一军医大学学报;2005年05期
10 魏红梅;阮一民;张立成;彭勇;郭坤元;;热疗与阿霉素联合作用动物的实验研究[J];南方医科大学学报;2007年09期
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1 吴汉林;周清华;朱文;王艳萍;车国卫;陈晓禾;孙芝琳;;人NIT1基因原核表达载体的构建和鉴定[A];第二届湖北省肿瘤靶向治疗学术会议论文选[C];2007年
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1 高鹏;特异性介导DNA转导的多结构域嵌合蛋白的构建、表达及鉴定[D];吉林大学;2011年
2 杨闯;抗VEGFR2-奥沙利铂免疫脂质体对结直肠癌靶向治疗的研究[D];重庆医科大学;2011年
3 甘平平;芍药甘草汤质控和药动学及对紫杉醇药动学影响的实验研究[D];中南大学;2011年
4 关婧;sAPRIL结合肽的筛选及其抑制大肠癌细胞增殖的实验研究[D];南方医科大学;2011年
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6 费嘉;VEGF mRNA反义核酸对白血病细胞药物敏感性的影响[D];暨南大学;2003年
7 方瑾;Ⅰ抗人大肠癌单链抗体基因的构建与表达 Ⅱ抗人大肠癌单链抗体——胞嘧啶脱氨酶融合基因的构建及表达[D];中国医科大学;2001年
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9 赵志成;肝癌血管生成机理探讨及EGCG抑制血管生成的实验研究[D];浙江大学;2004年
10 张立群;FHIT基因和人肺癌细胞系相关性的研究[D];北京市结核病胸部肿瘤研究所;2004年
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2 房丽君;狂犬病病毒糖蛋白基因重组慢病毒载体的构建及免疫试验[D];吉林大学;2011年
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6 丁伯君;ndrg2两亚型重组腺病毒抑制人脑胶质瘤的体内药效学研究及左乙拉西坦添加治疗难治性癫痫的疗效和安全性分析[D];第四军医大学;2011年
7 陈荣誉;基于P21途径抗肿瘤药物筛选的双荧光素酶报告系统的建立[D];南方医科大学;2011年
8 秦啸;慢病毒载体介导的LIGHT基因诱导胃癌细胞凋亡的实验研究[D];青岛大学;2011年
9 张旭艳;小干扰RNA抑制ATO耐药的白血病K562/AS2细胞TopoⅡ基因表达的实验研究[D];广州医学院;2011年
10 王震;SCL、KDR和Sema3基因在白血病和再障骨髓基质细胞中的表达[D];暨南大学;2003年
【二级参考文献】
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1 陈军,周清华,覃扬,孙芝琳,孙泽芳,王允,李潞,秦建军;人非小细胞肺癌中FHIT基因转录本异常的研究[J];中国肺癌杂志;2000年04期
2 周清华,陈军,覃扬,孙芝琳,刘伦旭,孙泽芳,车国卫,李潞,秦建军,宫友陵;人非小细胞肺癌中FHIT等位基因缺失和突变的研究[J];中国肺癌杂志;2001年01期
3 傅建新,王玲,王玮,陈子兴;Wilms瘤基因WT1表达与急性白血病微小残留病的检测[J];中国实验血液学杂志;2000年03期
4 李世拥,于波,安萍,梁振家,苑树俊;胸苷酸合成酶基因表达与结肠直肠癌复发的关系及其临床意义[J];中华外科杂志;2000年10期
5 王允,周清华,张尚福,羊惠君,成娘,李璐,伍伫,刘伦旭;肺癌FHIT基因表达下降的临床病理生理意义及与肿瘤细胞增殖、凋亡的关系研究[J];中华医学遗传学杂志;2001年03期
6 薛克勋,高进,董化一,景绍亮,陈晓春,邹岗燕;人肺腺癌移植于裸小鼠不同部位侵袭能力的观察[J];中国医学科学院学报;1986年02期
【相似文献】
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1 王羊;黎成金;王烈;;结肠癌肝转移基因治疗研究进展[J];医学综述;2007年19期
2 伍志坚,黄海金,梁国栋;用于基因治疗的慢病毒载体[J];中华实验和临床病毒学杂志;1998年02期
3 李伟;高玲;;慢病毒载体在眼科基因治疗的应用[J];国际眼科杂志;2008年09期
4 沈历宗,丁强,吴文溪,许德华,刘新垣,郑仲承,武正炎;自杀基因联合化疗药物治疗结肠癌的体外研究[J];中华普通外科杂志;2002年07期
5 王坚;慢病毒载体介导的基因转导治疗帕金森病[J];中国临床神经科学;2004年01期
6 周蔚;李留霞;;卵巢癌的靶向基因治疗研究进展[J];国外医学(妇产科学分册);2006年05期
7 朱惠明;姜岭梅;黄勋;;原发性肝癌的自杀基因治疗[J];现代消化及介入诊疗;2000年03期
8 王亚军,孙家邦;CD/5-FC自杀基因治疗胰腺癌的研究进展[J];中华肝胆外科杂志;2004年12期
9 曹安强;戴天阳;;自杀基因治疗肺癌研究进展[J];西部医学;2008年03期
10 陆东东;;肝癌自杀基因治疗最新进展[J];医学研究通讯;2001年10期
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1 徐开林;杜冰;朱峰;潘秀英;;慢病毒载体介导HSV-TK/GCV系统防治GVHD的实验研究[A];第12届全国实验血液学会议论文摘要[C];2009年
2 张金岭;;慢病毒介导的多干扰技术协同下调CD28和CD25分子抑制淋巴细胞活化的试验研究[A];第12届全国实验血液学会议论文摘要[C];2009年
3 罗毅;王小聪;赵娟;邹萍;;pir-b慢病毒对DC功能影响的初步研究[A];第12届全国实验血液学会议论文摘要[C];2009年
4 陈翀;徐开林;鹿群先;程海;曹江;;慢病毒介导的人B区缺失凝血因子Ⅷ在NOD/SCID小鼠体内表达[A];第12届全国实验血液学会议论文摘要[C];2009年
5 周亚锋;杨向军;李红霞;蒋文平;;HCN4慢病毒转染基质干细胞构建起搏样细胞的体外研究[A];中华医学会第11次心血管病学术会议论文摘要集[C];2009年
6 姚德生;李力;Kenneth Garson;Barbara C.Vmderhyden;;携带OPCML基因的慢病毒表达质粒的构建[A];中华医学会第九次全国妇科肿瘤学术会议论文汇编[C];2006年
7 钟琦;韩德民;黄志刚;房居高;陈晓红;张伟;王鸿;黑虎;;表达MDR1siRNA慢病毒载体逆转喉癌细胞多药耐药性的研究[A];中华医学会第十次全国耳鼻咽喉-头颈外科学术会议论文汇编(上)[C];2007年
8 戴建威;章倩倩;刘松财;丁景华;张永亮;;慢病毒载体介导GHRH基因在小鼠肌肉组织表达及对生长的影响[A];全国动物生理生化第十次学术交流会论文摘要汇编[C];2008年
9 寿张飞;陈江华;吴萍萍;韩飞;李恒;陈荣军;肖华婴;徐义芳;;以慢病毒为载体的Sharp-2特异的RNA干扰系统的构建[A];中华医学会第11届全国内科学术会议论文汇编[C];2007年
10 潘浩;温端改;欧阳骏;侯建全;浦金贤;严春寅;;携带大鼠ICAM-1基因RNA干扰慢病毒载体的构建及鉴定[A];第十五届全国泌尿外科学术会议论文集[C];2008年
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1 余海若;慢病毒的发现[N];大众科技报;2000年
2 石瑛;植物载体药难产[N];医药经济报;2007年
3 白毅;沈阳药大脂质体研究成效突出[N];中国医药报;2005年
4 ;与艾滋病魔赛跑[N];吉林日报;2006年
5 解志强;食品安全现状及社会监督体系的建设[N];甘肃日报;2007年
6 李钦俦;便秘的家庭自疗[N];大众卫生报;2009年
7 于洋;乳腺肿瘤的分子靶向治疗体系的构建与应用[N];科技日报;2007年
8 祝源 邹安琪;恶性脑胶质瘤基因治疗研究日渐深入[N];中国医药报;2006年
9 袁勤生张天民 吴梧桐 王凤山 李素霞;建立我国生物技术药物研究创新体系[N];中国医药报;2007年
10 王松;防止癌症从“口”入[N];农民日报;2001年
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1 陈海金;慢病毒介导的双自杀基因靶向治疗大肠癌的实验研究[D];第一军医大学;2007年
2 马晓生;Lentivirus病毒载体感染骨髓间质干细胞的诱导和定向分化[D];复旦大学;2006年
3 杨晋;慢病毒介导的HSV-tk/GCV自杀基因系统对晶状体上皮细胞的杀伤作用研究[D];复旦大学;2006年
4 康楷;VEGF-A-siRNA和CXCR4-siRNA慢病毒载体的构建及对卵巢癌的基因治疗[D];重庆医科大学;2008年
5 彭亮;CD24在维持结肠肿瘤干细胞特性过程中的作用及影响[D];南方医科大学;2010年
6 张永红;双自杀基因CDTK载体的构建及其对人视网膜母细胞瘤株Y79的杀伤作用[D];中南大学;2008年
7 李鹏;应用RNA干扰技术针对MDR1基因逆转肾细胞癌细胞多药耐药的试验研究[D];山东大学;2008年
8 侍阳;RNAi沉默4-1BB基因表达抗大鼠肝移植急性排斥反应的实验研究[D];苏州大学;2008年
9 李军;新型自杀基因linamarase介导的酶—前药体系高效靶向治疗原发性肝癌的实验研究[D];第四军医大学;2009年
10 杨朝;鳗弧菌展示系统和平衡—致死宿主载体系统的开发[D];华东理工大学;2010年
中国硕士学位论文全文数据库 前10条
1 尹岚岚;伪型EIAV病毒的制备[D];新疆农业大学;2008年
2 杨鹏;腹腔镜结肠癌根治术的临床疗效评估[D];浙江大学;2005年
3 梁学锋;慢病毒介导的沉默HL-60细胞PLD_2基因的研究[D];福建医科大学;2008年
4 曹姣;CTLA4-Ig重组慢病毒引流淋巴结定向表达的研究[D];第四军医大学;2012年
5 张健琦;细胞内源蛋白TTRAP与HIV-1整合酶的相互作用及其对慢病毒整合的影响[D];复旦大学;2009年
6 齐莹莹;结肠肿瘤中UGT1A及其信号转导途径相关因子的表达与意义[D];山东大学;2012年
7 林荣凯;双自杀基因重组腺病毒靶向治疗大肠癌的体外实验研究[D];第一军医大学;2005年
8 孙绳墨;胆囊结石、胆囊切除与结肠癌关系的病例对照研究[D];浙江大学;2007年
9 伍小平;罗格列酮对人结肠癌氟尿嘧啶化疗增敏作用实验研究[D];南华大学;2006年
10 周隽;电穿孔转化沙眼衣原体建立衣原体载体实验研究[D];华中科技大学;2006年
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