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《中国人民解放军军事医学科学院》 2003年
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促凋亡蛋白(BclGs)的信号转导机制研究

万晶宏  
【摘要】:BclGs属于仅含有BH3结构域的促凋亡蛋白亚家族成员,其mRNA仅在睾丸中表达,使Bcl-G(Gonad)得以冠名。Bcl-G是Bel-2家族促凋亡蛋白中独特的新成员,其基因编码两个蛋白,长片段BelG_L和短片段BclGs。它依靠非BH3结构域定位于胞内细胞器,基因定位于染色体12p12,此区域在50%的前列腺癌、30%的卵巢癌和30%的儿童急性淋巴细胞白血病中表现为缺失性突变。当BelGs过表达时,显示了很强的细胞毒性。它不但可被共表达的抗凋亡蛋白Bcl-xL所抑制,而且Bcl-xL也能与BelGs发生免疫共沉淀。除了与Bcl-2家族蛋白发生相互作用外,BclGs的调节机制仍需进一步阐明。我们以BclGs为诱饵,利用酵母双杂交的方法,从人睾丸cDNA文库中筛选出长片段BclGL、CSN5/JAB1(c-Jun N端激活结构域结合蛋白)、与DEAF1(变形表皮自调节因子1)相似的蛋白、与LDHA(乳酸脱氢酶)相似的蛋白、与GPx4(谷胱苷肽过氧化物酶4)相似的蛋白和一个新的融合蛋白(未注册)。其中,JAB1又属于COP9复合物的第五组分,负责调节植物中的光信号、线虫中的幼虫发育、整合素信号、细胞周期调控和甾体类激素信号传导。并且,其功能主要是加强AP-1(c-Jun/c-fos)与AP-1结合位点(TRE)即AP-1启动子区的结合力与稳定性,从而增强AP-1反式转录活性。并且,巨嗜细胞移动抑制因子MIF与细胞内蛋白JAB1相互作用,JAB1激活JNK的活性,并增强内源性磷酸化c-Jun的水平,而MIF抑制JAB1所增强的AP-1活性,但不能干扰转录因子NFkappaB的诱导。与之相反,胞外信号通过细胞表面整合素LFA-1在JAB1的介导下,把信号传到核内,激活AP-1。而HPO可进一步加强JAB1对AP-1的激活作用。它增加c-Jun的磷酸化而导致AP-1的激活。并且JAB1是通过非JNK途径加强c-Jun磷酸化的,以非MAPK信号途径,在JAB1的介导下激活AP-1的活性。因此,我们利用酵母双杂交、体外结合实验和细胞共定位进行验证,表明BclGs与CSN/JAB1可以发生相互作用。双报告基因实验表明促凋亡蛋白BclGs与JAB1发生相互作用,通过CSN5/JAB1的介导,降低c-Jun的磷酸化水平,抑制AP-1转录激活活性,从而引发细胞凋亡。在此基础上,进一步研究磷酸化的JNK系列、STAT系列、AKT和LaminA等与细胞增殖和凋亡相关的蛋白,利用Western blot检测其表达,结果表明:BclGs能够降低JNK的磷酸化,但通过非MAPK的途径磷酸化JNK,从而导致下游事件的发生;BclGs还降低STAT3的磷酸化,但不能刺激STAT家族其它三种成员的磷酸化。BclGs使AKT表达降低,而Lamin A水平表达升高。总之,促凋亡蛋白BclGs和辅助激活因子JAB1相互作用所引起的信号转导是对BclGs所致的凋亡机制的补充;其中,在以BclGs-JAB1相互作用作为关键的分子基础的信号转导过程中,JNK和STAT3的磷酸化下降,增加了BclGs所致凋亡的敏感性;AKT的表达降低,而Lamin A的表达增高,仅作为对BclGs反应的结果出现,可能处于细胞凋亡的早期。
【关键词】:BclGs CSN5/JAB1 细胞凋亡 蛋白-蛋白相互作用 信号转导
【学位授予单位】:中国人民解放军军事医学科学院
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2003
【分类号】:R363
【目录】:
  • 前言10-13
  • 1. 利用酵母双杂交筛选与 BclGs相互作用的分子13-28
  • 1.1 材料13
  • 1.2 方法13-20
  • 1.2.1 酵母的长期保存与复苏13
  • 1.2.2 逆转录反应13-15
  • 1.2.3 诱饵质粒pGBKT7-BclGs的构建及转化15-16
  • 1.2.4 验证有无自身转录激活活性16-18
  • 1.2.5 酵母蛋白的提取及鉴定18-19
  • 1.2.6 大规模文库质粒(pACT2-DNA)转化与文库筛选19
  • 1.2.7 用α-gal初步筛查阳性菌落19-20
  • 1.2.8 小剂量提取酵母质粒20
  • 1.2.9 PCR产物进行测序20
  • 1.2.10 连接到T载体上进行测序20
  • 1.3 结果20-25
  • 1.3.1 BclGs的分子结构分析20-21
  • 1.3.2 与BclGs相互作用的阳性克隆的获得21-22
  • 1.3.3 与 BclGs可能具有相互作用阳性克隆的鉴定(部分)22-23
  • 1.3.4 测序结果的生物信息学初步分析23-25
  • 1.4 小结25-26
  • 参考文献26-28
  • 2. 酵母双杂交验证 BclGs与 JAB1的相互作用28-32
  • 2.1 材料与方法28-30
  • 2.1.1 材料28
  • 2.1.2 方法28-30
  • 2.1.2.1 酵母双杂交验证相互作用(共转化)28-29
  • 2.1.2.2 液体测定β-gal活性(ONPG法)29-30
  • 2.2 结果30-31
  • 2.3 小结31-32
  • 3. 利用体外转录翻译系统进行相互作用的体外结合验证32-34
  • 3.1 材料和方法32-33
  • 3.1.1 材料32
  • 3.1.2 方法32-33
  • 3.1.2.1 体外转录翻译合成 BclGs和JAB132
  • 3.1.2.2 体外结合实验32-33
  • 3.2 结果(预实验)33
  • 3.3 小结33-34
  • 4. BclGs与 JAB1的细胞内共定位34-39
  • 4.1 材料和方法34
  • 4.1.1 材料34
  • 4.1.2 方法34
  • 4.1.2.1 载体构建34
  • 4.1.2.2 细胞培养34
  • 4.1.2.3 共转染细胞34
  • 4.2 结果34-35
  • 4.2.1 BclGs与JAB1瞬时表达的定位结果34-35
  • 4.3 小结35-36
  • 4.4 讨论36-37
  • 参考文献37-39
  • 5. BclGs通过 JAB1抑制 AP-1转录活性及初步的信号转导机制39-51
  • 5.1 材料和方法39-40
  • 5.1.1 材料39
  • 5.1.2 方法39-40
  • 5.1.2.1 载体构建39
  • 5.1.2.2 Lipofectamine 2000转染方法39
  • 5.1.2.3 荧光素酶活性测定39-40
  • 5.2 BclGs降低 JAB1对转录因子 AP-1的激活作用40-41
  • 5.2.1 小结41
  • 5.3 JAB1反义核酸阻断BclGs对 AP-1转录活性的抑制41-42
  • 5.3.1 材料与方法:同前(不转染外源性JAB1)41
  • 5.3.2 结果41-42
  • 5.3.3 小结42
  • 5.4 利用Western Blotting检测 BclGs通过JAB1介导的信号转导通路42-45
  • 5.4.1 材料与方法42
  • 5.4.1.1 材料42
  • 5.4.1.2 方法42
  • 5.4.1.2.1 转染方案与设计42
  • 5.4.1.2.2 Western blotting42
  • 5.4.2 结果42-45
  • 5.5 讨论45-47
  • 5.6 总结47
  • 5.7 存在的问题47-48
  • 参考文献48-51
  • 附录1: BclGs的原核表达、纯化及多克隆抗体的制备51-57
  • 1 材料与方法51-54
  • 1.1 材料51
  • 1.2 方法51-54
  • 1.2.1 原核表达载体的构建51
  • 1.2.2 pET28a+-BclGs融合蛋白的表达与纯化51-53
  • 1.2.2.1 pET28a+-BclGs融合蛋白表达51
  • 1.2.2.2 包涵体的获取51-52
  • 1.2.2.3 pET28a+-BclGs融合蛋白的纯化52
  • 1.2.2.4 pET28a+-BclGs融合蛋白的复性52-53
  • 1.2.3 SDS-PAGE凝胶电泳53
  • 1.2.4 多克隆抗体的制备53-54
  • 2 结果54-56
  • 2.1 pET28a+-BclGs的原核表达、包涵体的溶解与纯化54-56
  • 2.2 pET28a+-BclGs的原核表达包涵体的透析复性56
  • 2.3 多克隆抗体的获得56
  • 3 小结56-57
  • 附录2: 用兔 BclGs多抗检测诱导细胞凋亡发生时内源性 BclGs蛋白表达57-59
  • 1 材料与方法57-59
  • 1.1 材料57
  • 1.2 方法57
  • 1.2.1 细胞凋亡的诱导57
  • 1.2.1.1 去除血清诱导细胞凋亡57
  • 1.2.1.2 Fas多抗诱导细胞凋亡57
  • 1.2.2 细胞凋亡指标的检测57
  • 1.2.3 Western blotting蛋白印迹法57
  • 1.3 结果57-58
  • 1.3.1 撤除血清后检测 Jurkat细胞中内源性 BclGs的表达57-58
  • 1.3.2 流式细胞检测撤除血清后 Jurkat细胞的凋亡58
  • 1.4 小结58-59
  • 附录3: BclGs在真核细胞内的瞬时表达59-60
  • 1 材料与方法59
  • 1.1 材料59
  • 1.2 方法59
  • 1.2.1 载体构建59
  • 1.2.2 细胞培养与瞬时转染59
  • 1.2.3 SDS-PAGE和Western Blotting59
  • 2 结果59
  • 3 小结59-60
  • 附录4: 利用 Tet on系统筛选 BclGs双稳定细胞株60-64
  • 1 材料与方法60-61
  • 1.1 材料60
  • 1.2 方法60-61
  • 1.2.1 载体构建60
  • 1.2.2 转染及筛选细胞双稳定细胞株60-61
  • 1.2.3 细胞凋亡的功能实验61
  • 2 结果61-63
  • 2.1 利用外部和内部酶切位点EcoR I进行酶切的电泳图谱61-62
  • 2.2 RT-PCR62
  • 2.3 流式细胞的分析62-63
  • 3 小结63-64
  • 附录5: 主要仪器设备和主要试剂的配制64-67
  • 1 主要仪器设备64
  • 2 主要溶液的配制64-67
  • 2.1 western-blot相关试剂64-65
  • 2.2 蛋白提取相关溶液65
  • 2.3 细胞培养相关溶液65-66
  • 2.4 酵母双杂交实验有关试剂66
  • 2.5 双报告基因实验66
  • 2.6 体外转录翻译实验66-67
  • 致谢67-68
  • 博士后期间发表的文章和学术论著68-70
  • 综述70-75

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