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血管紧张素-(1-7)抑制动脉粥样硬化形成和进展的实验研究

杨建民  
【摘要】: 背景 动脉粥样硬化(atherosclerosis, AS)斑块形成是心脑血管疾病的共同病理学基础。大量研究表明,血管平滑肌细胞(vascular smooth muscle cells, VSMCs)在AS斑块形成过程中发挥着关键作用。正常血管中膜VSMCs呈“静止状态”,但促AS因素的作用下,VSMCs的增殖和迁移能力大大增强,向内膜下迁移增多,从而促进AS的形成。近年来,一些学者认为,在AS发生过程中VSMCs的增殖和迁移改变可能早于内皮细胞的功能异常。尽管在这方面仍有争议,但越来越多的证据支持VSMCs在AS早期病变中具有重要地位。 研究表明,肾素-血管紧张素系统(renin-angiotensin system, RAS)在VSMCs增殖和迁移及AS斑块形成和进展过程中起着重要的作用,血管紧张素Ⅱ(angiotensinⅡ, AngⅡ)是这一作用的关键分子。血管紧张素-(1-7)[angiotensin-(1-7), Ang-(1-7)]是近年来发现的R-AS系统新成员,主要由血管紧张素转化酶-2(angiotensin converting enzyme-2, ACE2)分解血管紧张素Ⅱ所产生。血管紧张素-(1-7)在多种病理生理过程中拮抗血管紧张素Ⅱ,对于RAS系统过度激活所导致的病变起保护作用,如高血压、心力衰竭和动脉粥样硬化等。既往的体内研究曾发现,Ang-(1-7)可抑制内膜损伤模型的中膜平滑肌细胞的增殖,但其抑制’VSMCs增殖和迁移活性的分子机制至今未明。 新近的研究发现,促分裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein kinase, MAPKs)在AngⅡ诱导的VSMCs增殖中起有重要作用。SM22a是VSMCs重要的表型蛋白,在AS病变、主动脉瘤和肿瘤血管中SM22a表达明显下降。SM22α基因敲除可促进VSMCs增殖和迁移活性,促进AS的形成。 综上所述,虽然Ang-(1-7)与VSMCs增殖关系的研究取得了一些进展,仍存一些重大的科学问题未能解决:(1)Ang-(1-7)调节VSMCs增殖活性的分子机制是什么?(2)MAPKs家族蛋白ERK、P38和JNK与SM22α表型蛋白在Ang-(1-7)调节VSMCs增殖活性的过程中是否发挥独立或联合发挥作用?因此,我们提出如下假设:Ang-(1-7)可有效抑制AngⅡ诱导的VSMCs增殖,这一作用是通过调节MAPKs与SM22α信号转导通路的交互对话而实现的。 目的 1.检测Ang-(1-7)对血管紧张素Ⅱ诱导的VSMCs增殖和迁移的影响; 2.检测血管紧张素-(1-7)对VSMCs增殖和迁移相关信号蛋白(ERK1/2,P38,JNK1/2和SM22α)的影响; 3.明确上述信号蛋白在VSMCs增殖和迁移过程中的内在联系。 方法 1.细胞培养:人主动脉平滑肌原代细胞购自Sciencell公司,采用常规方法培养,当达到80-90%融合时传代,实验采用第4~8代细胞。 2.实验分组:为了观察AngⅡ和Ang-(1-7)对VSMCs功能和相应信号转导通路蛋白的影响,分为6个组:对照组、AngⅡ组、Ang-(1-7)组、AngⅡ+Ang-(1-7)组、AngⅡ+Ang-(1-7)+A779组、A779组、PD98059组、SB203580组、PD98059组+SB203580组、SM22α干扰组。AngⅡ在培养基的终浓度为0.1μM;Ang-(1-7)和A779在培养基的终浓度为1μM。 3.MTT和BrdU掺入实验:根据实验目的的不同,分别观察AngⅡ、Ang-(1-7)、AngⅡ+Ang-(1-7)、AngⅡ+Ang-(1-7)+A779、A779、PD98059、SB203580、PD98059+SB203580和SM22α干扰后VSCMs的增殖能力。 4.Transwell平板实验:根据实验目的的不同,分别观察AngⅡ、Ang-(1-7)、AngⅡ+Ang-(1-7)、AngⅡ+Ang-(1-7)+A779、A779、PD98059、SB203580、PD98059+SB203580和SM22α干扰后VSCMs的增殖能力。 5.RT-PCR:观察AngⅡ和Ang-(1-7)干预后,VSMCs SM22αmRNA的表达。 6.Western blot:观察AngⅡ、Ang-(1-7)、A779、PD98059、SB203580、PD98059+SB203580和SM22α干扰等不同干预后,VSMCs有关因子的表达。强弱用表达的蛋白和β-actin条带积分光密度的比值表示。 结果 1.Ang-(1-7)对AngⅡ诱导的VSMCs增殖活性的影响:MTT和BrdU实验证实,与对照相比,AngⅡ组的VSMCs增殖活性显著增强,Ang-(1-7)能有效抑制AngⅡ诱导的VSMCs增殖,而A779可有效逆转Ang-(1-7)的作用。 2..Ang-(1-7)对AngⅡ诱导的VSMCs迁移的影响:Transwell平板实验证实,与对照相比,AngⅡ组的VSMCs迁移能力显著增强,Ang-(1-7)能有效抑制AngⅡ诱导的VSMCs迁移,而A779可部分逆转Ang-(1-7)的作用。 3. VSMCs增生信号转导蛋白的研究:与对照相比,AngⅡ组的VSMCsERK1/2、P38的活性增强,Ang-(1-7)能有效抑制AngⅡ诱导的ERK1/2、P38激活,而A779可有效逆转Ang-(1-7)抑制ERK1/2、P38的作用。与对照组相比,AngⅡ组的VSMCs活性增强,Ang-(1-7)对JNK1/2活性无显著影响。与对照组相比,AngⅡ组的VSMCs SM22a表达显著减少,Ang-(1-7)组SM22α表达显著增加,而A779可有效逆转Ang-(1-7)的作用。 4.与对照组相比,PD98059、SB203580组、PD98059+SB203580组VSMCs增殖和迁移能力显著下降;SM22αsiRNA组VSMCs增生和迁移能力显著升高;PD98059、SB203580组、PD98059+SB203580组VSMCs SM22α表达升高。 结论 1.Ang-(1-7)能有效抑制AngⅡ对VSMCs增殖和迁移的促进作用。 2.AngⅡ能有效激活ERK1/2、P38、JNK1/2,抑制SM22α表达。Ang-(1-7)能够下调AngⅡ引起的ERK1/2、P38激活,增加SM22α表达,A779可大部分逆转Ang-(1-7)的作用。Ang-(1-7)对JNK1/2的激活无显著作用。 3. Ang-(1-7)-MAS-ERK/P38-SM22α可能是影响VSMCs生物活性的主要信号通路。 1.背景 动脉粥样硬化(atherosclerosis, AS)是导致心脑血管疾病的病理学基础。肾素-血管紧张素系统(renin-angiotensin system, RAS)在血管平滑肌细胞(vascular somooth muscle cells,VSMCs)增殖、迁移及AS斑块形成和进展过程中起着重要的作用。血管紧张素Ⅱ(angiotensinⅡ, AngⅡ)是RAS系统的主要活性成分。大量的研究证实,AngⅡ可显著促进VSMCs的增殖和迁移活性,促进AS形成和进展。 血管紧张素-(1-7)[Angiotensin-(1-7), Ang-(1-7)]是近年来发现的RAS家族新成员,在体内主要由血管紧张素转化酶-2(angiotensin converting enzyme-2,ACE2)分解AngⅡ所产生。近年研究发现,Ang-(1-7)是AngⅡ重要的内源性拮抗剂,具有抑制炎症和氧化应激、激活磷酸酯酶、促进肾脏排钠、促进血管舒张等作用,介导了心肌重构和纤维化、高血压血管重构、血管平滑肌细胞增殖、炎症、血管内皮细胞功能调节等多个病理生理过程。 以往研究发现,Ang-(1-7)可抑制球囊内皮损伤模型中主动脉VSMCs增殖和迁移以及血管内膜增厚。本实验室的研究也发现,ACE2过表达可抑制早期AS病变的形成。这些研究提示,Ang-(1-7)在AS的进程中可能发挥着重要的保护作用。因此,通过直接应用Ang-(1-7),拮抗体内AS进程中过度激活的AngⅡ,对AS病变得预防和治疗可能起到有益的作用。然而,Ang-(1-7)对于AS病变形成的量效关系至今不明。此外,我们的体外研究证实,Ang-(1-7)可调节VSMCs的ERK1/2、P38、SM22α等信号蛋白的表达,抑制VSMCs的增殖和迁移,但这些体外实验的结果能否在体内得到验证尚不明了。 因此,本研究提出如下假设:在ApoE-/-小鼠AS病变模型中,Ang-(1-7)可通过调节体内MAS-ERK/P38-SM22α信号转导通路,抑制VSMCs增殖和迁移,进而抑制AS的发展。 2.目的 2.1在体内试验中,观察不同剂量的Ang-(1-7)对ApoE-/-小鼠AS病变的抑制作用; 2.2在体内实验中,验证Ang-(1-7)抑制ApoE-/-小鼠AS病变形成的机制。 3.方法 3.1 ApoE-/-小鼠AS模型的建立 8周龄的雄性ApoE-/-小鼠实验全程高脂饮食(含0.25%胆固醇和15%脂肪)喂养8周。 3.2 Ang-(1-7)体内干预实验 高脂喂养4周后,随机分为PBS对照组(12只)、Ang-(1-7)干预组(36只)和A779干预组(36只)。Ang-(1-7)和A779组又分别分为3个剂量组(100ng/kg.min、200ng/kg.min、400ng/kg.min)。用药具体方法为:经植入式胶囊渗透压泵皮下持续泵入,用药28天。 分别于药物干预4周后处死动物,进行斑块的病理学和免疫组织化学检测。 3.3血液生化指标检测 分别检测血清甘油三酯、总胆固醇、高密度脂蛋白胆固醇和低密度脂蛋白胆固醇的水平。 3.4组织病理学检测 将主动脉纵剖后行大体油红O染色,对主动脉根部斑块进行HE染色,心肌组织进行Masson染色;并通过免疫组织化学方法检测主动脉SM22α和肾脏内MOMA-2的表达。 3.5 Western blot检测 取新鲜主动脉根部组织,提取蛋白质,Western blot检测AS病变组织p-ERK1/2和p-P38的表达。 4.结果 4.1血液生化指标检测: 对照组、Ang-(1-7)各亚组和A779各亚组血清TC、TG、HDL-C、LDL-C未见统计学差异。 4.2 Ang-(1-7)的抗AS作用 大体油红O染色显示,与对照组相比,各Ang-(1-7)干预组均能有效抑制主动脉表面AS病灶范围。Ang-(1-7)抑制主动脉表面AS病变的作用呈剂量依赖性;随Ang-(1-7)浓度的增加,主动脉表面AS病灶范围逐渐减少。Ang-(1-7)最大剂量组与对照组主动脉表面AS病灶范围有显著统计学差异(2.58% vs.4.14%,P0.05)。 HE染色显示,与对照组相比,各Ang-(1-7)干预组均能有效抑制主动脉根部AS斑块的形成。Ang-(1-7)抑制主动脉根部AS面积的作用呈剂量依赖性;随Ang-(1-7)浓度的增加,主动脉根部AS斑块横截面积逐渐减少。Ang-(1-7)最大剂量组与对照组主动脉根部AS斑块面积有显著统计学差异(12.08% vs.20.28%,P0.05)。 4.3 A779对AS的影响 大剂量A779干预组主动脉表面AS病变范围(4.79% vs.4.14%,P0.05)和主动脉根部(23.22%vs.20.28%,P0.05)AS病变横截面积显著高于PBS对照组,低、中剂量A779干预对主动脉表面和主动脉根部AS病变范围无显著影响。 4.4 Ang-(1-7)抗AS的机制 血清学分析显示,各组间ApoE-/-小鼠的血清TC、TG、HDL-C、LDL-C的差异无统计学差异。上述结果提示Ang-(1-7)抗AS的作用可能独立于对血脂水平的影响。 研究发现,RAS的激活可促进血管中膜平滑肌细胞的激活,促进VSMCs迁移和增殖活性,启动AS的形成和进展。我们的体外实验证实,促分裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein kinases, MAPKs)、ERK1/2、P38MAPK和SM22a在Ang-(1-7)介导的平滑肌细胞的迁移和增殖活性改变中发挥着重要的作用。因此我们在体内观察了上述信号蛋白的改变。SM22a的免疫组织化学染色发现,大剂量Ang-(1-7)干预组主动脉根部血管中膜SM22a含量显著高于对照组(59.57% vs.8.80%,P0.01)和大剂量A779干预组(59.57% vs.7.75%,P0.01),提示Ang-(1-7)干预可显著提高VSMCs SM22α含量。Western blot检测结果发现,Ang-(1-7)干预显著降低血管内ERK1/2和P38MAPK活性,A779显著升高血管内ERK1/2和P38MAPK活性。 4.5 Ang-(1-7)对ApoE-/-小鼠肾脏巨噬细胞浸润的影响 既往研究显示,Ang-(1-7)可增加肾脏巨噬细胞浸润,促进肾脏炎症反应。因此,本研究观察了大剂量组Ang-(1-7)对ApoE-/-小鼠肾脏巨噬细胞浸润的影响。免疫荧光检测发现,各组肾脏无明显阳性染色,Ang-(1-7)组和PBS对照组之间无显著差异。 4.6 Ang-(1-7)对ApoE-/-小鼠心肌胶原含量的影响 Masson染色显示,各组心肌胶原染色无显著差异,无明显的纤维化改变。 5.结论 1.Ang-(1-7)对高脂喂养的ApoE-/-小鼠AS病变有显著的抑制作用。 2.Ang-(1-7)抗AS的作用可能与调节MAS-ERK/P38-SM22α信号转导通路,抑制VSMCs增殖和迁移活性有关。 1.背景 大量临床研究显示,急性冠状动脉综合征(acute coronary syndrome, ACS)主要是由于AS易损斑块(vulnerable plaque)破裂和血栓形成造成急性冠脉完全或部分闭塞所致。因此,斑块易损性已成为国内外研究的热点。斑块是否破裂取决于斑块内在因素和外在因素的共同作用,而内在因素是斑块不稳定性的决定因素。因此,深入研究斑块易损性的发生机制,增强易损斑块的稳定性,是预防临床急性心血管事件的重要方法。 大量研究证实,炎症是AS发生和发展的重要机制。炎症反应贯穿于AS的整个过程,而炎性细胞在AS病变的进程中发挥了重要的作用。在外界因素的刺激下,血管内皮细胞、平滑肌细胞、巨噬细胞及外膜的成纤维细胞等均可产生炎性因子,促进血管炎症反应和AS病变的形成。斑块内炎症反应的活跃程度与斑块易损性密切相关,因此斑块内炎症反应是斑块易损机制中最重要的因素之一。 肾素-血管紧张素系统(renin-angiotensin system, RAS)在炎症反应和AS斑块的发生和发展中起着重要的作用。血管紧张素Ⅱ(angiotensinⅡ,AngⅡ)能够通过多种信号传导通路介导炎症反应,而AngⅡ与AS的关系已经得到了证实。传统的观念认为,AngⅡ是RAS系统的主要成分,近年来随着angiotensin converting enzyme 2 (ACE2、angiotensin-(1-7) [Ang-(1-7)]等RAS家族新成员的发现,人们对RAS家族各成员的病理生理学意义有了许多新的认识。Ang-(1-7)在体内主要由ACE2高效分解AngⅡ所生成。新近的研究发现血管紧张素-(1-7)是一种有重要生物学作用的AngⅡ内源性拮抗剂,能有效抑制炎症反应和氧化应激。 我们既往的研究也发现,ACE2过表达可以稳定AS易损斑块。本研究第Ⅱ部分的结果也发现,Ang-(1-7)能有效抑制ApoE-/-小鼠AS早期病变的形成。这些研究提示我们是否可以通过体内直接应用Ang-(1-7),抑制体内过度激活的RAS,从而促进AS斑块的稳定性呢?然而,直接应用Ang-(1-7)稳定AS易损斑块的研究甚少,其确切作用和分子机制有待阐明。 2.目的 2.1在体内研究中,观察大剂量的Ang-(1-7)对ApoE-/-小鼠AS斑块稳定性的影响; 2.2在体内研究中,观察大剂量的Ang-(1-7)对ApoE-/-小鼠AS斑块炎症的影响机制; 2.3在体外实验中,观察Ang-(1-7)对巨噬细胞炎症因子表达的影响。 3.方法 3.1 ApoE-/-小鼠AS模型的建立 8周龄的雄性ApoE-/-小鼠实验全程高脂饮食(含0.25%胆固醇和15%脂肪)喂养,分为两组:单纯高脂喂养组(高脂喂养12周+药物干预4周)和颈动脉套管组(高脂喂养2周+颈动脉套管8周+药物干预4周)。 3.2 Ang-(1-7)体内干预实验 单纯高脂喂养组和颈动脉套管组分别于高脂喂养12周和颈动脉套管8周后,随机分为PBS对照组(12只)、Ang-(1-7)干预组(12只,400ng/kg.min)和A779干预组(12只,400ng/kg.min)。用药具体方法为:经植入式胶囊渗透压泵皮下持续泵入,用药28天。 分别于药物干预4周后处死动物,检测斑块的病理学形态结构。 3.3血液生化指标检测 分别检测血清甘油三酯、总胆固醇、高密度脂蛋白胆固醇和低密度脂蛋白胆固醇的水平。 3.4组织病理学检测 分别对主动脉根部和颈动脉套管近心端斑块分别进行油红O染色、HE染色和天狼猩红染色,并通过免疫组织化学方法检测斑块内平滑肌肌动蛋白α-actin、巨噬细胞MOMA-2、肿瘤坏死因子(TNF-α)、白介素-6(IL-6)、白介素-1β(IL-1β)、单核细胞趋化因子(MCP-1)、基质金属蛋白酶-2(MMP-2)、基质金属蛋白酶-9(MMP-9)和金属蛋白酶组织抑制剂-1(TIMP-1)的表达。检测斑块内脂质、巨噬细胞、胶原和VSMCs的含量,然后计算易损指数:易损指数=(巨噬细胞+脂质)阳性面积百分比/(平滑肌细胞+胶原)阳性面积百分比。 3.5 RT-PCR采用RT-PCR检测巨噬细胞TNF-α、IL-1β、IL-6和MCP-1 mRNA的表达水平。 4.结果 3.1血液生化指标检测: 单纯高脂喂养组:对照组、Ang-(1-7)组和A779组血清TC、TG、HDL-C、LDL-C未见统计学差异。 高脂喂养+颈动脉套管组:对照组、Ang-(1-7)组和A779组血清TC、TG、HDL-C、LDL-C未见统计学差异。 3.2 Ang-(1-7)对主动脉根部AS斑块易损指标的影响 对照组、Ang-(1-7)组和A779组主动脉根部斑块脂质含量百分比分别为20.65%、15.76%和24.45%;巨噬细胞含量百分比分别为17.58%、12.32%和27.84%;平滑肌细胞含量百分比分别为8.59%、23.34%和11.45%;胶原含量百分比分别为14.56%、17.25%和9.58%。易损指数分别为1.65±0.15;0.89±0.24和2.38±0.26。 3.3 Ang-(1-7)对主动脉根部AS斑块炎症的作用 单纯高脂喂养组:对照组、Ang-(1-7)组和A779组主动脉根部斑块IL-6含量百分比分别为20.25%、12.17%和25.87%;IL-1β含量百分比分别为17.07%、16.39%和25.98%;TNF-α含量百分比分别为20.36%、23.65%和35.68%;MCP-1含量百分比分别为20.36%、12.65%和19.68%。 3.4 Ang-(1-7)对巨噬细胞炎症因子表达的影响 RT-PCR结果显示,尽管Ang-(1-7)对巨噬细胞炎症因子的表达无明显影响,但AngⅡ可显著增加巨噬细胞TNF-α、IL-6、IL-1β和MCP-1的表达,而Ang-(1-7)显著降低AngⅡ诱导的上述细胞因子的表达上调。相反的,A779可大部分逆转Ang-(1-7)的作用。 3.5 Ang-(1-7)对主动脉根部AS斑块基质降解酶表达的影响 单纯高脂喂养组:对照组、Ang-(1-7)组和A779组主动脉根部斑块TIMP-1含量百分比分别为5.79%、30.74%和5.42%;MMP-2含量百分比分别为28.45%、11.23%和37.92%;MMP-9含量百分比分别为17.16%、11.23%和15.43%。 3.6 Ang-(1-7)对颈动脉AS斑块易损指标的影响 对照组、Ang-(1-7)组和A779组颈动脉斑块脂质含量百分比分别为20.43%、14.76%和25.37%;巨噬细胞含量百分比分别为12.46%、7.21%和19.95%;平滑肌细胞含量百分比分别为5.15%、8.24%和4.20%;胶原含量百分比分别为15.21%、17.98%和10.08%。易损指数分别为1.62、0.84和3.17。 5.结论 1.大剂量Ang-(1-7)能有效地抑制斑块局部巨噬细胞浸润和脂质沉积,增强斑块的稳定性。 2.大剂量Ang-(1-7)稳定易损斑块的作用可能与抑制斑块局部炎症因子和基质金属降解酶的表达,从而抑制炎症反应和基质降解有关。 1.背景 动脉粥样硬化(atherosclerosis, AS)是心脑血管疾病共同的病理学基础。肾素-血管紧张素系统(renin-angiotensin system, RAS)在炎症反应和AS发生和发展过程中起着重要的作用,在AS患者和动物模型中都发现有RAS的激活。RAS主要通过促进血管炎症和氧化应激反应诱发AS病变。血管紧张素Ⅱ(angiotensinⅡ,AngⅡ)是RAS发挥生物学活性的主要成员,AngⅡ促进AS的机制包括促进内皮细胞粘附分子的表达、促进单核细胞趋化和向巨噬细胞分化、促进巨噬细胞氧化应激反应,促进血管平滑机细胞增殖和迁移等。 越来越多的研究证实,抑制RAS能减轻AS的发生和发展。应用ACE抑制剂(ACEI)和血管紧张素受体拮抗剂(ARB)可显著抑制高脂喂养的兔和ApoE-/-小鼠主动脉AS病变的进展。然而,临床研究发现,充分剂量的ACEI和/或ARB治疗并不能完全预防心血管事件的发生。血管紧张素-(1-7)[angiotensin-(1-7), Ang-(1-7)]是近年来发现的AngⅡ的内源性拮抗剂,可在多种疾病如心肌重构和纤维化、高血压血管重构、平滑肌细胞增殖、血管炎症、血管内皮细胞功能异常及肾脏疾病等进程中发挥拮抗AngⅡ的作用,减轻体内过度激活的RAS带来的损害。因此本研究的第Ⅱ、Ⅲ部分着重观察了Ang-(1-7)对AS病变形成和进展的影响,结果发现Ang-(1-7)可以有效的抑制早期AS病变形成,稳定晚期AS斑块。然而,ACEI和Ang-(1-7)对于AS早期病变的发生和晚期斑块的稳定是否具有相同的作用尚不明了。 为了对比ACEI及Ang-(1-7)对AS发生和发展的影响,本实验在高脂喂养的ApoE-/-小鼠AS病变模型中,采用组织病理学和免疫组织化学技术观察不同阶段AS病变的形成和斑块的稳定性,对比研究了雷米普利和Ang-(1-7)对AS发生和发展的影响,为AS的预防和治疗提供新的途径。 2.目的 2.1在体内实验中,对比观察雷米普利和Ang-(1-7)对AS病变形成的抑制作用; 2.2在体内实验中,对比观察雷米普利和Ang-(1-7)对AS晚期斑块的稳定作用。 3.方法 3.1 ApoE-/-小鼠AS模型的建立 根据AS模型的不同,分为单纯高脂喂养组和高脂喂养+颈动脉套管组。 单纯高脂喂养组:8周龄的雄性ApoE-/-小鼠,实验全程高脂饮食(含0.25%胆固醇和15%脂肪)喂养8周。高脂喂养4周后,进行分组和药物干预。 高脂喂养+颈动脉套管组:8周龄的雄性ApoE-/-小鼠,实验全程高脂饮食(含0.25%胆固醇和15%脂肪)喂养。高脂喂养2周后,行颈动脉套管术,放置套管8周后,进行分组和药物干预。 3.2 Ang-(1-7)体内干预实验 单纯高脂喂养组和高脂喂养+颈动脉套管组分别于高脂喂养4周和10周后,随机分为PBS对照组(12只)、雷米普利组(12只,5mg/kg.d)和Ang-(1-7)组(12只,400ng/kg.min)。分别于药物干预4周后处死动物,检测斑块的病理学形态结构。 3.3血液生化指标检测 分别检测血清总胆固醇、甘油三酯、高密度脂蛋白胆固醇和低密度脂蛋白胆固醇的水平。 3.4组织病理学检测 单纯高脂喂养组:将主动脉纵剖后行大体油红O染色,对主动脉根部斑块进行HE染色。 高脂喂养+颈动脉套管组:对颈动脉斑块分别进行HE染色、油红O染色和天狼猩红染色,并通过免疫组织化学染色检测斑块内巨噬细胞(MOMA-2)、平滑肌肌动蛋白(α-actin)的表达。检测斑块内脂质、巨噬细胞、胶原、VSMCs的含量,计算斑块易损指数。 4.结果 4.1血液生化指标检测: 对照组、雷米普利组和Ang-(1-7)组之间血清TC、TG、HDL-C、LDL-C未见统计学差异。 4.2雷米普利和Ang-(1-7)的抗AS作用 4.2.1雷米普利和Ang-(1-7)对主动脉表面AS形成抑制作用 大体油红O染色显示,与对照组相比,雷米普利和Ang-(1-7)均能显著减少主动脉表面AS病灶范围。对照组、雷米普利组和Ang-(1-7)组主动脉表面的病灶范围分别为:4.14%、2.52%和2.58%。雷米普利组和Ang-(1-7)组主动脉表面的病灶范围无显著差异(P0.05),但均显著低于对照组(P值均0.05)。 4.2.2雷米普利和Ang-(1-7)对主动脉根部AS形成的影响 HE染色显示,与对照组相比,雷米普利和Ang-(1-7)均能显著减少主动脉根部AS病灶横截面积。对照组、雷米普利组和Ang-(1-7)组主动脉根部的斑块面积分别为:20.28%、15.32%、12.08%。Ang-(1-7)组主动脉根部的AS斑块面积显著低于雷米普利组(P0.05),且均显著低于对照组(P值均0.05)。 4.3雷米普利和Ang-(1-7)对颈动脉AS斑块稳定性的影响 对照组、雷米普利组和Ang-(1-7)组颈动脉斑块脂质含量百分比分别为20.43%、15.48%和14.76%;巨噬细胞含量百分比分别为12.46%、6.68%和7.21%;平滑肌细胞含量百分比分别为5.15%、7.72%和8.24%:胶原含量百分比分别为15.21%、16.49%和17.98%。易损指数分别为1.62±0.38、0.91±0.26和0.84±0.24。与对照组相比,雷米普利和Ang-(1-7)均可显著降低颈动脉AS斑块的易损指数(P值均0.05),但雷米普利和Ang-(1-7)对斑块稳定性的影响无显著差异。 5.结论 1.体内实验结果表明,雷米普利和Ang-(1-7)均能显著抑制高脂喂养的ApoE-/-小鼠AS病变形成。 2.雷米普利和Ang-(1-7)均可有效稳定高脂喂养的ApoE-/-小鼠AS斑块。


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4 韩健雄;王小扁;胡泽平;汪渊;周青;桂淑玉;;瑞舒伐他汀对实验性动脉粥样硬化兔动脉平滑肌细胞骨桥蛋白表达的影响[J];安徽医科大学学报;2012年02期
5 舒刘芳;姜希娟;杨琳;魏丽萍;齐新;;血管平滑肌细胞表型转换对动脉粥样硬化的作用研究进展[J];中国动脉硬化杂志;2018年01期
6 任瑞军;葛志平;陈晓春;;血管平滑肌细胞与动脉粥样硬化关系研究进展[J];内蒙古医学杂志;2009年12期
7 魏钧伯;魏盟;张英民;蔡迺绳;;凝集素样氧化低密度脂蛋白受体-1介导氧化低密度脂蛋白促进血管平滑肌细胞血管紧张素转化酶的表达[J];临床心血管病杂志;2008年09期
8 唐朝克;动脉粥样硬化血管平滑肌细胞膜离子通道的研究进展[J];国外医学(生理、病理科学与临床分册);2003年04期
9 袁帅;廖思聪;王大新;;血管平滑肌细胞与动脉粥样硬化关系的研究进展[J];实用心脑肺血管病杂志;2018年02期
10 陈水龙;细胞外信号调节激酶与血管平滑肌细胞的增生、肥厚[J];福建医科大学学报;1999年04期
11 王竟悟;于杨;王大新;秦树存;;血管平滑肌细胞与动脉粥样硬化关系的研究新进展[J];实用医学杂志;2017年21期
12 何文凤;张英俊;周仲强;;血管紧张素(1-7)的生物学作用[J];中国社区医师(医学专业半月刊);2009年05期
13 章若涵;邓恒;;紫杉醇对血管平滑肌细胞原癌基因转录和表达的影响[J];南华大学学报(医学版);2008年03期
14 董明刚,高建武;动脉粥样硬化对平滑肌细胞凋亡及凋亡相关基因表达之影响[J];张家口医学院学报;1999年03期
15 陶玉香,何凤慈,陈林;血管紧张素-Ⅲ2型受体与心血管疾病[J];西部医学;2005年06期
16 韩健雄;汪渊;周青;;瑞舒伐他汀对实验性动脉粥样硬化兔动脉壁骨桥蛋白和肌球蛋白轻链激酶表达的影响[J];安徽医科大学学报;2012年11期
17 李文敏;徐暘;陈秀生;陈思;杨晓帆;陈兴露;高洋;杜红延;;血管紧张素(1-7)抑制血管生成的机制[J];分子诊断与治疗杂志;2013年04期
18 程大艳;吴美平;;血管平滑肌细胞表型对动脉硬化类疾病的影响[J];现代中西医结合杂志;2018年13期
19 吕淑萍;尚茹茹;张锦;李飞虹;王兴兴;文仙仙;刘晓红;;胰岛素样生长因子-1对动脉粥样硬化处血管平滑肌细胞的影响[J];中华临床医师杂志(电子版);2016年22期
20 彭侃夫;赵洪雯;余荣杰;孙岩;王军霞;吴亿;吴雄飞;;晚期氧化蛋白产物诱导血管平滑肌细胞表达MCP-1及其信号转导通路的研究[J];第三军医大学学报;2008年02期
中国重要会议论文全文数据库 前10条
1 孙艳;郑斌;杨展;张新华;温进坤;;NRG-1在血管平滑肌细胞中的作用机制以及在动脉粥样硬化中的作用[A];中国生物化学与分子生物学会2016年全国学术会议论文集[C];2016年
2 胡朝晖;;粒细胞集落刺激因子对慢性动脉粥样硬化的作用[A];第十三次全国心血管病学术会议论文集[C];2011年
3 马宁;魏琳琳;白亮;陈大新;李可;;C5a-C5aR信号对血管平滑肌细胞的功能调控及其机制[A];第十二届全国免疫学学术大会壁报交流集[C];2017年
4 戴珅;王博;高琦;朱法良;郭春;张利宁;;3MA通过抑制自噬影响动脉粥样硬化的发生[A];第八届全国免疫学学术大会论文集[C];2012年
5 邢杨波;何红;周斌全;蒋晨阳;盛夏;孙勇;王建安;;同型半胱氨酸对大鼠血管平滑肌细胞MMP-2表达的影响[A];2004年浙江省心血管病学学术年会论文汇编[C];2004年
6 宋江波;杨志明;梁斌;辛艳峰;;血管紧张素1-7对动脉粥样硬化大鼠胆固醇逆转运相关因子的影响[A];中华医学会第十五次全国心血管病学大会论文汇编[C];2013年
7 赵瑾;迟路湘;诸兴明;;兔颈动脉粥样硬化斑块形成过程中血管平滑肌细胞功能变化的动态观察[A];第十一届全国神经病学学术会议论文汇编[C];2008年
8 陈华;刘伟;程洁;李玲芳;邬国军;;人巨细胞病毒感染对血管平滑肌细胞MMP-2表达的影响[A];中华医学会第七次全国中青年检验医学学术会议论文汇编[C];2012年
9 刘建平;何国祥;唐波;景涛;;电场干预对血管平滑肌细胞表面血小板衍化生长因子受体分布的影响[A];中华医学会心血管病学分会第八次全国心血管病学术会议汇编[C];2006年
10 刘建平;唐波;何国祥;;直流电场影响血管平滑肌细胞迁移和增殖的实验研究[A];中华医学会心血管病学分会第八次全国心血管病学术会议汇编[C];2006年
中国博士学位论文全文数据库 前10条
1 杨建民;血管紧张素-(1-7)抑制动脉粥样硬化形成和进展的实验研究[D];山东大学;2010年
2 王欢;血管紧张素Ⅱ受体1表达分析及猪血管平滑肌细胞中硝化油酸对其表达的影响[D];吉林大学;2014年
3 王华;血管紧张素II对血管内皮细胞整合素β3表达及转录调控的影响[D];中国协和医科大学;1999年
4 于媛;circ-Sirt1上调血管平滑肌细胞SIRT1表达的机制及意义[D];河北医科大学;2018年
5 石瑜;HTRA1基因突变对血管平滑肌细胞功能的影响及其与氧化还原反应关系研究[D];第二军医大学;2015年
6 刘海伟;CREG表达调控人血管平滑肌细胞HITASY表型转换机制研究[D];第四军医大学;2004年
7 马晶;β-肾上腺素能受体不同亚型对于血管平滑肌细胞迁移、凋亡及增殖的影响及其信号转导机制[D];中国人民解放军军医进修学院;2004年
8 马瑞;睾酮对血管平滑肌细胞中雄激素受体表达调控的研究[D];第一军医大学;2004年
9 唐波;外加电场干预对体外培养大鼠血管平滑肌细胞部分生物学行为的影响[D];第三军医大学;2004年
10 魏钧伯;Ox-LDL与血管局部RAS关系及二者对血管平滑肌细胞炎症因子表达影响的研究[D];复旦大学;2004年
中国硕士学位论文全文数据库 前10条
1 李灿;非酒精性脂肪性肝病与血管紧张素-(1-7)[D];重庆医科大学;2015年
2 张波;SRFBP1对血管平滑肌细胞表型转换的调控机制[D];山东师范大学;2018年
3 刘梦;金属蛋白酶ADAMTS18在血管平滑肌细胞表型转化中的作用研究[D];华东师范大学;2018年
4 张展满;miR-182/Sort1在体外和体内调节血管平滑肌细胞钙化的实验研究[D];广西医科大学;2018年
5 秦梦杰;MYL9在动脉粥样硬化病变演进中的作用[D];大连医科大学;2018年
6 王雪琴;MiR-4463在动脉硬化闭塞症中介导JNK通路对血管平滑肌细胞的机制研究[D];西南医科大学;2018年
7 田恬;间歇性碱刺激对高磷诱导的大鼠血管平滑肌细胞钙化的影响及机制研究[D];河北医科大学;2017年
8 付芬;硒蛋白S对过氧化氢诱导的血管平滑肌细胞向成骨细胞分化及相关信号转导途径的影响[D];华中科技大学;2016年
9 刘霞;突变心钠肽对血管平滑肌细胞的影响[D];华中科技大学;2016年
10 马文青;Exo70在血管平滑肌细胞A7r5迁移的作用研究[D];山东师范大学;2017年
中国重要报纸全文数据库 前10条
1 周焱;合理应用血管紧张素转换酶抑制剂[N];中国医药报;2002年
2 王秋冬;使用卡托普利的六项注意[N];中国医药报;2008年
3 张诚;选择有挑战性的研究课题[N];科技日报;2005年
4 记者 张忠田;基因治疗动脉粥样硬化有了新途径[N];健康报;2010年
5 本报记者 靖九江;应重视对动脉粥样硬化的防治与研究[N];中国医药报;2012年
6 北京红十字朝阳医院血管外科供稿;中老年人谨防动脉粥样硬化[N];中国老年报;2001年
7 胡大一;动脉粥样硬化始于青少年[N];河北日报;2006年
8 许锦东;动脉粥样硬化可以逆转吗[N];医药养生保健报;2005年
9 邹争春 记者 陈磊;“垃圾RNA”能抑制血管动脉粥样硬化[N];科技日报;2014年
10 北京天坛医院心内科主任 陈步星;小心动脉粥样硬化的危险因素[N];光明日报;2013年
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