收藏本站
收藏 | 手机打开
二维码
手机客户端打开本文

超极化激活环核苷酸门控(HCN)阳离子通道对大鼠海马突触传递功能及机制研究

郑敏  
【摘要】: 目的 研究超极化激活环核苷酸门控( hyperpolarization-activated cyclic nucleotide-gated,HCN)阳离子通道对穿通纤维通路(perforant pathway,PP)——海马CA3区突触传递的影响及氨基酸释放的调节作用,并探讨二者之间的内在联系。 方法 应用细胞外电生理记录技术记录电刺激PP诱发的CA3区群锋电位(population spike,PS);高效液相色谱(high performance liquid chromatography, HPLC)荧光检测技术测定海马组织及培养海马神经元细胞外液中谷氨酸、天冬氨酸、甘氨酸及γ-氨基丁酸(γ-aminobutyric acid,GABA)含量;透射电子显微镜技术观察大鼠海马组织CA3区突触超微结构的改变;建立新生大鼠海马神经元原代培养技术,应用荧光钙成像系统观察单个海马神经元细胞内钙的变化。 结果 第一部分HCN通道对PP—海马CA3区突触通路正常低频突触传递及海马组织氨基酸释放的影响 HCN通道阻滞剂ZD7288及CsCl对低频刺激PP(0.5Hz)后90 min内海马CA3区PS幅值的的影响及海马组织氨基酸含量的变化。生理盐水对照组(Control组,施与低频刺激,微注射生理盐水1μL), ZD7288 (20,100,200 nmol)组(施与低频刺激,注药容积为1μL)及CsCl(1,5,10μmol)组(施与低频刺激,注药容积为1μL);各组大鼠于电生理记录完毕迅速处死、取材、冻存备测氨基酸含量。结果如下: ①特异性HCN通道阻滞剂ZD7288 20、100及200 nmol可剂量依赖降低CA3区PS幅值。90 min内PS幅值分别为基础值的69.72±1.79 %、45.23±1.5 %、28.07±4.65 %,较给药前平均下降约30.28 %, 54.77%和71.94 %(P 0.01) ,并显著低于生理盐水对照组(P 0.01),给药后5 min即起效,作用维持90 min以上。 ②非特异性HCN通道阻滞剂CsCl 1和10μmol,亦可显著降低CA3区PS幅值。给药90 min内PS幅值分别为基础值的78.61±2.06 %、44.79±2.11%,较给药前平均下降了约21.38 %和55.2 %(P 0.01)。微量注射5μmol CsCl,在开始30 min,PS幅值为基础值的58.4±1.37 %,下降显著(P 0.01),此抑制效应随时间的延长而逐渐减弱,至90 min时,基本上与1μmol CsCl作用接近(P 0.05)。 ③HPLC测定氨基酸含量结果如下:正常组大鼠(未施与任何处理因素)谷氨酸、天冬氨酸、甘氨酸和GABA含量依次为:129.6±31.7, 117.3±22.6, 123.9±34.9和225.3±42.4μmol/g.protein;生理盐水对照组大鼠实验侧海马组织氨基酸含量依次为138.3±34.3 , 101.7±15.1, 113.3±40.5和227.4±41.9μmol/g.protein,与正常组比较无显著差异(P 0.05)。ZD7288 100 nmol组上述四种氨基酸含量依次为:83. 5±15.6, 63.8±11.2, 73.1±28.2和124.7±23.6μmol/g.protein,均显著低于生理盐水对照组(all P 0.01, except for glycine P 0.05) ;CsCl 5μmol组大鼠则依次为75.9±10.3, 66.6±10.7, 80.4±15.2和157.4±26.2μmol/g.protein,亦显著低于对照组(all P 0.01,except for glycine P 0.05)。 第二部分HCN通道对PP—CA3区突触通路长时程增强(LTP)的影响 观察ZD7288及CsCl于强直刺激(tetanus stimulation, TS;刺激电压45 V,波宽0.15 ms,频率500 Hz, 4串,每串含50脉冲,串间隔2s)前及后给药对PP—CA3通路LTP PS幅值、起始潜伏期、峰潜伏期的变化,海马CA3区突触超微结构的变化及海马组织氨基酸含量变化。实验动物随机分为:对照组即control组(仅给予测试刺激不施加强直刺激)、LTP诱导组即TS处理组(给予强直刺激诱导LTP后持续观察90 min)、ZD7288—TS组(强直刺激前5 min于海马CA3区局部注入ZD7288 100 nmol)、CsCl—TS组(强直刺激前5 min于海马CA3区局部注入CsCl 5μmol)、TS—ZD7288组(强直刺激后30 min局部注入ZD7288 100 nmol)及TS—CsCl组(强直刺激后30 min局部注入CsCl 5μmol)。结果如下: ①强直刺激PP可诱导CA3区LTP形成,其后90 min内PS幅值持续升高并稳定在基础幅值的281.8±6.6 %水平,显著高于对照组(97.4±1.8 %)(P 0.01);强直刺激前给予ZD7288、CsCl,LTP的诱导明显被抑制,90 min内PS相对幅值均数分别为89.5±9.4%、62.9±18.0 %,显著低于LTP组(P 0.01)而与对照组无显著差异(P 0.05);但CsCl在30 min后抑制LTP PS幅度增加作用呈减弱趋势。 ②强直刺激PP诱导LTP形成30 min后,给予ZD7288、CsCl, LTP效应被翻转。5 min时PS幅值即明显下降,给药后1h内相对PS幅值均值分别为95.8±6.4 %、64.2±17.7 %均显著低于LTP组(P 0.01),前者与对照组接近(P 0.05)而后者显著低于对照组(P 0.01);随时间延长,CsCl抑制作用逐渐减弱。 ③LTP诱导组大鼠PS起始潜伏期基础值为5.154±0.350 ms,强直刺激后5 min PS起始潜伏期即显著缩短(4.368±0.254 ms,P 0.01),90 min内起始潜伏期均值为4.386±0.029 ms,较强直刺激前平均缩短约0.768 ms;且各记录时间点PS起始潜伏期值均显著小于对照组(all P 0.01)。强直刺激前分别给予ZD7288 100 nmol、CsCl 5μmol, PS起始潜伏期缩短幅度较LTP诱导组小,90 min内较强直刺激前基础值平均缩短约0.332 ms、0.267 ms,各时间点PS起始潜伏期值大于LTP诱导组(P 0.05);而CsCl以20~60 min内作用最为显著。TS—ZD7288组大鼠施与强直刺激后,30 min内PS起始潜伏期较强直刺激前平均缩短约为0.725 ms(P 0.01);30 min时给予ZD7288 100 nmol,强直刺激导致的PS起始潜伏期的缩短效应迅速被抑制,PS起始潜伏期延长达强直刺激前基础值水平而显著大于给药前值(P 0.01),给药后5 min即有明显效应(P 0.01),并可持续稳定60 min;60 min内各时间点PS起始潜伏期值均显著大于LTP诱导组(all P 0.05)而与对照组接近(P 0.05)。强直刺激后30 min给予CsCl 5μmol可产生与ZD7288类似的效应。 ④LTP诱导组大鼠PS峰潜伏期基础值为7.833±0.585 ms,强直刺激后5 min PS起始潜伏期即显著缩短(6.767±0.578 ms,P 0.01),90 min内峰潜伏期均值为6.832±0.107 ms,较强直刺激前平均缩短约1.001 ms;各记录时间点PS峰潜伏期值均显著低于对照组( P 0.05)。强直刺激前给予ZD7288 100 nmol,90 min内PS峰潜伏期平均值较强直刺激前基础值缩短约0.579 ms,缩短幅度小于LTP诱导组(P 0.05);强直刺激前给予CsCl 5μmol,30 min内PS峰潜伏期仍显著缩短,与LTP诱导组比无差异(P 0.05),30 min后PS峰潜伏期逐渐延长与强直刺激前基础值水平接近甚至更长,与对照组比较无显著性差异(P 0.05)。TS—ZD7288组大鼠施加强直刺激后,PS峰潜伏期较强直刺激前(7.291±1.602 ms)显著减小(P 0.01),并持续稳定在6.415±0.006 ms,30 min内平均缩短约为0.876 ms;30 min时给予ZD7288 100 nmol,强直刺激所致的PS峰潜伏期缩短作用迅速被抑制,PS峰潜伏期延长达强直刺激前基础值水平而显著大于给药前值(P 0.01),给药后5 min即产生明显效应(P 0.01),该效应于给药后60 min内可持续稳定维持;强直刺激后30 min给予CsCl 5μmol可产生与ZD7288类似的效应。 ⑤HPLC测定氨基酸含量结果如下:对照组(Control)、LTP诱导组、ZD7288—TS组、CsCl—TS组、TS—ZD7288组及TS—CsCl组大鼠海马组织中谷氨酸含量依次为:138.3±34.3、153.7±35.2、112.6±35.6、99.5±36.6、106.6±30.0及132.7±51.9μmol/g.protein,LTP诱导组谷氨酸水平较对照组呈增加趋势,但无统计学差异;ZD7288—TS组、TS—ZD7288组及CsCl—TS组谷氨酸含量显著低于LTP诱导组(P 0.05);以上各组天冬氨酸含量依次为:96.7±21.0、95.2±31.2、87.3±27.0、70.0±23.0、69.4±15.6及89.2±29.0μmol/g.protein,各组之间天冬氨酸含量无显著差异(P 0.05);以上各组甘氨酸含量依次为:113.4±40.5、60.1±17.4、105.6±44.5、62.7±19.8、91.8±39.6及88.1±31.7μmol/g.protein,LTP诱导组甘氨酸含量显著低于对照组(P 0.01),而ZD7288—TS组甘氨酸含量较LTP诱导组增加(P 0.05)而与对照组接近(P 0.05);各组GABA含量依次为:206.4±65.4、119.3±30.6、189.6±48.1、176.3±40.0、171.7±10.9及200.6±26.7μmol/g.protein , LTP诱导组GABA含量显著低于对照组(P 0.01), ZD7288—TS组、CsCl—TS组、TS—ZD7288组及TS—CsCl组GABA含量较LTP诱导组显著增加(P 0.05 or P 0.01)。 ⑥对照组大鼠海马CA3区突触结构以突触连接面为平直型的突触较为多见,也可见少数凸面突触,突触前膜和突触后膜清晰,突触间隙清楚,突触前终末端聚集较多圆形的突触囊泡,突触前膜胞浆面附有少数锥形雾样致密物质即突触前致密突起(presynaptic dense projection),突触后膜胞浆面有一层浓密的电子致密物质附着即突触后致密物(postsynaptic membrance density, PSD)。LTP诱导组可见平直型突触数目明显增加,同一神经元轴突可与其他同一神经元或多个神经元形成多个突触联系即突触小球形成,突触前胞浆内可见突触囊泡聚集,显示囊泡的轴浆运输活跃;突触后致密物较对照组显著增厚,突触间歇变模糊,似有雾状物存在;凸面突触多见,突触前终末端可见大量圆形囊泡聚集成葡萄串状,突触间歇变模糊,突触后致密物亦明显增厚。与LTP诱导组比较,透射电镜视野下ZD7288—TS组大鼠海马CA3区突触数目减少,可发现较少的平直型突触及凸面突触,未发现突触小球,突触后致密物变薄,突触前囊泡数目减少,轴浆运输受抑制,突触间歇变清晰;CsCl—TS组突触结构呈现与ZD7288—TS组类似变化。 第三部分HCN通道对培养海马神经元氨基酸释放及谷氨酸引起的钙内流的影响 在细胞水平,研究HCN通道对体外培养海马神经元氨基酸释放以及谷氨酸所致钙内流的影响。结果如下: ①正常细胞对照组、cAMP 5μM、50μM组、ZD7288 5μM及50μM组细胞外液谷氨酸含量依次为99.2+17.7、136.1±25.7、188.1±47.7、31.4±7.1及4.4±1.0μmol/L,天冬氨酸含量依次为0.181±0.0517、0.190±0.0884、0.214±0.1243、0.203±0.0905及0.288±0.0747μmol/L,甘氨酸含量依次为13.01±4.32、265.1±37.1、397.8±50.7、3.20±1.56及1.65±0.94μmol/L,GABA含量依次为3.256±0.2925、3.061±0.322,3.227±0.422,0.852±0.297及0.297±0.052μmol/L,显示cAMP可显著增加海马神经元细胞外液中谷氨酸及甘氨酸含量并随剂量增大,作用增强(P 0.01);对天冬氨酸及GABA含量则无显著影响。ZD7288可使谷氨酸及GABA水平下降并呈现量效关系(P 0.01);同时降低细胞外液中甘氨酸水平(P 0.01),对天冬氨酸含量无显著影响。 ②海马神经元置于标准外液中,向细胞灌流槽内加入谷氨酸50μM时,数秒内可引起F340/380荧光比值显著增加,并迅速出现尖锐高耸的钙峰,此后较长时间维持在一稳态高钙水平,给药后钙增加率为78.01±10.32%;换为无钙外液时,比值则无明显影响。表明谷氨酸引起培养海马神经元[Ca2+]i上升过程中,细胞外Ca2+的大量内流起着主导作用。 ③海马神经元置于标准外液中,荧光值稳定后,分别加入终浓度为25μM、50μM、100μM ZD7288,孵育20 min后荧光值无明显变化; ZD7288分别25μM、50μM、100μM孵育20 min后再加入谷氨酸50μM(终浓度);发现F340/380荧光比值增加较谷氨酸50μM处理组显著降低,钙峰出现缓慢而低平;对应的钙荧光增加率分别为59.22±8.72%,41.35±7.25%,21.01±4.41%,各组之间有显著差异(P 0.01),表明ZD7288可剂量依赖性抑制谷氨酸诱导的细胞内钙增加。 ④海马神经元置于标准外液中,荧光值稳定后,分别加入终浓度为5μM,50μM cAMP孵育5 min后再加入谷氨酸50μM(终浓度),F340/380荧光比值迅速增加且高于谷氨酸50μM处理组(P 0.01),并在较长时间内维持在较高的水平;对应的钙荧光增加率分别为101.33±9.89,125.36±11.04%(P 0.01);50μM ZD7288孵育20 min后,加入50μM cAMP, F340/380荧光比值增加幅度、钙峰出现的时间和形状与仅加入谷氨酸50μM时相近,钙荧光增加率为86.23±10.53%,与谷氨酸50μM处理组无显著差异(P 0.05),表明HCN通道对谷氨酸诱导钙内流具有调节作用。 结论 1 HCN通道参与PP—海马CA3区通路正常低频突触传递过程,其机制可能与其对氨基酸类神经递质释放的调节有关。 2 HCN通道参与PP—海马CA3区突触通路LTP的诱导和形成,其机制可能为: ①促进突触前谷氨酸的释放而抑制GABA及甘氨酸的释放 ②促进谷氨酸引起的突触后细胞内钙的增加 ③调节突触前、后超微结构的改变。


知网文化
【相似文献】
中国期刊全文数据库 前20条
1 丁燕;魏欣冰;韩玉霞;丁华;;辛伐他汀对谷氨酸损伤的大鼠海马组织中AMPA受体GluR2表达的影响[J];山东大学学报(医学版);2009年05期
2 王佐周;岳春丽;杨菁;;梓醇对谷氨酸诱导SD大鼠海马神经元损伤的保护作用[J];解剖科学进展;2011年02期
3 王丽君;郭芳;;灯盏花素含药血清对谷氨酸致原代海马神经元损伤的影响[J];现代生物医学进展;2010年03期
4 盛慧;马蓓;闾坚强;孙婷婷;倪鑫;;促肾上腺皮质激素释放激素对原代培养海马神经元谷氨酸诱发电流的调节作用[J];第二军医大学学报;2009年03期
5 徐静;孙长凯;马辉;王禄;张健;张玉梅;吴兰香;;银杏叶提取物及银杏内酯B对体外培养大鼠神经元损伤的保护作用比较[J];中国中药杂志;2010年01期
6 姚志彬;陈以慈;邝国壁;叶鹿鸣;;~3H-GABA和~3H-Glu在海马的摄取及其衰老性变化[J];神经解剖学杂志;1989年02期
7 刘新旻;王大斌;邹典定;明萌;;线粒体膜电位与托吡酯神经保护作用的关系[J];实用儿科临床杂志;2006年12期
8 年阿兴;杨静;李天佐;张炳熙;;不同浓度谷氨酸对海马神经元损伤及异丙酚的保护机制[J];北京医学;2006年11期
9 张敏;闵羡蕙;;缺氧及谷氨酸对大鼠海马神经元NMDA通道的影响[J];山西医科大学学报;2007年11期
10 潘际刚;潘贵书;徐国强;李淑芳;梁文妹;;海洛因使大鼠背侧海马功能和Glu/GABA递质系统紊乱[J];中国药理学通报;2009年05期
11 姜海英;杨庆华;李迎军;崔桂玉;金元哲;金清华;;室旁核内部分氨基酸类神经递质在压力感受性反射过程中的变化[J];中国现代医学杂志;2007年23期
12 胡书群;纵艳艳;张光毅;;PSD-95结构域PDZ1过表达拮抗缺氧缺糖诱导的海马神经元凋亡[J];生理学报;2008年06期
13 胡艳丽;张梅;吴越;杨德林;;高效液相色谱法测定小鼠、大鼠脑内四种氨基酸的含量[J];石河子大学学报(自然科学版);2005年06期
14 刘悦;房玉兰;;HPLC法测定谷丙甘氨酸胶囊中3组分含量[J];黑龙江科技信息;2007年11期
15 魏丽;彭瑞云;王丽峰;高亚兵;王水明;马俊杰;王德文;邱萍;徐天昊;杨国山;;高功率微波辐射对大鼠海马神经元突触超微结构及氨基酸类神经递质含量的影响[J];中华劳动卫生职业病杂志;2006年04期
16 李伟荣;陈瑞玉;黄天来;许庆文;宓穗卿;王宁生;;天然冰片对小鼠脑内氨基酸类神经递质含量的影响[J];中药新药与临床药理;2011年02期
17 田闪;胡永善;;损伤脑功能重建的基础研究进展[J];中国康复医学杂志;2010年03期
18 曾可斌,胡长林,陈阳美;谷氨酸对原代培养海马神经元的兴奋特性[J];中国应用生理学杂志;2005年04期
19 刘新旻;邹典定;王大斌;明萌;刘志祥;;海马神经元兴奋性毒性模型的建立及其意义[J];卒中与神经疾病;2006年03期
20 吕有文;张鹏;侯霞;颜学军;;黄芩素甙对脑缺血后大鼠海马组织兴奋性氨基酸含量的影响[J];实用临床医学;2009年07期
中国重要会议论文全文数据库 前10条
1 杨敬华;蔡原;刘秋芳;张立丰;齐鸣;巫生文;鲁帅;;氯化镧对大鼠学习记忆以及海马神经元、神经突触超微结构的影响[A];中国环境诱变剂学会第14届学术交流会议论文集[C];2009年
2 郑敏;郭莲军;何治;吕青;徐旭林;陈建国;;特异性HCN通道阻断药ZD7288对培养海马神经元谷氨酸所致钙内流的影响[A];中国药理学会第九次全国会员代表大会暨全国药理学术会议论文集[C];2007年
3 郭直岳;王亚丽;李晓娟;路承彪;;原代培养大鼠海马神经元谷氨酸受体介导钙信号的发育调控[A];中南地区第八届生理学学术大会论文摘要汇编[C];2012年
4 程龙珍;汪萌芽;;新生大鼠脊髓切片运动神经元的谷氨酸反应及全麻药的影响[A];2005年中国神经心理学学术会议论文集[C];2005年
5 黄哲甦;隋玉荣;李海生;;异硫氰酸苯酯柱前衍生法测定安尿通中3种氨基酸含量[A];'2004天津市第十六届色谱学术交流会论文集[C];2004年
6 郑敏;徐旭林;胡还忠;宗贤刚;郭莲军;;超极化激活环核苷酸门控阳离子通道(HCN)对大鼠海马CA3区突触传递及氨基酸含量的调节作用[A];中国神经科学学会第六届学术会议暨学会成立十周年庆祝大会论文摘要汇编[C];2005年
7 王伟;张陆勇;尚靖;;驱虫斑鸠菊总黄酮对海马神经元NMDA受体的调控作用研究[A];第十届全国生化与分子药理学术会议论文摘要汇编[C];2007年
8 郑俩燕;许荣华;倪志;姚茂忠;蔡美华;王琰;陈志斌;;Aβ肽损伤原代培养海马神经元COX-2的表达及其意义[A];中华医学会第十三次全国神经病学学术会议论文汇编[C];2010年
9 马东亮;任惠民;胡海涛;刘勇;刘朝晖;杨广笑;;hBDNF重组腺伴随病毒载体制备及在原代培养鼠海马神经元中的表达[A];解剖学杂志——中国解剖学会2002年年会文摘汇编[C];2002年
10 蔡桂兰;贾建平;;轻度认知障碍和阿尔茨海默病患者血清中兴奋性氨基酸含量的研究[A];第九次全国神经病学学术大会论文汇编[C];2006年
中国博士学位论文全文数据库 前10条
1 郑敏;超极化激活环核苷酸门控(HCN)阳离子通道对大鼠海马突触传递功能及机制研究[D];华中科技大学;2006年
2 段开明;异氟烷对成龄和老龄大鼠海马蛋白质组影响的差异性研究[D];中南大学;2007年
3 彭华;REM睡眠剥夺对大鼠空间记忆的影响机制及莫达非尼的干预[D];第二军医大学;2008年
4 吴兰香;银杏叶提取物EGb761抗谷氨酸兴奋毒性作用与Snk-SPAR途径的相关性研究[D];大连医科大学;2007年
5 林毅勇;急性缺氧对大鼠海马神经元NMDA诱发电流的影响及GDNF作用机制的研究[D];第二军医大学;2003年
6 简葵欢;一氧化氮对培养大鼠海马神经元L型钙通道的调控及其机制[D];第一军医大学;2005年
7 刘跃;烟碱样乙酰胆碱受体的药理学研究[D];中国人民解放军军事医学科学院;2004年
8 王冰;丁苯酞对血管性痴呆小鼠海马神经元谷氨酸受体及钙信号转导机制的作用研究[D];河北医科大学;2008年
9 刘宇炜;Bis(7)-tacrine对NMDA受体的作用及其机制研究[D];华中科技大学;2007年
10 陈霞;红景天苷对神经元损伤的保护作用及机制的研究[D];苏州大学;2009年
中国硕士学位论文全文数据库 前10条
1 杨润生;葛根素对大鼠边缘系统海马组织CA1区神经元的电生理影响[D];广西师范大学;2007年
2 陶红蕾;丙泊酚对大鼠学习记忆的影响[D];广西医科大学;2007年
3 包志军;川芎嗪对谷氨酸损伤海马神经元保护作用的研究[D];苏州大学;2009年
4 王颖;半通道开放对缺血再灌注海马神经元活性的影响[D];浙江大学;2007年
5 陈猛;星形胶质细胞抗兴奋毒性作用和淀粉样蛋白前体蛋白、早老素1表达水平相关性的研究[D];大连医科大学;2008年
6 刘秀丽;基于GFP的FRET监测树突棘钙动力学[D];华中科技大学;2005年
7 陈志斌;氯胺酮对SD幼鼠海马神经元突触素、GAP-43的影响[D];第三军医大学;2005年
8 任爱兵;免疫介导的运动神经元损伤模型中血清和脑脊液氨基酸的测定[D];河北医科大学;2006年
9 鄂晓;海马神经元之间的大分子通讯[D];中国人民解放军军事医学科学院;2010年
10 朱叶芳;芍药苷对胆红素诱导海马神经元凋亡及NF-κB活性的影响[D];重庆医科大学;2011年
中国重要报纸全文数据库 前10条
1 梁诚;甘氨酸市场火热背后暗藏危机[N];中国高新技术产业导报;2008年
2 梁诚;甘氨酸市场火暴中暗藏危机[N];中国化工报;2008年
3 本报记者 吴敏;甘氨酸价格波动 渝三峡高股价遇大考[N];证券日报;2008年
4 姚伟;渝三峡A“1号机密”调查:两头受压下的艰难突围[N];21世纪经济报道;2008年
5 徐红;东华集团甘氨酸建设向下游靠拢[N];中国化工报;2008年
6 陈传武;聚γ——谷氨酸增效剂通过专家鉴定[N];农资导报;2008年
7 邓勇;渝三峡 盈利结构发生质变[N];中国证券报;2007年
8 记者 蒋杰升;甘氨酸滥用暴露监管漏洞[N];民营经济报;2006年
9 本报记者 杨宏辉;甘氨酸废副产品有望全面获利用[N];中国化工报;2007年
10 本报记者 杨宏辉;甘氨酸废副产品有望全面利用[N];农资导报;2007年
 快捷付款方式  订购知网充值卡  订购热线  帮助中心
  • 400-819-9993
  • 010-62982499
  • 010-62783978