收藏本站
收藏 | 手机打开
二维码
手机客户端打开本文

大鼠骨髓间充质干细胞侧脑室植入对SAH后CVS大鼠的影响

李朝晖  
【摘要】: 一、大鼠骨髓间充质干细胞的分离、培养、鉴定及神经元条件培养基对其定向诱导分化 目的:掌握骨髓间充质干细胞(Bone Marrow Mesenchymal Stem cells, BMSCs)原代和传代培养方法,并对其进行鉴定,探讨应用海马神经元条件培养基对其进行定向诱导分化。 方法:体质量(125±25)g SD大鼠,取股骨、胫骨,骨髓腔用DMEM培养基冲出骨髓于离心管中,吹打制成单细胞悬液。接种于培养瓶中,37℃,5% CO2培养箱中培养。取P5细胞爬片多聚甲醛固定,加一抗(兔抗大鼠CD44、CD34),生物素化二抗,37℃孵育1 h,DAB染色,酒精脱水、二甲苯透明,中性树胶封片、显微镜下观察。取原代培养的海马神经元培养液,作为海马神经元条件培养基。另外一组加入碱性成纤维细胞生长因子(Basic-Fibroblast Growth Factor, b-FGF)和10%二甲基亚枫(Dimethl Sulfoxide, DMSO)无血清培养基,最后一组以神经元培养基(Neurobasal加B27)作为神经元基础培养基阳性对照,阴性对照为原培养基(DMEM加10% FBS)继续培养。第5代(Passage 5, P5)BMSCs接种在放有盖玻片的6孔培养板里,爬片后换为基础培养基,海马神经元培养基和无血清培养基(含b-FGF和10%DMSO的无血清L-DMEM培养基)进行诱导,分别将诱导12 h和1 d的细胞用4%多聚甲醛固定。加入小鼠抗大鼠微管相关蛋白(Microtubula association protein-2, MAP-2),兔抗鼠神经元特异性烯醇化酶(Neurospecific enolase, NSE)及兔抗鼠胶质纤维酸性蛋白(Glia fibrillary acidic protein, GFAP)一抗。光镜下观察MAP-2、NSE和GFAP表达阳性细胞,计数阳性细胞百分率并进行显微摄影。 结果:大鼠BMSCs原代培养,半量换液,悬浮的杂质细胞被清除,贴壁细胞的形态清晰可见并开始迅速增殖。7~9 d左右细胞可长满培养瓶底。大鼠BMSCs传代培养生长较原代快,5~7 d细胞达90%融合。H-E染色BMSCs表现为细胞核大,圆形,居中深染,嗜碱性;胞质着色浅,呈弱嗜酸性,细胞平行排列。兔抗大鼠CD34,CD44免疫细胞染色,BMSCs为CD34染色阴性细胞,而CD44表达阳性,这些CD44阳性细胞胞核和胞浆呈棕褐色。海马神经元条件培养液、b-FGF的无血清培养基和含B27的Neurobasal培养基对P5的BMSCs诱导12 h和1 d后,诱导后细胞体逐渐变成圆形和锥形,细胞向外伸出突起。随着时间延长,突起也逐渐延长,1 d后可见有些连接形成网状。诱导后的BMSCs免疫细胞化学染色,神经类标记物MAP-2,NSE和GFAP进行标记,计数细胞阳性率,以12 h后海马神经元条件培养基的诱导阳性率最高。 结论:1应用全骨髓结合贴壁分离法成功建立了一种体外简单、快速的大鼠BMSCs原代及传代培养方法,在体外能够进行迅速增殖,且性状稳定。2体外培养的BMSCs经免疫细胞化学染色,表达间充质干细胞表面标记,证明非造血干细胞。3应用含b-FGF的DMEM培养基、海马神经元条件培养基、无血清培养基诱导BMSCs 12 h与1 d,BMSCs均可分化成为神经元样细胞和神经胶质样细胞,经免疫细胞化学染色均表达NSE、MAP-2和GFAP。4三种培养基诱导BMSCs,以12 h的诱导率最高,可达到44.78%,其中海马神经元条件培养基的诱导效率高于其它两组,差异有显著性。 二、大鼠SAH后CVS模型制备及行为学、生物学指标测定 目的:大鼠自体血枕大池二次注血法制造蛛网膜下隙出血(Subarachnoid Hemorrhage, SAH)后脑血管痉挛(Cerebro Vascular Spasm, CVS)的动物模型,测定血和脑组织中一氧化氮合酶(Nitric Oxide synthesis, NOS)及内皮素-1(Endotheliam-1, ET-1)含量的变化,测量脑血管痉挛后的血管直径,结合行为学改变对脑血管痉挛动物模型进行评定。 方法:枕大池二次注血法建立蛛网膜下隙出血模型,尾动脉取血,脑立体定位仪下环枕膜处自体动脉血约5 min注完,于2 d后再次同样的方法二次注血。手术后大鼠参照神经功能等级评分表评定,在1 d、2 d、3 d、5 d、7 d对SAH和对照组大鼠分别评分。10%印度墨水血管灌注,45倍体视显微镜下,应用Nikon NIS-Elements BR 3.0和Image J图像分析系统,测量基底动脉、颈内动脉和大脑中动脉直径。另外应用同样灌注技术,海马组织切片于前囱后4 mm处切开,体视显微镜放大评价微血管充盈状态。于SAH成功后1 d、2 d、3 d、5 d及7 d时间取血,分离海马及皮层组织,取组织上清液测定血清及脑组织匀浆中NOS、ET-1含量。注射血液结束后14 d,进行Morris水迷宫测试。所有数据均用±s表示,应用SPSS14.0软件包进行分析,对照组和实验组间比较用Dunnett-t检验,组间比较用SNK-q检验,神经生物功能评分和脑血管直径,NOS和ET-1含量进行多元线性回归,Morris水迷宫中的平均潜伏时间和NOS、ET-1含量及脑血管直径的关系也进行多元线性回归。 结果:大鼠SAH后警觉性低,毛发杂乱,饮水摄食行为差,自洁性差,于次日后稍好转,但二次注血后加重,少数可出现偏瘫。术后脑内有血凝块,主要位于小脑延髓池内,1 d可见有陈旧性血液。在海马(前囟后4 mm)切片处可见大脑皮层血管在SAH组血管较少,血管变细。测量大脑中动脉,基底动脉和颈内动脉直径,在SAH组2 d和3 d组血管直径与生理盐水和对照组相比有明显差异(P0.05)。SAH大鼠在1 d、2 d、3 d、5 d、7 d可见神经功能评分明显增高,与对照组、生理盐水组相比有明显的统计学差异(P0.01)。SAH后1 d、2 d、3 d、5 d、7 d组脑组织和血液中ET-1均高于对照组和生理盐水组(P0.05)。进行神经生物功能评分与脑血管直径、NOS和ET-1含量分析,建立回归方程为:Y=-3.586+0.059X1-0.55 X2,X1为血中ET-1的含量,X2为大脑中动脉的直径,可见神经生物功能评分与血中ET-1的含量呈正相关,与大脑中动脉的直径呈负相关,血中ET-1和大脑中动脉相比对神经生物学功能评分的密切程度没有明显统计学差异(P0.05)。SAH组Morris水迷宫游泳距离明显增长,逃避潜伏期时间较长。在随后的几天实验中各组逃避潜伏期时间逐渐缩短,SAH组成绩虽有提高,但其逃避潜伏期始终维持在较高水平,平均潜伏期与血中ET-1含量呈正相关。SAH组大鼠跨越平台次数明显少于对照组。 结论:1大鼠自体尾动脉取血枕大池二次注血后,可见各脑池脑沟内有明显的陈旧血凝块聚积,说明蛛网膜下隙出血模型成功。2大鼠脑血管管径测量显示SAH血管变细,血管灌注显示有脑血管灌注不足,证明SAH后有脑血管痉挛的缺血表现。3 SAH组血和脑内NOS含量低于对照组, ET-1含量升高,表明SAH后有脑血管痉挛。4 SAH组神经生物学功能评分均明显高于其它组,证明脑血管痉挛后有行为学表现功能下降。5 Morris水迷宫测试表明SAH后大鼠的空间学习记忆能力有一定下降。 三、BrdU标记的BMSCs侧脑室植入后对SAH后CVS大鼠行为学影响的研究 目的:通过BMSCs侧脑室植入SAH后CVS大鼠,观察标记的BMSCs在大鼠脑内生长情况,结合行为学检测评价BMSCs植入后效果。 方法:第5代BMSCs,用5-溴脱氧尿核苷(Bromodeoxyuridine, BrdU)标记2 d。将标记后的细胞爬片进行免疫细胞化学染色,一抗为BrdU抗体。标记好的细胞以5×106的细胞悬液侧脑室注入SAH后的大鼠。SAH大鼠以其神经功能评分为参照,随机分为三组:SAH组、SAH后植入DMEM组和SAH后BMSCs植入组。SAH组不植入干细胞,而DMEM组于第二次注血2 d后立体定向仪下用微量注射器注入30μLDMEM培养基。BMSCs组在第二次注血后2 d立体定位仪下注入30μL的BMSCs悬液。BMSCs组中5只大鼠于14 d后进行Morris水迷宫检测,另外5只取脑进行免疫组化染色。脑立体定位仪下大鼠侧脑室穿刺取前囟定位,前囟后1.2 mm,中线旁2 mm处进针,接上已事先抽好BMSCs悬液或是DMEM的微量注射器,深度为4.5 mm,将30μL BMSCs悬液或DMEM培养基缓慢注入侧脑室。各组大鼠在注射后14 d麻醉,固定取脑,切片,进行免疫组化染色,H2O2灭活内源性酶,加入抗原修复液,生物微波炉加热抗原修复,滴加5% BSA封闭液,一抗(小鼠抗BrdU IgG),37℃1 h,生物素化二抗,37℃20 min,DAB染色,脱水透明,中性树胶封片。SAH组及DMEM组、BMSCs组1 d、2 d、3 d、5 d、7 d后行神经生物学功能评分,于14 d后进行水迷宫检测。 结果:BrdU标记后BMSCs,经免疫细胞化学染色为胞核着色,以胞核呈棕黄色者为阳性。脑立体定位仪下行侧脑室穿刺,以前囟定位,能准确注入侧脑室。SAH大鼠侧脑室穿刺注入干细胞悬液后无不良反应。脑石蜡切片DAB染色后,可见经BrdU标记的阳性细胞胞核呈棕褐色,阳性细胞在切片内无明显规律,散在分布于阴性细胞之间。DMEM组可见阴性细胞核仍呈蓝色。将SAH组、DMEM组及BMSCs组大鼠于注射后1 d、2 d、3 d、5 d、7 d进行神经生物功能评分,无论是SAH组还是DMEM、BMSCs组可见,在各组里以1 d神经生物学功能评分普遍高于其它组(P0.05),以后评分逐渐下降,BMSCs组大鼠在7 d时与DMEM和SAH组相比,神经生物功能评分明显减低,感觉运动功能恢复(P0.05)。Morris水迷宫检测BMSCs组大鼠平均逃避潜伏期时间比SAH组和DMEM组要短,有统计学差异,探索实验显示BMSCs组跨越平台的次数多于其它两组,差异有明显统计学意义(P0.05)。 结论:1 BrdU可以用来标记BMSCs,标记后的细胞可用相应的抗体检测。2脑立体定位仪下以前囟后1.2 mm,中线旁2 mm处进针,深度为4.5 mm的位置能准确注入侧脑室,注射后大鼠未见明显不良反应。3注入BrdU标记过的BMSCs后,取前囟后4 mm的海马组织切片免疫组化染色显示有BrdU阳性细胞存在。4生物学功能评分可见BMSCs组在7 d时评分下降,表明感觉和运动功能有一定程度的恢复。5 Morris水迷宫显示BMSCs组在学习记忆能力方面也有一定的改善。 四、SAH后CVS大鼠移植BMSCs后海马神经元凋亡的研究 目的:大鼠SAH后CVS模型基础上植入BMSCs,大鼠感觉、运动功能有一定程度的恢复,进一步观察BMSCs植入后对大鼠脑内海马神经元凋亡相关蛋白Bcl-2和Bax表达的影响。 方法:在第三部分大鼠脑组织切片基础之上,取SAH组、DMEM组和BMSCs组14 d前囟后4 mm处大脑皮层及海马组织石蜡切片,以兔抗鼠Bcl-2和Bax为一抗,进行免疫组织化学染色。图像分析软件分析阳性细胞数目比率。无菌条件下取SAH及BMSCs14 d组大脑,剥出海马,按每100 mg脑组织加入1 mL裂解液,超声裂解后低温离心,取上清,考马斯亮兰测定蛋白含量,蛋白变性后上样,电泳、转硝酸纤维素膜(NC膜),脱脂奶粉封闭,分别加入兔抗大鼠Bcl-2、Bax一抗,4℃静置过夜。滴加辣根过氧化物酶标记二抗,免疫化学发光,X光片显影定影。使用Hema成像分析系统对显色条带进行半定量分析,测定各组蛋白相对表达水平。 结果:与SAH组相比,BMSCs组海马可见Bcl-2阳性细胞数目增加,细胞呈黄褐色,深染;Bax阳性细胞数目减少,着色较浅。SAH组大鼠海马可见Bcl-2阳性细胞数目较少,着色浅;相反Bax阳性细胞数目增加,细胞呈棕褐色较深。DMEM组可见Bax阳性细胞数目增加,而Bcl-2阳性细胞数目相对减低。Western blot显示,DMEM组、SAH组和BMSCs组大鼠海马GAPDH表达三组基本相似,Bcl-2在BMSCs组比DMEM组和SAH组表达高(P0.05)。Bax的表达在SAH组与DMEM组高于BMSCs组,相比有明显统计学差异(P0.05)。 结论:1 SAH后CVS模型大鼠侧脑室植入BMSCs后,大脑皮层和海马内可见神经元抑制凋亡相关基因表达增加,而促凋亡相关基因表达下降。2 SAH组14 d大鼠脑内促凋亡相关基因表达升高,抑制凋亡相关基因表达下降。3 DMEM组大鼠脑内仅有少量的抑制凋亡相关基因表达,促凋亡相关基因表达较高。 五、SAH后CVS大鼠侧脑室植入BMSCs脑血管超微结构观察与血中NOS、ET-1含量变化 目的:观察SAH后CVS大鼠侧脑室植入BMSCs后血中一氧化氮合酶、内皮素-1含量变化,同时透射电镜观察大鼠脑内血管和神经元超微结构改变,为细胞移植治疗提供理论和实验依据。 方法:实验动物分组、SAH模型制备及BMSCs移植同前面几部分,分为正常对照组、SAH组及BMSCs组。于移植BMSCs后1 d、3 d、7 d进行取血,测定大鼠血中NOS和ET-1含量,具体方法同前面第二部分。同时取前囟后4 mm大脑皮层脑组织约1 mm×1 mm×2 mm大小,用2.5%戊二醛磷酸盐缓冲液中后固定1 d,备透射电镜检查。将标本用0.1 M磷酸缓冲液洗3次,质量分数为1%锇酸固定,逐级梯度乙醇、丙酮脱水,环氧树脂812包埋,聚合,用超薄切片机作0.5μm厚度切片,经1%甲苯胺蓝-天青II染色,光镜下定位后制作超薄切片,片厚约50 nm,铜网捞片,醋酸铀、柠檬酸铅液染色。日立H-7500型透射电镜观察各组大鼠大脑皮层神经元及微血管的超微结构,照相,记录。组间比较采用单因素方差分析,各组间两两比较采用SNK-q检验,P0.05表示差异有统计学意义。 结果:与对照组相比,SAH组后1 d、3 d、7 d血中NOS含量明显下降,而血中ET-1含量则明显上升,其中以SAH 3 d组血中ET-1升高最为明显,差异有统计学意义。与SAH组相比,BMSCs组可见血液中ET-1含量逐渐下降,而NOS含量上升,差异有统计学意义。与正常组相比,BMSCs组ET-1含量仍然较高,差异有明显统计学意义(P0.05),血中NOS含量有一定下降,与对照组相比不能说明有差异(P0.1)。透射电镜显示,对照组神经元细胞核大而圆,染色质密度均匀,核仁明显,核膜完整。大脑皮层毛细血管可见其内皮细胞内膜光滑,细胞核、细胞器、紧密连接清晰可见,内皮细胞的基质和基膜完整,层次清楚,管腔无狭窄。SAH组可见大脑皮层神经元和微血管内皮细胞的水肿程度达到高峰,神经元高度水肿,线粒体肿胀,可见部分凋亡、坏死神经元。BMSCs组大脑皮层神经元和微血管内皮细胞可见轻度水肿,血管内皮细胞的吞饮小泡略减少。微血管内皮细胞核固缩,管腔内微绒毛减少,管腔狭窄有一定缓解。 结论:1 SAH后CVS大鼠侧脑室移植BMSCs后ET-1下降,NOS含量升高。说明脑血管痉挛有一定程度的缓解。2脑组织及血管超微结构观察,SAH组大脑皮层神经元坏死加重,部分微血管闭塞。BMSCs移植后神经元的凋亡与死亡减少,微血管闭塞有一定的缓解。


知网文化
【相似文献】
中国期刊全文数据库 前20条
1 李新立,夏强,刘群才;蛛网膜下腔出血并发肺部感染的防治[J];实用医药杂志;2002年06期
2 纪列伟;黄旭;;蛛网膜下腔出血并发脑血管痉挛的防治[J];河北医学;2009年01期
3 周雪珍,钟宁,黄如训;蛛网膜下腔出血并发血糖增高的临床分析[J];卒中与神经疾病;2001年04期
4 张泽兰,谭华,陈秀,甘西伦;蛛网膜下腔出血与内皮素和降钙基因相关肽的关系研究[J];中国现代医学杂志;2000年12期
5 刘昭鸿;19例老年人蛛网膜下腔出血(SAH)临床分析[J];四川省卫生管理干部学院学报;2003年01期
6 陈果;马颖;程远;陈维福;谢宗义;朱凤军;;蛛网膜下腔出血后S100B蛋白表达增加与脑血管痉挛有关[J];第三军医大学学报;2008年18期
7 王道强,杨秋莲,杨凤梅;尼莫地平对蛛网膜下腔出血后脑血管并发症的防治71例观察[J];菏泽医专学报;1998年04期
8 魏树亭,李彤,袁彬;地塞米松不同途径给药治疗蛛网膜下腔出血性头痛[J];中国康复;2002年04期
9 宋献文;沈培芝;石印玉;;补肾中药密骨片对骨质疏松大鼠骨骼和内分泌的影响[J];中国中西医结合杂志;1998年S1期
10 李东良,郭红哲,杨才生,黄爱琼,陈紫榕;大鼠酒精性肝损伤模型的建立及病理学观察[J];中西医结合肝病杂志;2000年02期
11 温进坤,韩梅,杜玮南,高社军;一种快速建立大鼠动脉粥样硬化模型的实验方法[J];中国老年学杂志;2001年01期
12 曹廷兵,闫振成,沈成义,王利娟,聂海,钟健,祝之明;代谢综合征大鼠模型的建立及其相关基因表达变化的研究[J];解放军医学杂志;2005年08期
13 柴可夫,柴瑞,王亚丽;糖肾汤对糖尿病大鼠肾损伤的保护作用[J];浙江中西医结合杂志;2005年09期
14 陈敏,王玮,林海,陈燕惠,陈达光;早期干预与TrkA受体在脑损伤修复中的作用[J];解剖学杂志;2005年05期
15 商秀丽,徐万鹏,刘云会,杨金霞,张化,薛一雪;阿尔茨海默病大鼠模型海马MAPK的表达(英文)[J];神经科学通报;2005年04期
16 樊双义,谌小维,樊宏孝,张春青,吴毅,薛丽,郑健,胡志安;长时连续作业对大鼠觉醒能力的损害作用[J];第三军医大学学报;2005年21期
17 李达兵;唐军;范晓棠;宋敏;徐海伟;周光纪;白云;;PS1/APP双转基因AD模型小鼠与Aβ_(1-40)海马注射AD模型大鼠的组织病理学比较[J];第三军医大学学报;2006年16期
18 王磊;曾水林;朱建宝;李涛;;帕金森病大鼠海马区增殖神经干细胞分化情况的研究[J];临床神经病学杂志;2006年04期
19 陈晓宇;张荣宜;沈韶辉;齐威琴;韩卉;;帕金森病模型大鼠中脑腹侧被盖区多巴胺能神经元改变的实验研究[J];中国临床解剖学杂志;2006年04期
20 许钒;戴敏;汪电雷;;肝纤愈对免疫性肝纤维化大鼠胶原代谢水平的影响[J];北京中医药大学学报;2006年07期
中国重要会议论文全文数据库 前10条
1 毛伯镛;;自发性蛛网膜下腔出血[A];中国医师协会神经外科医师分会第六届全国代表大会论文汇编[C];2011年
2 褚正民;周海航;金成胜;沈建国;王翊飞;王耿焕;褚闻来;张李涛;;自发性蛛网膜下腔出血的诊治[A];2011年浙江省神经外科学学术年会论文汇编[C];2011年
3 刘超;闵苏;孙善全;;在内毒素脑损伤大鼠模型中内毒素剂量和作用时间对脑红蛋白表达变化的影响[A];第七届全国创伤学术会议暨2009海峡两岸创伤医学论坛论文汇编[C];2009年
4 常越;张建中;;高血糖大鼠脑缺血再灌注海马CA3区神经元中胞浆磷脂酶A2表达的上调[A];第八届海峡两岸心血管科学研讨会论文集[C];2011年
5 赵小贞;林清;林凌;王玮;;拟痴呆大鼠海马线粒体膜电位、细胞色素C和Bax蛋白的变化[A];中国解剖学会2011年年会论文文摘汇编[C];2011年
6 牛朝诗;杨艳艳;;泛素连接酶hHrd1在帕金森病大鼠模型中脑的表达及其意义[A];中国医师协会神经外科医师分会第二届全国代表大会论文汇编[C];2007年
7 桂定坤;顾勇;彭艾;林善锬;;黄芪水提物对阿霉素肾病大鼠ANP抵抗的改善作用[A];2007年浙沪两地肾脏病学术年会资料汇编[C];2007年
8 马曦;韩鹏飞;李德发;;大鼠模型研究α-硫辛酸对大豆抗原glycinin致敏的影响[A];中国畜牧兽医学会动物营养学分会第十次学术研讨会论文集[C];2008年
9 杨礼腾;刘欣;程德云;方洵;穆茂;胡晓波;聂莉;;迷迭香二萜芬提取物调控大鼠肺损伤间质过度修复的作用[A];中华医学会呼吸病学年会——2011(第十二次全国呼吸病学学术会议)论文汇编[C];2011年
10 韩纪昌;李红兵;张逸捷;李四红;王伯章;;阿魏酸钠对慢性低氧大鼠肺动脉压的影响及机理研究[A];中华医学会呼吸病学年会——2011(第十二次全国呼吸病学学术会议)论文汇编[C];2011年
中国博士学位论文全文数据库 前10条
1 李朝晖;大鼠骨髓间充质干细胞侧脑室植入对SAH后CVS大鼠的影响[D];河北医科大学;2010年
2 陈笛;藁苯内酯对大鼠蛛网膜下腔出血的神经保护作用及其机制的研究[D];重庆医科大学;2011年
3 孟雷;破裂性颅内复杂动脉瘤的临床研究及SAH并发远隔脏器损害的实验研究[D];山东大学;2011年
4 王建枫;锌对大鼠肝脏硬脂酰辅酶A去饱和酶-1(SCD-1)的影响及其调控机理研究[D];浙江大学;2008年
5 周春雷;五肽化合物PLNPK对大鼠抗GBM肾炎的治疗作用及其作用机制的研究[D];天津医科大学;2008年
6 张健;Raf-1激酶对SAH后脑血管痉挛及早期脑损伤的作用及其机制的实验研究[D];苏州大学;2011年
7 云宇;缺血后处理抗大鼠肾缺血—再灌注损伤的作用机制研究[D];昆明医学院;2010年
8 刘明;梓醇对脑缺血损伤大鼠恢复早期神经功能的影响及其机制研究[D];北京中医药大学;2011年
9 沙莹;粒细胞集落刺激因子对脑缺血再灌注大鼠的治疗及其作用机制的研究[D];吉林大学;2010年
10 李国;白介素-6中和抗体及索拉菲尼对野百合碱诱导大鼠肺动脉高压的作用及其机制[D];中国协和医科大学;2009年
中国硕士学位论文全文数据库 前10条
1 王开永;CD34单克隆抗体防治大鼠SAH后CVS及脑保护作用的实验研究[D];苏州大学;2010年
2 左刚;黄体酮对大鼠蛛网膜下腔出血(SAH)后早期脑损伤(EBI)保护作用及机制的实验研究[D];苏州大学;2011年
3 熊南轩;三七总皂苷治疗大鼠SAH后CVS影响的实验研究[D];中南大学;2010年
4 于明明;硫酸化壳聚糖衍生物对实验性大鼠脂肪肝的防治作用研究[D];中国海洋大学;2010年
5 王冠栋;大强度间歇游泳运动对膳食诱导肥胖大鼠肥胖及炎症因子的影响[D];河南大学;2010年
6 刘舰杭;创伤性休克对大鼠血脂、TNF-α的影响[D];石河子大学;2009年
7 汪涛;胆碱能抗炎通路对大鼠呼吸机所致肺损伤的影响[D];桂林医学院;2010年
8 何承彪;川芎嗪对SD大鼠SAH后脑血管痉挛病理变化的影响及对脑的保护作用实验研究[D];中南大学;2010年
9 王轩;脑淋巴引流阻滞对SAH继发性脑缺血损伤的影响及吡哆醇的缓解作用[D];泰山医学院;2007年
10 梁晓;rhG-CSF经鼻靶向中枢给药对SAH后继发性脑缺血损伤的保护作用[D];泰山医学院;2010年
中国重要报纸全文数据库 前10条
1 刘华;雌二醇可减轻大鼠模型急性胰腺炎的器官损害[N];医药导报;2004年
2 编译 阿雷;CVS与沃尔格林闹“分手”不再合作药品福利管理业务[N];中国医药报;2010年
3 ;电针对帕金森病大鼠模型抗氧化酶有影响[N];中国中医药报;2005年
4 张艳 方素清 姜凯 宋婷婷;慢心衰气虚血瘀证大鼠模型[N];中国中医药报;2006年
5 内蒙古医学院中医学院 任秀玲;“肺气虚”大鼠模型微观基础表达的实验研究[N];中国中医药报;2007年
6 阿雷 编译;CVS将自己定位为健康服务综合供应商[N];中国医药报;2009年
7 姜之炎 吴玉晶;小儿敷贴粉可改善哮喘大鼠气道反应[N];中国医药报;2005年
8 美国连锁药店杂志《DRUG STORE NEWS 》 阿雷 编译;CVS和沃尔格林:强力推广社区药师概念[N];中国医药报;2009年
9 王硕军 编译 王炜;CVS首季利润增长4.5%[N];医药经济报;2010年
10 王炜 翻译;CVS处方药折扣计划面临搁浅[N];医药经济报;2010年
 快捷付款方式  订购知网充值卡  订购热线  帮助中心
  • 400-819-9993
  • 010-62982499
  • 010-62783978