重组人诱导型一氧化氮合酶在V_79细胞中的稳定表达及其对平滑肌细胞增殖的影响
【摘要】:
背景:一氧化氮(nitric oxide,NO)是血管内皮细胞分泌的一种重要的
舒血管因子。NO不仅是机体的一种重要的信使分子,它还具有促内皮生
长,抑制血小板和白细胞在血管表面聚集,抑制平滑肌细胞增殖、迁移,
在胶原合成和分泌其它细胞因子等方面也起调节作用。多种血管损伤性疾
病,如动脉粥样硬化、高血压和再狭窄,与内皮功能不足和一氧化氮分泌
减少有关。促进受损内皮再生,恢复血管周围NO的保护性功能,在治疗
这些疾病中具有重要意义。已有研究用病毒载体将NOS基因经血管腔进
行转染,通过外源基因的表达,增加损伤血管局部NO的分泌,以达到治
疗血管损伤性疾病的目的,并已在动物实验中取得了良好的治疗效果。但
病毒载体进入机体可以引起致命的免疫反应和急性炎症反应,限制了其在
临床中的广泛应用。用脂质体将NOS基因从血管外膜进行基因转染,这
方面的研究较少报道。本实验研究借用对血管内皮细胞(vascular
endotheliocyte,VEC)重要功能之一的NO、NOS研究较深入的基础作为
突破点,通过转基因技术将诱导型一氧化氮合酶(inducible nitric oxide
synthase,iNOS)基因转染至生物特性与VEC有很大差异的血管壁非内皮
细胞成份上,使iNOS表达具有生物活性的基因产物,从而提出血管生物
学的新概念:动脉血管壁非内皮细胞成份在成功转染和表达iNOS基因
后,转基因产物的生物作用可行使VEC相应的功能,开拓减轻或逆转由
VEC功能不全或丧失所致相关疾病治疗的新途径。作为前期的基础性研
究,我们将iNOS基因转染至V_(79)成纤维细胞中,观察iNOS的表达和NO
生成量,研究转染生成的NO对血管平滑肌细胞增殖的影响,既探讨了外
源性iNOS基因转染成纤维细胞的可行性和具有转iNOS基因的成纤维细
胞对血管平滑肌的生物行为的影响,又进一步为VEC功能不全或丧失的
血管转染iNOS提供了实验研究的依据。
方法:*)真核表达载体pCDNA3-iNOS的构建:真核表达载体pCDNA。
和 iNOS CDNA目的片段分别用 Hilld Ill和Xbll双酶切,T。DNA连接酶
将iNOS片段和线性化的pCDNA。连接,用酶切和碱基序列测定进行重组
体的鉴定。c用脂质体介导的基因转染方法,将PCDNA厂iNOS导入V”
细胞中,筛选G。;/性克隆,扩大培养获得稳定表达iNOS的V,。细胞系。
通过RT-PCR检测转染细胞中oOS mRNA的转录,Western Blot检测转
录生成的oOS蛋自酶,兔疫荧光染色进一步定位检测转染细胞分泌的
iNOS蛋白。*用Gness 法测定细胞培养基上清中NO的代谢产物NO。“含
量,以反映转染细胞生成的NO量,并观察H4B对NO生成的影响O)将
转染iNOS的V,9细胞上清制备成条件培养液加到平滑肌细胞中,通过生
长曲线和细胞周期分析,观察NO对平滑肌细胞增殖的影响。
结果:1重组质粒通过酶切鉴定和碱基序列测定证实了iNOS CDNA定
向插入到真核表达载体中。pCDNA广iNOS含有真核表达的巨细胞病毒强
启动子和新霉素磷酸转移酶neo基因,可用于真核细胞的转染。
2.RT-PCR检测转染pcDNA。一NOS的V,。细胞中有iNOS mRNA的转录,
Western blot结果显示转染的细胞中有iNOS蛋白的表达,兔疫荧光染色
观察到转染细胞分泌的iNOS的蛋白存在于细胞的胞质中。而正常细胞组
和转染空质粒的细胞中未见iNOS mRNA和iNOS的蛋白的生成。
3.采用Gr i ess法测定细胞培养基上清中NO的含量。结果显示,未加
Hp时,iNOS转染组细胞NO含量明显高于正常细胞组和空质粒转染组
①二0刀0,n=6X正常细胞组和空质粒转染组之间NO含量无明显差异o-0.l,
n畸);加入HS后,iNOS转染组中NO含量较未加组明显增加,两者相
比具有显著性差异o刃.00,n朽),而正常细胞组和空质粒转染组与未加 H庐
组相比无明显变化o司.403,n=6卜
4.分别将V,。正常细胞条件培养液、空质粒转染组细胞条件培养液、
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iNOS转染组细胞条件培养液加入到培养的平滑肌细胞中,于加入条件培
养液后24h、48h、72h收集各组细胞并进行活细胞计数,绘制生长曲线。
其变异系数为 CV巧个 12叭n叫人 结果加入 i NOS转染组细胞条件培养液可
使VS肌增殖明显受到抑制,通过细胞周期的进一步分析,增殖受到抑制
的VSMC增殖周期发生了明显的变化,处于GG;期细胞明显增高,与对
照组相比差异显著(P二0.034,n二3),S期细胞明显减少(P二0.026,n==3),G。*
期细胞变化不大(P=0.73,n=3)。
结论:1.本实验构建的真核表达载体 pCDNA广一NOS含有人 iNOS CDNA
全长序列,具有转染哺乳类细胞的通用性,可用于iNOS基因的真核表达
及调控的研究。